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Encyclopedia of Experiments

Co-coltivare cellule BC: coltivare cellule tumorali del seno con frammenti ossei per studiare la proliferazione delle cellule tumorali

Overview

Questo video descrive la coltivazione di cellule tumorali del seno adiacenti alle espianto ossee del femore per misurare la proliferazione e la colonizzazione delle cellule tumorali in un sistema di modelli di espianto del tessuto osseo umano.

Protocol

1. Co-coltivare cellule tumorali del seno adiacenti a frammenti ossei per misurare la proliferazione delle cellule mammari utilizzando BLI

  1. Prima dell'esperimento, preparare una sospensione contenente 2 x 105 cellule tumorali del seno/50 μl e preparare tappi di cera ossea per immobilizzare i frammenti ossei in coltura. Tagliare una punta in micropipetta P200 in 3 pezzi e utilizzare l'estremità stretta del pezzo più grande in modo "cookie cutter" per tagliare piccoli pezzi (~ 35 mg) di cera ossea. Utilizzare l'estremità larga del pezzo più piccolo per espellere i tappi di cera ossea in una piastra di Petri per la conservazione.
  2. Posizionare un pezzo di cera ossea a ore 12 di ogni pozzo e premere delicatamente verso il basso con un dito indice guantato sterile.
  3. Pipetta 50 μl di sospensione cellulare contenente 1 x 105 cellule tumorali del seno in DMEM-10% FBS + Pen-Strep al centro di ogni pozzo di una piastra da 6 porri. In alternativa, se lo si desidera, le cellule di semi in un modello disperso. Posizionare la piastra in un incubatore di coltura tissutale a 37 °C per 45 minuti per promuovere l'attacco cellulare.
  4. Posizionare 1 frammento osseo su 1 pezzo di cera ossea per ogni pozzo sperimentale e applicare una leggera pressione con il rongeur per fissarlo. Eseguire esperimenti in triplice copia in modo tale che 3 frammenti ossei di un dato campione di THR siano collocati nei primi tre pozzi, mentre i tre pozzi inferiori contengono cera ossea solo come controlli.
  5. Utilizzando una pipetta da 5 ml, esettare delicatamente e lentamente 5 ml di DMEM-10% FBS sul lato di ogni pozzo per evitare lo slogare le cellule mammari o i frammenti ossei. Posizionare la piastra in un incubatore di coltura tissutale a 37 °C per 20-24 ore.
  6. Per eseguire l'imaging a bioluminescenza (BLI) rimuovere la piastra dall'incubatore e aggiungere il substrato di luciferina (per ottenere una concentrazione di 300 μg/ml) ad ogni pozzo. Immagini la piastra immediatamente su una piattaforma di imaging IVIS utilizzando i seguenti parametri: f-stop di 1, piccolo binning, tempo di esposizione di 1 sec, livello D. Misura l'intensità del segnale di ciascuno e la luminosità media (fotoni / secondo / centimetro quadrato / steradiano).
  7. Utilizzare il software di imaging per definire le regioni di interesse (ROI) per quantificare la luminosità media per tutti i pozzi sperimentali e di controllo. Esportare i valori medi di luminosità in un foglio di Excel per eseguire statistiche e generare grafici.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
DMEM (1X) + GlutaMAX-l Life Technologies 10569-010 Supplement all DMEM with 10% fetal bovine serum and 1% Pen/ Strep
Fetal bovine serum Life Technologies 16000-044
Penicillin Streptomycin Life Technologies 15140-122
D-luciferin firefly, potassium salt 5 g (30 mg/ml) Life Technologies L-8220
6 Well TC-Treated Cell Culture Cluster Corning Incorporated 3516
Friedman-Pearson Rongeur Fine Science Tools 16021-14
Bone wax Surgical Specialties Corporation 903
IVIS 50 Imaging Platform Caliper Life Sciences/PerkinElmer
MCF-7 breast cancer cells ATCC HTB-22
MDA-MB-231 breast cancer cells ATCC HTB-26

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Fonte: Templeton, Z.S., et al.

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