Summary

AFM ו Microrheology בתא חלמון עובר דג זברה

Published: November 29, 2017
doi:

Summary

העדר כלים למדידת תכונות החומר, הפרמטרים tensional ויוו מונע אימות התפקידים שלהם במהלך הפיתוח. אנחנו מועסקים מיקרוסקופ כוח אטומי (AFM) ומעקב nanoparticle לכמת תכונות מכניות על התא חלמון העובר תקין דג זברה במהלך epiboly. שיטות אלה הינם אמינים החלים נרחב הימנעות התערבויות פולשניות.

Abstract

אחת מהמטרות העיקריות במחקר של פיתוח שחקרתי את הגורמים ישיר הארגון-עתיים המתפתחים ברקמות. הטענות שונים טוענים היו תרומות חשובות להבנה של התכונות המכאניות של תאים ורקמות בארגון שלהם ייתכן בתהליכים התפתחותיים, morphogenetic שונים. עם זאת, בשל היעדר כלים נגיש ואמין למדידת תכונות החומר, הפרמטרים tensional ויוו, אימות היפותזות אלה היה קשה. כאן אנו מציגים שיטות העסקת מיקרוסקופ כוח אטומי (AFM), חלקיקים מעקב במטרה לכמת תכונות מכאניות של התא חלמון דג זברה שלם העובר במהלך epiboly. Epiboly הוא תהליך התפתחותי מוקדם שנשמרת שמחקרו בהנחייתם של השקיפות של העובר. שיטות אלה הם פשוט ליישם, אמינים ובעלי החלים נרחב מאז הם מתגברים על התערבויות פולשניות העלולה להשפיע על רקמות מכניקה. אסטרטגיה פשוטה הוחל על הרכבה של דגימות, הקלטה AFM ו ננו-חלקיק זריקות ומעקב. גישה זו הופכת השיטות להתאמה בקלות פעמים התפתחותית או אורגניזמים אחרים.

Introduction

העקרונות הפיזיים הפקד ביו-מכני של תהליכים morphogenetic אינם מוגדרים במידה רבה. בעוד מחקרים ביו-מכני ברמה המולקולרית, התאית הן צוברת תאוצה ניכר, חקר biomechanical פרמטרים ברמת רקמות/אורגניזם הוא למאכלים. רגרסיה hydrodynamic1 או מיקרוסקופ כוח וידאו2 מאפשרים להבחין בין כוחות פעיל וסביל, תוך תיאום לייזר3או מיקרוסקופ כוח אטומי (AFM) פחות פולשנית של תאים הפומבית4 או אין ויוו microrheology 5 או ננו-חלקיק6 לאפשר הציפייה של תכונות מכניות ותגובות של רקמה.

AFM היא טכניקה סימון שבילים תלת מימדי עם רזולוציה גבוהה אטומי לפתרון חספוס פני השטח ותאימות מ סטיה של זיז טיפים לאחר יצירת קשר עם משטח הנייר7. מתודולוגיות שונות העסקת AFM פותחו כדי לחקור את מאפייני משטח, כולל מדידת חיכוך, כוחות אדהזיה ומאפיינים viscoelastic של חומרים מגוונים. לאחרונה, AFM התפתחה כלי רב עוצמה כדי לאחזר מידע על תכונות מכניות של דגימות ביולוגיות. בפרט, AFM יכול לא פולשני לחלץ מודולוס גזירה מורכב של תאים בודדים על-ידי החלת הכניסות מתנדנדות עם טיפ מיקרו קשורה על זיז ידוע קבוע כיפוף8. פעולה זו מאפשרת לנו להסיק הכוחות שנוצר. ובכל זאת, AFM אינה ייחודית, מתודולוגיות שונות לאפשר חילוץ נתונים rheological ואת תכונות מכניות תאים בודדים (למשל, Micropipette השאיפה9, מגנטי פיתול cytometry (MTC)10, או uniaxial מתיחה בדיקה11).

ובכל זאת, היישום של מתודולוגיות הרומן אלה תהליכים מורכבים morphogenetic אינה פשוטה. אתגרי העיקריים בקביעת התכונות המכאניות של רקמות עובריים הם הקטנים (מיקרומטר מ”מ), רכה (ב 102 – 104 הרשות הפלסטינית טווח) והטבע ויסקו-אלסטית (והוליד תלויי-זמן התופעות) גשמי12. לכן חשוב להתאים את השיטות לקביעת תכונות מכניות (נוקשות, צמיגות, אדהזיה) למקרה הספציפי של עוברי ואורגניזמים המתפתח. שני נושאים חשובים שצריך לקחת בחשבון בעת ניתוח הגישות rheological ללמוד פיתוח: כדי למנוע הפרעה פולשניות וכדי לספק נגישות קלה. בתרחיש זה, השאיפה micropipette MTC, בדיקות התערוכה מגבלות. במקרה הראשון, להרכב גבוהה תא סובלת עלולה לשנות מאפיינים פיזיולוגיים ומכניים שלה9. במקרה השני, הצורך לדבוק בחוזקה רקמות ניסיוני מצע כדי להבטיח כי הלחצים חלה לעוות את שלד התא באופן מקומי יכול גם להציג אפקטים על מצב הפעלה התאים ומכאן שלהם תכונות מכניות10 . גישות מתיחה האחרון, uniaxial מוגבלים על ידי הצורה הגיאומטרית של פיתוח אורגניזמים נגישות11.

AFM נראה להיות מתאים יותר עבור חקר תהליכים פיתוחיים שכן היא מאפשרת המחקר של דגימות ביולוגיות ישירות בתוך הסביבה הטבעית שלהם ללא כל הכנה מדגם מסורבלת. יתר על כן, כפי דיסוציאציה של רקמות עובריים הוא בדרך כלל קשה, בגודל מופחת של AFM הגששים מספק רמה גבוהה של רב-תכליתיות ללא מגבלה בבחירת סוג בינוני (מימית או הלא-מימית), לדוגמה טמפרטורה או כימית ההרכב של המדגם. מיקרוסקופ כוח אטומי מספיק גמישים כדי להחיל על תחומים גדול וזמן קשקשים, ננקטה כדי לאחזר תכונות החומר של רקמות שלבים התפתחותיים או בתנאים פיזיולוגיים. כל ילידי רקמות כגון העורקים13 או עצמות14 נחקרו מנקודת מבט הטופוגרפי, במקרים מסוימים, כמו בסקלרה, תכונות מכניות היו גם שאוחזרו15. הטופוגרפיה יש נחקרו גם בחיים עוברי המאפשר את החזיית, למשל, תא שחלוף במהלך מורפוגנזה צפרדע רפואית16. הדוגמה האחרונה, מקיף הכנת פרוטוקולים פותחו כדי לקבוע פרמטרים מכני במהלך תהליכים התפתחותיים שונים. מפות Nanoindentation נוצרו על רקמות מבולבל יליד מקטעים עבור מערכת העיכול עובריים צ’יק11; דבק ועל מכניים מאפיינים המאוחזרים עבור הפרט האאקטודרם, והמזודרם והאנדודרם ובתאים מבודדים מן העוברים gastrulating דג זברה4; נוקשות מדידות שבוצעו על epiblast ועל רצף פרימיטיביים על explants של העוברים העופות17; . ואת דפוס ברור של נוקשות מעברי צבע מוגדרים ישירות המוח העוברי של צפרדע רפואית5

קפיצה איכותית משמעותית להחלת AFM לחקר התפתחות שעשוי להגיע מתקרב פשוט תהליכים morphogenetic נגיש. Epiboly דג זברה היא אירוע שנשמרת וחיוני, שבו ברקמות שונות לתאם בחלל כדורית מוגבלת כדי לכוון את התרחבות blastoderm בעוד כמה שעות. מיד עם תחילת epiboly דג זברה (שלב כדורית), שכבה שטחית של תאים, השכבה עוטף (EVL), מכסה חצי כיפה של blastomeres שבמרכזה הקוטב חיה של העובר יושב על תא syncytial חלמון מסיבית. Epiboly מורכב הרחבת קורטיקלית וורד פוליאותן EVL, התאים עמוק (Dc) את blastoderm, ואת השכבה החיצונית של התא syncytial חלמון (E-ליפשיץ) סביב החלמון. Epiboly מסתיים עם סגירת EVL את ו- Dc-19,18,20vegetal הקוטב. כיצד והיכן כוחות נוצרות במהלך epiboly, איך הם מצמידים באופן גלובלי אינו עדיין ברור1,21.

כאן נתאר בפירוט כיצד להחיל AFM להסיק רקמות מכני פסיבי מאפיינים במהלך התקדמות epiboly החלמון דג זברה תא ויוו. כדי לעשות זאת, אנחנו מועסקים microspheres קטן המוצמד cantilevers AFM כפי רגשים. דבר זה מאפשר דליית מידע מקומי מדויקת בתוך השטח תא החלמון לא אחידה, ללמוד מעברי צבע tensional ואת הדינמיקה שלהם לאורך זמן. AFM חלופי גישות כגון אלה באמצעות טריז cantilevers22, יהיה לא רינדור מקומית נתונים מדויק מספיק. הטכניקה טריז, הדורש מיומנויות מניפולציה מאוד זהירים כדי להדביק טריז גדול יותר מאשר גודל המדגם בסוף שלוחה, אינה מתאימה עבור בודק את העובר (~ קיפול כפול גדול יותר מהאורך הזיז) מכניקה.

מידול ואפיון המאפיינים viscoelastic של תאים בדרכים כמותיים מאפשר הבנה משופרת הביומכניקה שלהם. מנקודת מבט ביו-מכני, זה חיוני כדי להבין epiboly, לא רק דרישה ידע על מדידות מתח קורטיקלית, דינמיקה, אשר ניתן לחילוץ על AFM; לכן יש צורך מידע על מאפיינים ביופיזיקלי של הרקמה. כדי לחלץ את המידע הזה, במגוון טכניקות rheology תא פותחו עם השנים על מנת לאפיין את סוגי תאים שונים תחת מצבים פיזיולוגיים שונים23. הם כוללים AFM MTC, פינצטה אופטית (OT). שיטות אלו, עם זאת, הוכחו לא מתאימות עבור ניתוחים mesoscopic את המשקל של העוברים או איברים. כחלופה, אנו הסתגלו בהצלחה ננו-חלקיק-מעקב microrheology6 ויוו rheological מעבדתיים. טכניקה זו מנתח את displacements בראונית של חלקיקים בודדים או יסיק מאפיינים מקומיים micromechanical.

Microrheology AFM ו ננו-חלקיק יחד מאפשרים את ההגדרה של דינמיקה tensional קורטיקלית פנימי תכונות מכניות של החלמון במהלך epiboly. מידע זה באופן מלא מאשרת מודל שבו הלחץ אניסוטרופי מפתחת בשל הבדלי התגובה דפורמציה של EVL, החלמון Cytoplasmic שכבה (YCL) כדי התכווצות איזוטרופיות actomyosin של קליפת E-ליפשיץ, זה חיוני התנועה נטו כיוונית EVL ו epiboly התקדמות1.

Protocol

כל השלבים פרוטוקול המתואר להלן בצע את ההנחיות טיפול בבעלי חיים המוסדות שלנו. 1. דג זברה תרבות להתרבות ולשמור על דג זברה בוגרת בתנאים רגילים.הערה: עוברי פראי סוג AB ו TL שימשו למחקר זה. לאסוף את העוברים, לגדל אותם ב 28.5 ° C ב- E3 העובר בינונית24. שלב אותם על פי…

Representative Results

מדידות מתח בקליפת המוחעבור כל נקודה מדידה, חמש עקומות כוח-הזחה (F-z) נרכשו על ידי AFM באמצעות הגדלת שלוחה 1 הרץ עם משרעת השיא אל שיא של 5 מיקרומטר (מהירות = 10 מיקרומטר/s) עד הכניסה המרבי של ~ 2 מיקרומטר. הליך זה לוקח פחות מ 20 דקות, לא הושפע epiboly התקדמות. כל תנאי הניסוי נבדק…

Discussion

הנה אנחנו מראים כי את תכונות החומר מספר פרמטרים ביו-מכני של התא חלמון דג זברה במהלך epiboly יכול להיות בקלות מוערך על ידי AFM ו חלקיקים microrheology.

בעוד AFM ננקטה כדי לאחזר rheological תכונות של תאים ורקמות בתנאים פיזיולוגיים4,5,25,<sup cl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים Amayra הרננדז-וגה, פיליפ-אלכסנדר Pouille על השתתפות בהקמת על בסיס פרוטוקולים אלה. אנו מודים גם פלטפורמת הדמיה מולקולרית IBMB-PCB, אסטבן אקסבייר, חברי המעבדה תמיכה שוטפת. התוכנית קבוצות מאוחדות של Generalitat דה קטלוניה, DGI, מענקים Consolider משרד הכלכלה ואת Competitivity של ספרד ועד EMB DN תמיכה עבודה זו.

Materials

Inverted optical microscope Nikon TE2000 Visualization of the sample and AFM cantilever
Atomic force microscope (AFM) Custom made Any commercialized AFM could be employed
Inverted Confocal microscope Zeiss LSM780 Nanorheology data collection
Agarose D1 Low EEO Conda 8016.00 Casting embryos
Ultrapure LMP Agarose (low melting) Invitrogen 16520-100 Securing embryos
Zebrafish Microinjection and Transplantation Molds World Precision Instruments Z-MOLDS Casting embryos. Custom made with the original dimensions can also be employed
Dumont 5 Forceps FST 11251-20 1.5 mm diameter
Si3N4 cantilever Novascan PT.GS Measuring the embryo by AFM. Spherical tip: 4.5 µm diameter and k=0.01 N/m
Fluorescent nanoparticles Life Technologies FluoSpheres F8811, For tracking nanorheology
Micropipette puller Sutter Instruments P-2000 Fabricating tailored microneedles
Borosilicate capillary glass Warner Instruments G100TF-4 Fabricating tailored microneedles
Micromanipulator Narishige MN-153 Manipulating the micropipette
Microinjector Eppendorf FemtoJet Express Controlling injection time and pressure
Stereomicroscope Leica DFC365FX Visualization of the embryos during injection
Analysis Software MathWorks Matlab Analyzing AFM and particle tracking data
Zebrafish AB and TL wild type Strains employed for embryo collection
Glass Bottom Plates Mat Tek P35G-0.170-14-C Mounting embryos for nanorheology data collection
Stage micrometer FST 29025-02

References

  1. Hernandez-Vega, A., et al. Polarized cortical tension drives zebrafish epiboly movements. EMBO J. 36, 25-41 (2017).
  2. Brodland, G. W., et al. Video force microscopy reveals the mechanics of ventral furrow invagination in Drosophila. Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 22111-22116 (2010).
  3. Grill, S. W. Growing up is stressful: biophysical laws of morphogenesis. Curr Opin Genet Dev. 21, 647-652 (2011).
  4. Krieg, M., et al. Tensile forces govern germ-layer organization in zebrafish. Nat Cell Biol. 10, 429-436 (2008).
  5. Koser, D. E., et al. Mechanosensing is critical for axon growth in the developing brain. Nat Neurosci. 19, 1592-1598 (2016).
  6. Wirtz, D. Particle-tracking microrheology of living cells: principles and applications. Annu Rev Biophys. 38, 301-326 (2009).
  7. de Pablo, P. J., Carrión-Vázquez, M. Imaging Biological Samples with Atomic Force Microscopy. Cold Spring Harbor Protocols. 2014, 167-177 (2014).
  8. Roca-Cusachs, P., et al. Rheology of passive and adhesion-activated neutrophils probed by atomic force microscopy. Biophys J. 91, 3508-3518 (2006).
  9. Evans, E., Yeung, A. Apparent viscosity and cortical tension of blood granulocytes determined by micropipet aspiration. Biophys J. 56, 151-160 (1989).
  10. Fabry, B., et al. Time scale and other invariants of integrative mechanical behavior in living cells. Phys Rev E Stat Nonlin Soft Matter Phys. 68, 041914 (2003).
  11. Kashef, J., Franz, C. M. Quantitative methods for analyzing cell-cell adhesion in development. Dev Biol. 401, 165-174 (2015).
  12. Chevalier, N. R., et al. Measuring the micromechanical properties of embryonic tissues. Methods. 94, 120-128 (2016).
  13. Reichlin, T., et al. Investigating native coronary artery endothelium in situ and in cell culture by scanning force microscopy. J Struct Biol. 152, 52-63 (2005).
  14. Rho, J. Y., Tsui, T. Y., Pharr, G. M. Elastic properties of osteon and trabecular bone measured by nanoindentation. J Biomech. 31, 21 (1998).
  15. Grant, C. A., et al. Surface characterisation and biomechanical analysis of the sclera by atomic force microscopy. J Mech Behav Biomed Mat. 4, 535-540 (2011).
  16. Efremov, Y. M., et al. Atomic force microscopy of living and fixed Xenopus laevis embryos. Micron. 42, 840-852 (2011).
  17. Henkels, J., et al. Spatiotemporal Mechanical Variation Reveals Critical Role for Rho Kinase During Primitive Streak Morphogenesis. Ann Biomed Eng. 41, 421-432 (2013).
  18. Solnica-Krezel, L. Gastrulation in zebrafish — all just about adhesion?. Curr Opin Genet Dev. 16, 433-441 (2006).
  19. Kimmel, C. B., et al. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev Dyn. 203, 253-310 (1995).
  20. Rohde, L. A., Heisenberg, C. P. Zebrafish gastrulation: cell movements, signals, and mechanisms. Int Rev Cytol. 261, 159-192 (2007).
  21. Campinho, P., et al. Tension-oriented cell divisions limit anisotropic tissue tension in epithelial spreading during zebrafish epiboly. Nat Cell Biol. 15, 1405-1414 (2013).
  22. Fischer-Friedrich, E., et al. Quantification of surface tension and internal pressure generated by single mitotic cells. Sci Rep. 4, 6213 (2014).
  23. Moeendarbary, E., Harris, A. R. Cell mechanics: principles, practices, and prospects. Wiley Interdiscip Rev Syst Biol Med. 6, 371-388 (2014).
  24. Westerfield, M. . The Zebrafish Book: A Guide for the Laboratory Use of Zebrafish (Danio rerio). , (2000).
  25. Alcaraz, J., et al. Microrheology of human lung epithelial cells measured by atomic force microscopy. Biophys J. 84, 2071-2079 (2003).
  26. Jorba, I., et al. Probing Micromechanical Properties of the Extracellular Matrix of Soft Tissues by Atomic Force Microscopy. J Cell Physiol. 232, 19-26 (2017).
  27. Hutter, J. L., Bechhoefer, J. Calibration of atomic-force microscope tips. Review of Scientific Instruments. 64, 1868-1873 (1993).
  28. Lomakina, E. B., et al. Rheological analysis and measurement of neutrophil indentation. Biophys J. 87, 4246-4258 (2004).
  29. Alcaraz, J., et al. Correction of Microrheological Measurements of Soft Samples with Atomic Force Microscopy for the Hydrodynamic Drag on the Cantilever. Langmuir. 18, 716-721 (2002).
  30. Daniels, B. R., Masi, B. C., Wirtz, D. Probing single-cell micromechanics in vivo: the microrheology of C. elegans developing embryos. Biophys J. 90, 4712-4719 (2006).
  31. Kalwarczyk, T., et al. Comparative analysis of viscosity of complex liquids and cytoplasm of mammalian cells at the nanoscale. Nano Lett. 11, 2157-2163 (2011).
  32. Soroldoni, D., et al. Genetic oscillations. A Doppler effect in embryonic pattern formation. Science. 345, 222-225 (2014).
  33. He, B., et al. Apical constriction drives tissue-scale hydrodynamic flow to mediate cell elongation. Nature. 508, 392-396 (2014).
  34. Johansen, P. L., et al. Optical micromanipulation of nanoparticles and cells inside living zebrafish. Nat Commun. 7, 10974 (2016).

Play Video

Cite This Article
Marsal, M., Jorba, I., Rebollo, E., Luque, T., Navajas, D., Martín-Blanco, E. AFM and Microrheology in the Zebrafish Embryo Yolk Cell. J. Vis. Exp. (129), e56224, doi:10.3791/56224 (2017).

View Video