Summary

小分子変調分化とその後のグルコース飢餓を用いたヒト人工多能性幹細胞からの高度に精製された心筋細胞の導出

Published: March 18, 2015
doi:

Summary

Here, we describe a robust protocol for human cardiomyocyte derivation that combines small molecule-modulated cardiac differentiation and glucose deprivation-mediated cardiomyocyte purification, enabling production of purified cardiomyocytes for the purposes of cardiovascular disease modeling and drug screening.

Abstract

人間の人工多能性幹細胞由来の心筋細胞(hiPSC-CMS)は基礎研究および翻訳アプリケーションで利用初代心筋細胞の不足に対処するための重要な細胞源となっている。心筋細胞へhiPSCsを区別するために、胚様体(EB)ベースの分化および増殖因子の誘導を含む様々なプロトコルが開発されている。しかしながら、これらのプロトコルは、精製された心筋細胞を生成する能力において非効率的であり、非常に可変である。最近では、Wnt /βカテニンシグナル伝達の小分子ベースのプロトコルを利用変調は、高効率で心臓分化を促進することが示された。このプロトコルでは、分化した細胞の50%よりも-60%が心筋トロポニン陽性心筋細胞を一貫して観察されたされた。さらに、心筋細胞の純度を高めるために、分化した細胞を特異的に代謝の差に基づいて、非心筋細胞を除去するためにグルコース飢餓に供した心筋細胞と非心筋細胞の間の。この選択戦略を使用して、我々は一貫して、分化した細胞の集団における非心筋細胞への心筋細胞の割合で30%を超える増加を得た。これらの高度に精製された心筋細胞は、in vitro疾患モデル研究及び薬物スクリーニングアッセイにおいてヒトIPSCベースからの結果の信頼性を高めるべきである。

Introduction

初代ヒト心筋細胞が原因侵襲心臓生検、単一の細胞に解離であり、なぜなら、培養中の乏しい長期の細胞生存の難しさの要件を得ることが困難である。初代ヒト心筋細胞の欠如を考えると、患者特異的なヒト誘導多能性幹細胞由来の心筋細胞(hiPSC-CM)技術は、基礎研究のための強力な代替的な心筋細胞源、ならびにこのような疾患モデルおよび薬物の臨床および翻訳アプリケーションと見なされている発見1。心筋細胞への多能性幹細胞を分化の初期の努力は、胚様体(EB)を用いた分化プロトコールを用いるが、EB中の細胞の、しばしば25%未満が、心筋2,3拍動しているため、この方法は、製造心筋細胞における非効率的である。比較的、AとBMP4、アクチビンサイトカインを用いて、単層ベースの分化プロトコルは、EBをより高い効率を示したが、このプロトコルはまだ比較的非効率的であり、ヒト多能性幹細胞株の限られた数4に高価な成長因子、および機能のみを必要とする。最近では、高効率、hiPSC単層ベースの心筋細胞分化プロトコルは、Wnt /βカテニンが5シグナリング変調することによって開発されました。これらのhiPSC-CMは、心筋トロポニンTとアルファアクチニン、心筋細胞6の標準マーカーである2筋節タンパク質を発現する。プロトコルは、ここに記述し、この小分子ベースの、フィーダー細胞を含まない、単層分化方法5,7を適応したものです。私たちは、7-10日間( 図1)の後にhiPSCsから心筋細胞を破って入手することができます。しかし、50%が細胞を破って、その結果心筋細胞の分化以下、一貫して免疫染色することは、心臓特異的トロポニンTおよびアルファ – アクチニンなどの心筋細胞特異的マーカーに対して陰性である非心筋細胞の人口の存在を示している。 FUに対するrtherが心筋細胞を精製し、非心筋細胞を排除し、不均一な分化した細胞集団は、複数の日のために極めて低グルコース培地( 図2)で処理することにより、グルコース飢餓に供した。この処理は、選択的に低グルコース環境8で生き残るために、一次エネルギー源として乳酸を代謝するために、心筋細胞の能力に起因する非心筋細胞ではなく、非心筋細胞を排除します。この精製工程の後に、非心筋細胞の心筋細胞の割合が40%の増加が観察される( 図3、図4)、これらの細胞は、下流の遺伝子発現解析、疾患モデル、および薬剤スクリーニングアッセイに使用することができる。

Protocol

注:このプロトコルで使用される全ての試薬 ​​のためのベンダー情報は、 表1に列挙されており、 マテリアルリスト。細胞と接触するすべての溶液および機器は、無菌でなければならず、かつ無菌操作はそれに応じて使用する必要があります。特に指定しない限り、加湿した37℃、5%CO 2インキュベーター内ですべての培養のインキュベーションを行う。?…

Representative Results

hiPSC分化の間の形態学的変化。 無フィーダープレートで培養hiPSCはフラット、二次元のコロニーとして成長した。約85%コンフルエントに達すると、hiPSCs分化6μMCHIR( 図1A)で処理した。細胞死の実質的な量の、正常および共通の現象は、CHIR処置の24時間後に観察された。 CHIR治療の2日後、hiPSCsは中胚葉の運命に分化し続けた。 hiPSCコロニー中の?…

Discussion

高度に精製されたhiPSC由来の心筋細胞を大量に取得することは基本的な心臓の研究だけでなく、臨床および翻訳アプリケーションのために重要である。心臓分化プロトコルは、心原性成長を利用し、胚様体に基づく方法からの移行はサンドイッチ法12をマトリックスへの、2因子 、および最終的に小分子変調単層ベースの方法5に、近年の大幅な改善を経験した。上記の…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported in part by the NIH/NHBI (U01 HL099776-5), the NIH Director’s New Innovator Award (DP2 OD004411-2), the California Institute of Regenerative Medicine (RB3-05129), the American Heart Association (14GRNT18630016) and the Endowed Faculty Scholar Award from the Lucile Packard Foundation for Children and the Child Health Research Institute at Stanford (to SMW). We also acknowledge funding support from the American Heart Association Predoctoral Fellowship 13PRE15770000, and National Science Foundation Graduate Research Fellowship Program DGE-114747 (AS).

Materials

Name Company Catalog number
Matrigel (9-12 mg/mL) BD Biosciences 354277
RPMI media Invitrogen 11835055
Glucose free RPMI media Invitrogen 11879-020
B27 Minus Insulin Invitrogen A1895601
B27 Supplement (w/ insulin) Invitrogen 17504-044
Pen-strep antibiotic Invitrogen 15140122
Fetal bovine serum BenchMark 100-106
DMSO Sigma D-2650
ROCK inhibitor Y-27632 EMD Millipore 688000
CHIR99021 Thermo Fisher 508306
IWR1 Sigma I0161
EDTA Invitrogen 15575-020
Accutase Millipore SCR005
Cell lifter Fisher 08-100-240
Cryovial Fisher (NUNC tubes) 375418
TrypLE Select Enzyme Invitrogen 12563-011

Referencias

  1. Sharma, A., Wu, J. C., Wu, S. M. Induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes for cardiovascular disease modeling and drug screening. Stem Cell Research & Therapy. 4 (6), 150 (2013).
  2. Kehat, I., et al. Human embryonic stem cells can differentiate into myocytes with structural and functional properties of cardiomyocytes. The Journal of Clinical Investigation. 108 (3), 407-414 (2001).
  3. Zhang, J., et al. Functional cardiomyocytes derived from human induced pluripotent stem cells. Circulation Research. 104 (4), e30-e41 (2009).
  4. Kattman, S. J., et al. Stage-specific optimization of activin/nodal and BMP signaling promotes cardiac differentiation of mouse and human pluripotent stem cell lines. Cell Stem Cell. 8 (2), 228-240 (2011).
  5. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (27), E1848-E1857 (2012).
  6. Sharma, A., et al. Human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes as an in vitro model for coxsackievirus B3-induced myocarditis and antiviral drug screening platform. Circulation Research. 115 (6), 556-566 (2014).
  7. Lian, X., et al. Directed cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells by modulating Wnt/beta-catenin signaling under fully defined conditions. Nature Protocols. 8 (1), 162-175 (2013).
  8. Tohyama, S., et al. Distinct metabolic flow enables large-scale purification of mouse and human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Cell Stem Cell. 12 (12), 127-137 (2013).
  9. Rodin, S., et al. Long-term self-renewal of human pluripotent stem cells on human recombinant laminin-511. Nature Biotechnology. 28 (6), 611-615 (2010).
  10. Li, X., Meng, G., Krawetz, R., Liu, S., Rancourt, D. E. The ROCK inhibitor Y-27632 enhances the survival rate of human embryonic stem cells following cryopreservation. Stem Cells And Development. 17 (6), 1079-1085 (2008).
  11. Burridge, P. W., et al. Chemically defined generation of human cardiomyocytes. Nature Methods. 11 (8), 855-860 (2014).
  12. Zhang, J., et al. Extracellular matrix promotes highly efficient cardiac differentiation of human pluripotent stem cells: the matrix sandwich method. Circulation Research. 111 (9), 1125-1136 (2012).
  13. Burridge, P. W., Keller, G., Gold, J. D., Wu, J. C. Production of de novo cardiomyocytes: human pluripotent stem cell differentiation and direct reprogramming. Cell Stem Cell. 10 (1), 16-28 (2012).

Play Video

Citar este artículo
Sharma, A., Li, G., Rajarajan, K., Hamaguchi, R., Burridge, P. W., Wu, S. M. Derivation of Highly Purified Cardiomyocytes from Human Induced Pluripotent Stem Cells Using Small Molecule-modulated Differentiation and Subsequent Glucose Starvation. J. Vis. Exp. (97), e52628, doi:10.3791/52628 (2015).

View Video