Summary

Двух Фотон кальция изображений в нейрональных дендритов в срезах головного мозга

Published: March 15, 2018
doi:

Summary

Мы представляем метод, объединяющий поклеточного фиксации записи и два Фотон изображений для записи Ca2 + переходные процессы в нейрональных дендритов в острой мозга ломтиками.

Abstract

Кальций (Ca2 +) изображений является мощным инструментом для изучения пространственно-временных динамика внутриклеточных Ca2 + сигналов в нейрональных дендритов. CA2 + колебания могут возникать через различные мембраны и внутриклеточных механизмов и играть решающую роль в индукции синаптической пластичности и регулирование дендритных возбудимости. Следовательно возможность записи различных типов Ca2 + сигналов в дендритных филиалов является ценным для групп, изучая, как дендриты интегрировать информацию. Появление двух Фотон микроскопии сделал такие исследования значительно проще, решая проблемы, присущие изображений в живой ткани, такие как рассеяние света и фотоповреждения. Кроме того через сочетание обычных электрофизиологических методов с двух Фотон Ca2 + изображений, можно исследовать местные Ca2 + колебания в нейрональных дендритов параллельно с записями синаптической активности в Сома. Здесь мы опишем, как использовать этот метод для изучения динамики местных Ca2 + транзиентов (кошки) в дендриты ингибирующее интернейронов ГАМК. Этот метод может применяться также к изучению дендритных Ca2 + сигнализации в различных типов нейронов в острой мозга ломтиками.

Introduction

Вклад нейрона для сетевой активности во многом определяется динамичный характер синаптических входов, которые он получает. Традиционно преобладает метод характеризации синаптической активности нейронов полагались на записи соматических поклеточного патч зажим постсинаптических токов, вызываемые электрической стимуляции аксонов прохода. Однако только активность проксимально расположен синапсы правдиво сообщили в этом случае1. Кроме того для оценки СИНАПС конкретные механизмы, записи из пар нейронов и дендритов в определенном месте использовались для целевой синапсы интерес и механизмы дендритных интеграции, соответственно. Крупным прорывом в области физиологии синаптических была достигнута через брак оптических и электрофизиологических методов. Двух Фотон возбуждения лазерной сканирующей микроскопии (2PLSM) в сочетании с Ca2 + изображений и optogenetic инструменты можно выявить огромный детали динамической организации синаптической активности на конкретных нейрональных связей в ломтики мозга в in vitro и в естественных условиях.

Несколько ключевых преимуществ сделал 2PLSM выделяется из обычных, один фотон возбуждения микроскопии2: (1) вследствие нелинейного характера возбуждения двух фотонов, флюоресценция генерируется только в том фокуса, а представляют всех излучаемых фотонов полезных сигналов (нет необходимости для обскуры); (2) больше волн, используемых в 2PLSM, проникать в ткани рассеяния более эффективно; Кроме того рассеянных фотонов слишком разреженных производить два Фотон возбуждения и фон флуоресценции; (3) фотоповреждения и Фототоксичность также ограничены в фокальной плоскости. Таким образом несмотря на высокую стоимость 2-фотонных систем по сравнению с обычными конфокальные микроскопы, 2PLSM по-прежнему является методом выбора для высокого разрешения исследования нейронов структуры и функции в густой живой ткани.

Первое применение 2PLSM в тканях рассеяния было изображение структуры и функции дендритных шипиков3. 2PLSM в сочетании с Ca2 + изображений показал что колючки функции как биохимические изолированных отсеков. Поскольку во многих типов нейронов существует однозначное соответствие между шипами и отдельных синапсы4, два Фотон Ca2 + изображений вскоре стал полезным инструментом отчетности деятельности отдельных синапсов в неповрежденной ткани5, 6,,78. Кроме того на основе 2PLSM Ca2 + изображений был успешно используется для мониторинга активности одного кальциевых каналов и нелинейных взаимодействий между внутренней и синаптическую проводимости, а также для оценки состояния и активности зависит от регулирование Ca2 + сигнализации в нейрональных дендритов5,6,,78,9,10,11.

Кальций является вездесущий внутриклеточных второй messenger, и его субцеллюлярные пространственно-временных организация определяет направление физиологических реакций, от изменений в синаптической силы к регулированию Ион каналы, роста дендритов и позвоночника, как а также гибель клеток и выживания. Дендритных Ca2 + фасады происходят через активацию нескольких путей. Потенциалы действия (APs), backpropagating к дендритов, открыть напряжения закрытый кальций каналы12 и производят относительно глобальной Ca2 + транзиентов (кошки) в дендритов и колючки13. Синаптической передачи связан с активацией постсинаптических Ca2 +-проницаемой рецепторов (NMDA, Ca2 +-проницаемой АМПА и kainate), вызывает синаптических кошки6,14,15. Наконец supralinear Ca2 + события могут быть созданы в дендриты при определенных условиях11,12,13,16.

Двух Фотон Ca2 + изображений в сочетании с патч зажим электрофизиологических записей использует синтетический Ca2 +-чувствительных люминесцентные Индикаторы, которые доставляются через электрод патч во время записи поклеточного . Стандартный метод для количественной оценки Ca2 + динамики на основе двойной индикатор метод17,18. Он использует два флуорофоров с хорошо разделенных спектры выбросов (например, сочетание красного Ca2 +-нечувствительным краска с зеленым Ca2 + индикаторы, такие как Орегон Грин BAPTA-1 или Fluo-4) и имеет ряд преимуществ по сравнению с единый индикатор метод. Во-первых, Ca2 +-нечувствительным краска используется для обнаружения небольших структур интерес (дендритных филиалов и колючки) где будет выполняться Ca2 + изображений. Во-вторых отношение между изменением в зеленой и красной флуоресценцией (ΔG/R) вычисляется как мера [Ca2 +], который является в значительной степени нечувствительны к изменения в базовых флуоресценции колебаниями в [Ca2 +]017 , 18. Кроме того, изменения флюоресценции может быть откалиброван с точки зрения абсолютной Ca2 + концентрации19.

Общая озабоченность при выполнении двух Фотон Ca2 + изображений эксперименты в острых фрагментов является здоровье клеток и стабильность захвата изображений из-за высокой лазерной энергии обычно используется. Кроме того в Ca2 + изображений экспериментов, существует озабоченность по поводу возмущений и существенной переоценки субцеллюлярные Ca2 + динамики, с тем, что Ca2 + индикаторы действовать как Высокомобильные внешних Ca2 + буферы. Таким образом выбор Ca2 + индикатор и его концентрация зависит от нейронов типа, ожидаемого амплитуда кошек и экспериментальной вопрос.

Мы адаптировали метод двух Фотон Ca2 + изображений для расследования Ca2 + колебаний в дендриты ГАМК интернейронов9,10,11,20,21 , 22. в то время как основная часть ранних Ca2 + тепловизионные исследования были сделаны в главных нейронов, тормозящий интернейронов продемонстрировать большое разнообразие функциональных Ca2 + механизмов, которые отличаются от тех, кто в пирамидальных клеток20 , 23 , 24. Эти межнейронного конкретные механизмы (например, Ca2 + проницаемых АМПА рецепторов) могут играть конкретную роль в регулировании клеточной активности. Хотя дендритных Ca2 + сигнализации в интернейронов заманчиво мишенью для дальнейшего расследования, два Фотон Ca2 + изображений в дендриты этих клеток представляет дополнительные проблемы, от тонкого диаметра дендритов и отсутствием шипов для особенно высокой эндогенного Ca2 + связывающая способность. Как наши исследовательские интересы сосредоточиться на изучении гиппокампа интернейронов, следующий протокол, в то время, как это применимо к различных нейрональных популяций, была адаптирована для решения этих проблем.

Этот протокол был казнен с коммерческой Конфокальный микроскоп двух фотонов, который был оборудован двумя внешними, не descanned детекторы (NDDs), электро оптический модулятор (МНВ) и Dodt, сканирование градиент контрастности (SGC) и установлен на таблицы оптики. Микроскоп был увязан с титан-сапфировый лазер multiphoton locked режиме на 800 Нм (> 3 Вт, 140 fs импульсов, частота следования импульсов 80 Гц). Система электронного фотографирования была оснащена стандартным электрофизиологии Рог, включая камеру перфузии с контроля температуры, перевод платформы с двумя микроманипуляторы, управляемая компьютером микроэлектродные усилитель, дигитайзера, стимуляции подразделение и программное обеспечение для сбора данных.

Protocol

Все эксперименты проводились в соответствии с руководящими животных животных защиты Комитет Университет Лаваля и Канадского совета по лечению животных. 1. Предварительная подготовка (необязательно: заранее подготовить 1 день) Подготовка трех видов искусственных с…

Representative Results

С использованием протокола, представленные здесь, мы получили кошки, вызывали соматических текущего инъекции и электростимуляции в дендриты oriens/alveus интернейронов в области СА1 гиппокампа. После исправления нейрона, определены на основе его форму и положение, мы приоб…

Discussion

Метод, показанный здесь показано, как сочетание двух Фотон Ca2 + изображений и патч зажим электрофизиологии может использоваться для изучения дендритных Ca2 + сигнализации в нейрональных дендритов в острой мозга ломтиками. Этот метод позволяет для контроля как местные Ca2 +</su…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Совет канадских институтов здравоохранения исследования, естественные науки и инженерных исследований (СЕНТИ обнаружения Грант) и Фондом Savoy. OC была поддержана кандидат стипендий от Сенти.

Materials

Animal Strain: Mouse CD1  Charles River 022
Isoflurane AbbVie Corporation 0B506-099
CGP 55845 hydrochloride  Abcam ab120337
Calcium chloride  Sigma-Aldrich C4901
D-(+)-Glucose  Sigma-Aldrich G8270
HEPES Sigma-Aldrich H3375
Magnesium chloride  Sigma-Aldrich M8266
Magnesium sulfate heptahydrate Sigma-Aldrich 230391
Paraformaldehyde powder, 95% Sigma-Aldrich 158127
Potassium chloride  Sigma-Aldrich P3911
Potassium gluconate  Sigma-Aldrich P1847
Sodium azide  Sigma-Aldrich S2002
Sodium bicarbonate  Sigma-Aldrich S8875
Sodium chloride  Sigma-Aldrich S5886
Sucrose  Sigma-Aldrich S9378
Triton X-100  Sigma-Aldrich T9284
Trizma base  Sigma-Aldrich T1503
Trizma hydrochloride  Sigma-Aldrich T3253
Sodium phosphate dibasic dihydrate  Sigma-Aldrich 71643

Sodium phosphate monobasic
monohydrate 
Sigma-Aldrich S9638
Biocytin Sigma-Aldrich B4261
Alexa Fluor 594 Hydrazide ThermoFisher Scientific A10438
SR95531 (Gabazine)  Abcam ab120042

Adenosine triphosphate (ATP)-Tris
Sigma-Aldrich A9062

Guanosine (GTP)-Na+
Sigma-Aldrich G8877

Oregon Green BAPTA-1
ThermoFisher Scientific O6812

Phosphocreatine di(tris) salt
Sigma-Aldrich P1937

Streptavidin-conjugated Alexa-546
ThermoFisher Scientific S11225

Patch Borosilicate Glass Capillaries
World Precision Instruments 1B100F-4

Theta Borosilicate Glass Capillaries
Sutter Instrument BT-150-10

P-97 Flaming/Brown Micropipette puller
Sutter Instrument

TCS SP5 Confocal Multiphoton Microscope
Leica Microsystems

Chameleon Ultra II Ti:Sapphire multiphoton laser 
Coherent
LAS AF Imaging Acquisition Software Leica Microsystems

Temperature Controller TC-324B
Warner Instruments

MultiClamp 700B Amplifier
Molecular Devices

Digidata 1440A Digitizer
Molecular Devices

Confocal Translator
Siskiyou

Micromanipulator
Siskiyou

pClamp Data Acquisition Software
Molecular Devices

A365 Constant Current Stimulus Isolator
World Precision Instruments

Vibraplane Optical Table
Kinetic Systems

References

  1. Williams, S. R., Mitchell, S. J. Direct measurement of somatic voltage clamp errors in central neurons. Nat Neurosci. 7, 790-798 (2008).
  2. Denk, W., Svoboda, K. Photon upmanship: why multiphoton imaging is more than a gimmick. Neuron. 18, 351-357 (1997).
  3. Yuste, R., Denk, W. Dendritic spines as basic functional units of neuronal integration. Nature. 375, 682-684 (1995).
  4. Nimchinsky, E. A., Sabatini, B. L., Svoboda, K. Structure and Function of Dendritic Spines. Annu Rev Physiol. 64, 313-353 (2002).
  5. Sabatini, B. L., Svoboda, K. Analysis of calcium channels in single spines using optical fluctuation analysis. Nature. 408, 589-593 (2000).
  6. Mainen, Z. F., Malinow, R., Svoboda, K. Synaptic calcium transients in single spines indicate that NMDA receptors are not saturated. Nature. 399, 151-155 (1999).
  7. Yasuda, R., Sabatini, B. L., Svoboda, K. Plasticity of calcium channels in dendritic spines. Nat Neurosci. 6, 948-955 (2003).
  8. Carter, A. G., Sabatini, B. L. State-dependent calcium signaling in dendritic spines of striatal medium spiny neurons. Neuron. 44, 483-493 (2004).
  9. Topolnik, L., Congar, P., Lacaille, J. C. Differential regulation of metabotropicglutamate receptor- and AMPA receptor-mediated dendritic Ca2+ signals by presynaptic and postsynaptic activity in hippocampal interneurons. J Neurosci. 25, 990-1001 (2005).
  10. Topolnik, L., Chamberland, S., Pelletier, J. G., Ran, I., Lacaille, J. C. Activity-dependent compartmentalized regulation of dendritic Ca2+ signaling in hippocampal interneurons. J Neurosci. 29, 4658-4663 (2009).
  11. Camiré, O., Topolnik, L. Dendritic calcium nonlinearities switch the direction of synaptic plasticity in fast-spiking interneurons. J Neurosci. 34, 3864-3877 (2014).
  12. Jaffe, D. B., Johnston, D., Lasser-Ross, N., Lisman, J. E., Miyakawa, H., Ross, W. N. Thespread of Na+ spikes determines the pattern of dendritic Ca2+ entry into hippocampal neurons. Nature. 357, 244-246 (1992).
  13. Nakamura, T., Barbara, J. G., Nakamura, K., Ross, W. N. Synergistic release of Ca2+ from IP3-sensitive stores evoked by synaptic activation of mGluRs paired with backpropagating action potentials. Neuron. 24, 727-737 (1999).
  14. Kovalchuk, Y., Eilers, J., Lisman, J., Konnerth, A. NMDA receptor-mediated subthreshold Ca(2+) signals in spines of hippocampal neurons. J Neurosci. 20, 1791-1799 (2000).
  15. Goldberg, J. H., Yuste, R., Tamas, G. Ca2+ imaging of mouse neocortical interneurone dendrites: contribution of Ca2+-permeable AMPA and NMDA receptors to subthreshold Ca2+ dynamics. J Physiol. 551, 67-78 (2003).
  16. Goldberg, J. H., Lacefield, C. O., Yuste, R. Global dendritic calcium spikes in mouselayer 5 low threshold spiking interneurones: implications for control of pyramidal cell bursting. J Physiol. 558, 465-478 (2004).
  17. Oertner, T. G. Functional imaging of single synapses in brain slices. Exp Physiol. 87, 733-736 (2002).
  18. Yasuda, R., et al. Imaging calcium concentration dynamics in small neuronal compartments. Sci STKE. 219, pl5 (2004).
  19. Maravall, M., Mainen, Z. F., Sabatini, B. L., Svoboda, K. Estimating intracellular calcium concentrations and buffering without wavelength rationing. Biophys J. 78, 2655-2667 (2000).
  20. Camiré, O., Topolnik, L. Functional compartmentalization and regulation of postsynaptic CaTs in inhibitory interneurons. Cell Calcium. 52, 339-346 (2012).
  21. Guet-McCreight, A., Camiré, O., Topolnik, L., Skinner, F. K. Using a semi-automated strategy to develop multi-compartment models that predict biophysical properties of interneuron-specific 3 (IS3) cells in hippocampus. eNeuro. 3, 1-26 (2016).
  22. Evstratova, A., Chamberland, S., Topolnik, L. Cell type-specific and activity-dependent dynamics of action potential-evoked Ca2+ signals in dendrites of hippocampal inhibitory interneurons. J Physiol. 589, 1957-1977 (2011).
  23. Topolnik, L. Dendritic calcium mechanisms and long-term potentiation in cortical inhibitory interneurons. Eur J Neurosci. 35, 496-506 (2012).
  24. Camiré, O., Lacaille, J. C., Topolnik, L. Dendritic Signaling in Inhibitory Interneurons: Local Tuning via Group I Metabotropic Glutamate Receptors. Front Physiol. 3, 259 (2012).
  25. Bourque, C. W. Central mechanisms of osmosensation and systemic osmoregulation. Nat RevNeurosci. 9, 519-531 (2008).
  26. Aghajanian, G. K., Rasmussen, K. Intracellular studies in the facial nucleus illustrating a simple new method for obtaining viable motoneurons in adult rat brain slices. Synapse. 3, 331-338 (1989).
  27. Pettit, D. L., Wang, S. S., Gee, K. R., Augustine, G. J. Chemical two-photon uncaging: anovel approach to mapping glutamate receptors. Neuron. 19, 465-471 (1997).
  28. Salomé, R., et al. Ultrafast random-access scanning in two-photon microscopy usingacousto-optic deflectors. J Neurosci Methods. 154, 161-174 (2006).
  29. Lechleiter, J. D., Lin, D. T., Sieneart, I. Multi-photon laser scanning microscopy using an acoustic optical deflector. Biophys J. 83, 2292-2299 (2002).

Play Video

Citer Cet Article
Camiré, O., Topolnik, L. Two-photon Calcium Imaging in Neuronal Dendrites in Brain Slices. J. Vis. Exp. (133), e56776, doi:10.3791/56776 (2018).

View Video