Summary

Грызун стереотаксической хирургии и животных улучшения благосостояния Итоговом документе Поведенческие Neuroscience

Published: January 30, 2012
doi:

Summary

Стереотаксической хирургии на грызунов позволяет целевой прием препаратов или электрической стимуляции и записи у бодрствующих, которые ведут себя животные. В этом видео-презентации мы продемонстрируем последние процедурные уточнения к этой давней процедура, которая успешно улучшение выживаемости и снижения послеоперационной потери веса.

Abstract

Стереотаксической операции по имплантации катетеров в конкретных областях мозга в течение многих десятилетий была очень успешной экспериментальной методики изучения влияния локально управлять нейромедиаторов и сигнальных путей у бодрствующих, которые ведут себя животные. Более того, стереотаксической имплантации электродов для стимуляции и электрофизиологические исследования записи сыграл важную роль в нашем современном понимании нейропластичности и мозг сетей в себя животных. Постоянно растущее знания об оптимизации хирургической техники у грызунов 1-4, информирование общественности по вопросам благополучия животных и жесткое законодательство (например, в 2010 году Директива Европейского союза об использовании лабораторных животных, 5) предложено уточнить эти хирургические операции, особенно в отношении для внедрения новых процедур для кислородных добавок и непрерывного мониторинга оксигенации крови и уровня частоты сердечных сокращений во время операции, а такжевведение стандартизированного протокола для послеоперационного ухода. Наши наблюдения показывают, что эти изменения привели к увеличению выживаемости и улучшение общего состояния животных после операции (например, менее потеря веса и более активных животных). Это видео презентация покажет общие процедуры, связанные с этим типом стереотаксической хирургии с особым вниманием к нашим нескольких модификациях. Проиллюстрируем эти хирургические операции у крыс, но это также можно выполнять такого рода операции у мышей и других мелких лабораторных животных с помощью специальных адаптеров для стереотаксического аппарата 6.

Protocol

Примечание: Антисептическое методы должны быть использованы в течение всей процедуры. Все инструменты и материалы (хлопок-тампоны, марлевые и т. д.), который будет использоваться во время операции следует стерилизовать в автоклаве. Хирургическую маску, волосы капота и стерильные перча?…

Discussion

Основная цель этого видео-презентации является ознакомление поведенческого нейрофизиологи с основными принципами стереотаксической хирургии. Исследователи, которые уже выполняет стереотаксической хирургии может также извлечь выгоду из этого видео и рассмотрим некоторые из процед…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы выражают благодарность д-р Питер Герритс для рисунки, используемые в видео.

Materials

Name of the reagent Company
Alcohol 70% VWR
Antisedan (atipamezole) Orion
Atropine sulfate 0,5 Pharmachemie BV
Bulldog haemostatic clamp Aesculap
Cannulas Component Supply Co.
Chlorhexidine 0.5% AppepPharma
Cleaning powder Alconox
Cotton sticks Hartmann BV
Dexdomitor (dexmedetomidine) Orion
Drill Dremel 8000
Duratears Z Alcon
Durogrip Naaldvoerder converse 130mm Aesculap
Durotip Fijne schaar ret.sp/st 110 mm Aesculap
Gauze Medicomp (5×5)
Heating pad Harvard Apparatus
Insect pins (stylets) Entosphinx (Czech Republik)
Ketamine 10% (ketamine) Alfasan
Micro-halsted straight tip Aesculap-vet
Molinea Hartmann BV
NaCl 0,9% Baxter
Needles (25G) Terumo
Oximeter Edan Instruments, Inc.
Pentobarbital Pharmacy of the UMCG
Rimadyl Pfizer
Scalpel blade No. 23 Swann Morton
Scalpelholder NR. 4 133 mm Aesculap
Screw driver conventional Hardware Store
Simplex Rapid (dental cement) Kemdent
Skull screws Component Supply Co.
Spatula VWR
Spongestan special Johnson & Johnson
Stereotacts Kopf Instruments
Surgical forceps 100mm Aesculap
Suture material Safil 5/0 Aesculap
Syringe 10 ml Omnifix
Syringe 1ml Terumo
Syringe 5ml Omnifix
Xylocaine (lidocaine/adrenaline) Astra Zeneca

References

  1. Russell, W. M. S., Burch, R. L. . The Principles of Humane Experimental Technique. , (1959).
  2. Richardson, C. A., Flecknell, P. A. Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress?. Altern. Lab Anim. 33, 119-127 (2005).
  3. Stokes, E. L., Flecknell, P. A., Richardson, C. A. Reported analgesic and anaesthetic administration to rodents undergoing experimental surgical procedures. Lab Anim. 43, 149-154 (2009).
  4. Flecknell, P. A. . Laboratory Animal Anaesthesia – A Practical Introduction for Research Workers and Technicians. , (2009).
  5. . DIRECTIVE 2010/63/EU OF THE EUROPEAN PARLIAMENT AND OF THE COUNCIL of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Official Journal of the European Union. , (2010).
  6. Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. Survivable Stereotaxic Surgery in Rodents. J. Vis. Exp. (20), e880-e880 (2008).
  7. Hellebrekers, L. J., Booij, L. H. D. J., Flecknell, P. A., Van Zutphen, L. F. M., Baumans, V., Beynen, A. C. Anaesthesia, analgesia and euthanasia. Principles of Laboratory Animal Science. , 277-311 (2001).
  8. Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E16 rat embryos. J. Vis. Exp. (6), e236-e236 (2007).
  9. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (1986).
  10. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2007).
  11. Swanson, L. W. . Brain Maps: Structure of the Rat Brain. , (1992).

Play Video

Cite This Article
Fornari, R. V., Wichmann, R., Atsak, P., Atucha, E., Barsegyan, A., Beldjoud, H., Messanvi, F., Thuring, C. M., Roozendaal, B. Rodent Stereotaxic Surgery and Animal Welfare Outcome Improvements for Behavioral Neuroscience. J. Vis. Exp. (59), e3528, doi:10.3791/3528 (2012).

View Video