Summary

Мышь наивного CD4<sup> +</sup> Т-клеток Выделение и<em> В пробирке</em> Дифференциация в Т-клеточных подмножеств

Published: April 16, 2015
doi:

Summary

Naïve CD4+ T cells polarize to various subsets depending on the environment at the time of activation. The differentiation of naïve CD4+ T cells to various effector subsets can be achieved in vitro through the addition of T cell receptor stimuli and specific cytokine signals.

Abstract

Antigen inexperienced (naïve) CD4+ T cells undergo expansion and differentiation to effector subsets at the time of T cell receptor (TCR) recognition of cognate antigen presented on MHC class II. The cytokine signals present in the environment at the time of TCR activation are a major factor in determining the effector fate of a naïve CD4+ T cell. Although the cytokine environment during naïve T cell activation may be complex and involve both redundant and opposing signals in vivo, the addition of various cytokine combinations during naive CD4+ T cell activation in vitro can readily promote the establishment of effector T helper lineages with hallmark cytokine and transcription factor expression. Such differentiation experiments are commonly used as a first step for the evaluation of targets believed to promote or inhibit the development of certain CD4+ T helper subsets. The addition of mediators, such as signaling agonists, antagonists, or other cytokines, during the differentiation process can also be used to study the influence of a particular target on T cell differentiation. Here, we describe a basic protocol for the isolation of naïve T cells from mouse and the subsequent steps necessary for polarizing naïve cells to various T helper effector lineages in vitro.

Introduction

Концепция различных линий или подмножеств CD4 + Т-хелперов (Th) клетки была примерно со второй половины 20-го века 1. Распознавание антигеном в присутствии костимуляторных сигналов приводит в нескольких раундах клеточной пролиферации и дифференцировки в конечном итоге в эффектора Th-клеток. Тип Th клетки, генерируемого в ходе этого процесса зависит от окружающей среды цитокинов, присутствующих во время активации 2. Первоначально наивные Th клетки думал поляризовать в 2 различных линий следующих T-клеточного рецептора (TCR) активации, костимулирующего CD28 перевязки и цитокинов сигнализации. Тип 1-хелперы (Th1) характеризуются эффекторной производства цитокина IFN & gamma; а также их потребности в ИЛ-12 сигнализации в процессе дифференциации 3,4. В конце концов выяснилось, что дифференцированные клетки Th1 имеют генетический профиль, который наиболее отчетливо характеризуется бу выражение T коробки фактора семья транскрипции, Tbx21 (T-бет), который считается мастером регулятором генетической программы Th1 5. Кроме того, ИЛ-12, а также может способствовать IFN & gamma; Т-прогноз выражение 6,7. В иммунного ответа, Th1-клетки играют важную роль в защите организма против внутриклеточных патогенов, а также сильных промоторов аутоиммунного воспалительного процесса. В отличие от этого, тип 2-хелперы (Th2) требуют IL-4 по их развитием и эффекторные цитокины, включая IL-4, IL-5 и IL-13, имеют важное значение для приведения ответов В-клеточные и являются патогенными при аллергии 8, 9. Как Th1 клеток, Th2 клетки были обнаружены, чтобы выразить свою собственную регулятор мастер транскрипции, называют GATA-3 10,11. Интересно, что присутствие поляризующих цитокинов и генерации конкретного Th линии являются антагонистами к развитию других 2,12, предполагая, что только подмножество частности че может стать доминирующим в ходе иммунного ReОтклик.

Поскольку идентификации клонов Th1 и Th2, дальнейшая работа показала, еще более уникальным подмножества Т-хелперных клеток, в том числе фолликулярной помощника (TFH), IL-9-продуцирующих (Th9), и IL-22-продуцирующие (Th22) (последнее рассмотрены в 13). Для целей в пробирке экспериментов дифференциации, этот протокол будет сосредоточена только на два дополнительных Th подмножества, называемые регуляторные Т-клетки (Treg) и Ил-17 по производству CD4 + Т-клетки (TH17). CD25 + регуляторных Т-клеток может происходить естественным (nTreg) в тимусе; Наивные клетки Th также могут быть вызваны (iTreg), чтобы стать регулирования на периферии (обзор 14,15). Оба типа регуляторных Т-клеток выразить характеристика транскрипционный фактор, названный forkhead P3 коробка (FOXP3), которая имеет решающее значение для их эффекторных механизмов подавления, которые включают растворимые противовоспалительное производства посредника, IL-2 потребления, а ячейку контактно-зависимые механизмы 14,15. Отсутствие Foxp3 Результаты выражение в тяжелой, полиорганной аутоиммунных расстройств называется иммунной нарушения, так polyendocrinopathy, энтеропатия, с Х-хромосомой синдром (IPEX), что свидетельствует о критической роли этого Th подмножества в решении воспаление и регулирования периферической толерантности к собственным антигенам 16. В пробирке, наивные CD4 + Т-хелперы до регулировать Foxp3 и стать привержены программы Treg при стимуляции IL-2 и TGF-β 14,15. Там может быть умеренной до значительной пластичности в CD4 + Т-клеточных поколений, особенно при рассмотрении только продукцию цитокинов (обзор в 17,18). Тем не менее, для целей в пробирке протоколов дифференциации, мы будем обсуждать каждое из подмножеств как уникального рода.

Недавно подмножество Th17 клеток, которые производит цитокин IL-17 была определена в качестве уникального линии с про-воспалительных функций, особенно патогенные во время аутоиммунного воспаления 19-21, Th17 клетки экспрессируют уникальный транскрипционный фактор, названный ретиноидов, связанные с гамма-рецептор сирота т (RORγt), который координирует генетическую программу 22 Th17. TGF-beta является важным для генерации Th17 линии через индукции RORγt. Тем не менее, влияние сигналов TGF-beta, как полагают, вызывают только Th17 приверженность при синергизма с IL-6 (обзор в 12). Дальнейшие исследования показали, что множество других сигналов, которые могут положительно регулируют Th17 приверженность, в том числе ИЛ-1β, увеличение натрия и TLR сигнализации 23-26. Другие отчеты предполагают, что патогенные клетки Th17 в естественных условиях являются те, которые фактически обходить сигнализации TGF-beta, а вместо этого полагаются на сочетание ИЛ-1, ИЛ-6 и ИЛ-23 для их дифференциации 27. Таким образом, Th17 клетки могут быть получены из различных сигнальных путей; для целей настоящего протокола, часто используемых (TGF-beta и IL-6) путь для Th17 коммитированиебудут представлены.

Протоколы дифференцирования, описанные ниже, для всех эффекторных линий зависит от фиксированного антитела, стимулов для TCR и CD28 на протяжении всего хода эксперимента. Тем не менее, другие показали, что TCR-активации с антиген-представляющих клеток 28 или сшивающий анти-CD3 и анти-CD28 антител с антителом хомячка в течение 2 дней 29 также весьма эффективным средством индукции генерацию различных Th подмножеств. Протокол, представленные здесь основывается на ранее сообщалось о способах выделения мышиных CD4 + Т-клеток из вторичных лимфоидных органов 30 и генерации клетки Th17 31. Одним из основных отличий является то, что этот протокол основан на использовании клеточного сортера, чтобы изолировать наивных CD4 + Т-клеток от лимфоидных тканей. Тем не менее, многие компании сейчас предлагают для экспресс разделения, который может обогатить для простых CD4 + Т-клеток, которые могут быть в состоянии обойти требование пили сортировки в зависимости от эксперимента. Методы и реагенты, представленные в этом протоколе то, что мы обычно используем и нахожу, чтобы быть наиболее эффективным. Однако, имейте в виду, что альтернативные реагенты и методологии существуют для многих из шагов, представленных ниже, и это до индивидуального лаборатории, чтобы определить, что будет работать лучше для своих целей.

Protocol

Все экспериментальные процедуры выполняются с использованием протоколов, утвержденных в офисе окружающей среды и безопасности в Розалинд Франклин университета медицины и науки. C57BL / 6 мышей (полученных от NCI), используемый для этого протокола были размещены под конкретного патогена у?…

Representative Results

Момент времени для анализа дифференциации может изменяться в зависимости от состояния Th быть проверены, а также прочности активации Т-клеточного рецептора. После 2-3 дней дифференциации, клетки могут быть визуализированы с помощью световой микроскопии, чтобы определить степень пролиф…

Discussion

В то время как селезенка содержит наивные Th клетки, доля этой группы населения в лимфатических узлах гораздо выше. Неправильное выявление и устранение лимфатических узлов в этом протоколе приведет к плохим выходом наивных клеток. Это может быть особенно трудно у пожилых мышей и мышей-?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы поблагодарить всех членов лаборатории Рейнольдса, при Розалинд Франклин университета медицины и науки, а также лабораторию Чен Донг в Университете Техаса MD Anderson онкологическом центре для оптимизации этого протокола. Эта работа была поддержана грантом на JMR из Национального института здоровья (K22AI104941).

Materials

Complete RPMI: Warm in a 37 oC water bath before use
RPMI 1640 Media Life Technologies 11875119
10 % FBS Life Technologies 26140-079
1000X 2-mercaptoethanol Life Technologies 21985023
100X Pen/Strep Life Technologies 15140122
100X L-glutamine Life Technologies 25030081
120 micron nylon mesh Amazon CMN-0120-10YD Cut into 2 cm2 squares and autoclave
Alternative: 100 micron cell strainers Fisher 08-771-19 Alternative to cutting nylon mesh
autoMACS running buffer Miltenyi 130-091-221 Warm in a 37 oC water bath before use
autoMACS rinsing solution Miltenyi 130-091-222 Warm in a 37 oC water bath before use
CD4 beads Miltenyi 130-049-201
ACK lysis buffer Life Technologies A10492-01
Cytokines:
Human (h) IL-2 Peprotech 200-02
Recombinant mouse (rm) IL-4 Peprotech 214-14
rmIL-6 R & D Systems 406-ML-025
rmIL-12 Peprotech 210-12
hTGFb R & D Systems 240-B-010
Antibodies:
2C11 (anti-CD3) BioXcell BE0001-1
37.51 (anti-CD28) BioXcell BE0015-1
11B11 (anti-IL-4) BioXcell BE0045
XMG1.2 (anti-IFNg) BioXcell BE0055
anti-CD62L-FITC BioLegend 104406 Use at 1:100
anti-CD25-PE BioLegend 102008 Use at 1:400
anti-CD4-PerCP BioLegend 100434 Use at 1:1000
anti-CD44-APC BioLegend 103012 Use at 1:500
Phorbol  12-myristate 13 acetate (PMA) Sigma-Aldrich P-8139 Prepare a stock at 0.1 mg/ml in DMSO and freeze aliquots at -20 oC
Ionomycin Sigma-Aldrich I-0634 Prepare a stock at 0.5 mg/ml in DMSO and freeze aliquots at -20 oC
Brefeldin A eBioscience 00-4506-51 Use at 1:1000

References

  1. Mosmann, T. R., Cherwinski, H., Bond, M. W., Giedlin, M. A., Coffman, R. L. Two types of murine helper T cell clone. I. Definition according to profiles of lymphokine activities and secreted proteins. J Immunol. 136 (7), 2348-2357 (1986).
  2. Dong, C., Flavell, R. A. Cell fate decision: T-helper 1 and 2 subsets in immune responses. Arthritis Res. 2 (3), 179-188 (2000).
  3. Hsieh, C. S., et al. Development of TH1 CD4+ T cells through IL-12 produced by Listeria-induced macrophages. Science. 260 (5107), 547-549 (1993).
  4. Seder, R. A., Gazzinelli, R., Sher, A., Paul, W. E. Interleukin 12 acts directly on CD4+ T cells to enhance priming for interferon gamma production and diminishes interleukin 4 inhibition of such priming. Proc Natl Acad Sci U S A. 90 (21), 10188-10192 (1993).
  5. Szabo, S. J., et al. A novel transcription factor, T-bet, directs Th1 lineage commitment. Cell. 100 (6), 655-669 (2000).
  6. Afkarian, M., et al. T-bet is a STAT1-induced regulator of IL-12R expression in naive CD4. T cells. Nat Immunol. 3 (6), 549-557 (2002).
  7. Zhu, J., et al. The transcription factor T-bet is induced by multiple pathways and prevents an endogenous Th2 cell program during Th1 cell responses. Immunity. 37 (4), 660-673 (2012).
  8. Le Gros, G., Ben-Sasson, S. Z., Seder, R., Finkelman, F. D., Paul, W. E. Generation of interleukin 4 (IL-4)-producing cells in vivo and in vitro: IL-2 and IL-4 are required for in vitro generation of IL-4-producing cells. J Exp Med. 172 (3), 921-929 (1990).
  9. Swain, S. L., Weinberg, A. D., English, M., Huston, G. IL-4 directs the development of Th2-like helper effectors. J Immunol. 145 (11), 3796-3806 (1990).
  10. Zhang, D. H., Cohn, L., Ray, P., Bottomly, K., Ray, A. Transcription factor GATA-3 is differentially expressed in murine Th1 and Th2 cells and controls Th2-specific expression of the interleukin-5 gene. J Biol Chem. 272 (34), 21597-21603 (1997).
  11. Zheng, W., Flavell, R. A. The transcription factor GATA-3 is necessary and sufficient for Th2 cytokine gene expression in CD4 T cells. Cell. 89 (4), 587-596 (1997).
  12. Dong, C. TH17 cells in development: an updated view of their molecular identity and genetic programming. Nat Rev Immunol. 8 (5), 337-348 (2008).
  13. Jiang, S., Dong, C. A complex issue on CD4(+) T-cell subsets. Immunol Rev. 252 (1), 5-11 (2013).
  14. Rudensky, A. Y. Regulatory T cells and Foxp3. Immunol Rev. 241 (1), 260-268 (2011).
  15. Sakaguchi, S., Yamaguchi, T., Nomura, T., Ono, M. Regulatory T cells and immune tolerance. Cell. 133 (5), 775-787 (2008).
  16. Barzaghi, F., Passerini, L., Bacchetta, R. Immune dysregulation, polyendocrinopathy, enteropathy, x-linked syndrome: a paradigm of immunodeficiency with autoimmunity. Front Immunol. 3, 211 (2012).
  17. Shea, J. J., Paul, W. E. Mechanisms underlying lineage commitment and plasticity of helper CD4 T cells. Science. 327 (5969), 1098-1102 (2010).
  18. Zhou, L., Chong, M. M., Littman, D. R. Plasticity of CD4+ T cell lineage differentiation. Immunity. 30 (5), 646-655 (2009).
  19. Harrington, L. E., et al. Interleukin 17-producing CD4+ effector T cells develop via a lineage distinct from the T helper type 1 and 2 lineages. Nat Immunol. 6 (11), 1123-1132 (2005).
  20. Langrish, C. L., et al. IL-23 drives a pathogenic T cell population that induces autoimmune inflammation. J Exp Med. 201 (2), 233-240 (2005).
  21. Park, H., et al. A distinct lineage of CD4 T cells regulates tissue inflammation by producing interleukin 17. Nat Immunol. 6 (11), 1133-1141 (2005).
  22. Ivanov, I. I., et al. The orphan nuclear receptor RORgammat directs the differentiation program of proinflammatory IL-17+ T helper cells. Cell. 126 (6), 1121-1133 (2006).
  23. Chung, Y., et al. Critical regulation of early Th17 cell differentiation by interleukin-1 signaling. Immunity. 30 (4), 576-587 (2009).
  24. Reynolds, J. M., Martinez, G. J., Chung, Y., Dong, C. Toll-like receptor 4 signaling in T cells promotes autoimmune inflammation. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (32), 13064-13069 (2012).
  25. Reynolds, J. M., et al. Toll-like receptor 2 signaling in CD4(+) T lymphocytes promotes T helper 17 responses and regulates the pathogenesis of autoimmune disease. Immunity. 32 (5), 692-702 (2010).
  26. Wu, C., et al. Induction of pathogenic TH17 cells by inducible salt-sensing kinase SGK1. Nature. 496 (7446), 513-517 (2013).
  27. Ghoreschi, K., et al. Generation of pathogenic T(H)17 cells in the absence of TGF-beta signalling. Nature. 467 (7318), 967-971 (2010).
  28. Veldhoen, M., Hocking, R. J., Atkins, C. J., Locksley, R. M., Stockinger, B. TGFbeta in the context of an inflammatory cytokine milieu supports de novo differentiation of IL-17-producing T cells. Immunity. 24 (2), 179-189 (2006).
  29. Avni, O., et al. T(H) cell differentiation is accompanied by dynamic changes in histone acetylation of cytokine genes. Nat Immunol. 3 (7), 643-651 (2002).
  30. Matheu, M. P., Cahalan, M. D. Isolation of CD4+ T cells from mouse lymph nodes using Miltenyi MACS purification. J Vis Exp. (9), (2007).
  31. Bedoya, S. K., Wilson, T. D., Collins, E. L., Lau, K., Larkin, J. Isolation and th17 differentiation of naive CD4 T lymphocytes. J Vis Exp. (79), e50765 (2013).

Play Video

Cite This Article
Flaherty, S., Reynolds, J. M. Mouse Naïve CD4+ T Cell Isolation and In vitro Differentiation into T Cell Subsets. J. Vis. Exp. (98), e52739, doi:10.3791/52739 (2015).

View Video