Özet

基质辅助激光解吸/电离成像质谱分析用硬棕榈籽的制备

Published: June 30, 2023
doi:

Özet

该协议旨在描述用于MALDI-IMS分析的低含水量硬种子样品切片的详细指南,保持分析物的原始分布和丰度,并提供高质量的信号和空间分辨率。

Abstract

基质辅助激光解吸/电离成像质谱法(MALDI-IMS)用于鉴定天然环境中的化合物。目前,MALDI-IMS在临床分析中经常使用。尽管如此,对于更好地应用这种技术来了解植物组织中化合物的生理信息,仍然存在一个很好的视角。然而,对于植物材料的特定样品,制备可能具有挑战性,因为MALDI-IMS需要薄片(12-20μm)才能进行适当的数据采集和成功分析。从这个意义上说,之前,我们开发了一种样品制备方案来获得 Euterpe oleracea (巴西莓)硬种子的薄片,从而能够通过MALDI-IMS进行分子定位。

在这里,我们表明所开发的方案适用于制备来自同一属的其他种子。简而言之,该方案基于将种子浸没在去离子水中24小时,用明胶嵌入样品,并将它们切片在适应的低温恒温器中。然后,对于基质沉积,使用 1:1 (v/v) 2,5-二羟基苯甲酸 (DHB) 和含 0.1% 三氟乙酸的甲醇溶液以 30 mg/mL 的速度将 xy 运动平台耦合到电喷雾电离 (ESI) 针喷雾。使用软件处理 E. precatoria 和 E. edulis 种子数据以绘制其代谢物模式。

己糖低聚物在样品切片中作图,以证明这些样品的方案的充分性,因为已知这些种子含有大量的甘露聚糖,甘露聚糖是己糖甘露糖的聚合物。结果,鉴定了己糖低聚物的峰,以 (Δ = 162 Da) 的 [M + K]+ 加合物为代表。因此,先前为 E. oleracea 种子量身定制的样品制备方案也使另外两种硬棕榈种子的MALDI-IMS分析成为可能。简而言之,该方法可以成为研究植物材料形态解剖学和生理学的宝贵工具,特别是来自抗切割样品的研究。

Introduction

基质辅助激光解吸/电离成像质谱 (MALDI-IMS) 是一种强大的方法,可实现二维生物分子分配,对可电离化合物进行非靶向研究,并确定其空间分布,尤其是在生物样品 1,2。二十年来,该技术能够同时检测和鉴定脂质、肽、碳水化合物、蛋白质、其他代谢物和合成分子,例如治疗药物 3,4。MALDI-IMS有助于在组织样品表面进行化学分析,无需提取、纯化、分离、标记或染色剂。然而,为了成功分析,该技术的一个关键步骤是样品制备,特别是在植物组织中,由于环境适应,植物组织被特化并修饰为广泛的复杂器官5

由于植物组织固有的物理化学特性,需要一种适应方案来适应MALDI-IMS分析的要求,并在切片制备过程中保持组织的原始形状6,7。对于非常规样品(如种子),既定方案8不适用,因为这些组织具有刚性的细胞壁和低含水量,这很容易导致切片碎裂并导致化合物离域9

我们的研究小组已经发表了关于分子图谱的实验数据和用于 MALDI-IMS 分析的 açaí (Euterpe oleracea Mart.) 种子101112 的适应方案,这是在可租用的巴西莓果肉13 生产过程中大量产生的副产品。这个想法是开发一种原 位绘制巴西 莓种子中不同代谢物的方案,帮助提出目前尚未进行商业探索的这种农业废物的可能用途。然而,由于巴西莓种子的抗性,有必要定制一个方案,以便从MALDI-IMS分析中获得适当的样品切片。

在这种背景下,具有重要经济意义的巴西莓果肉推动了具有相似感官特征的Euterpe属棕榈树的其他果实的日益商业化。作为巴西莓14,15 的替代品,在工业规模上生产的两种新兴棕榈树的果实是生长在亚马逊干旱地区的 E. precatoria(称为 açaí-do-amazonas)和 E. edulis(称为 juçara),这是典型的大西洋森林。然而,食用 açaí-do-amazonas 和 juçara 会导致相同的抗性和不可食用种子的积累,这些种子尚未得到利用,并且迄今为止尚未对其详细的化学成分进行研究。

因此,我们在这里证明,先前设计的方案可用于分析 E . precatoria E. edulis 种子,以便通过 MALDI-IMS 进行分子定位,证明是一种强大的工具,可用于分析这些资源的组成,并有助于确定它们潜在的生物技术用途。此外,此处提供的详细说明可以帮助其他有类似困难的人制备用于MALDI-IMS分析的抗性材料。

Protocol

Euterpe precatoria 种子由 Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia(巴西马瑙斯)慷慨捐赠, Euterpe edulis 种子由 Silo – Arte e Latitude Rural(巴西雷森德)在工业脱浆过程后慷慨捐赠。将种子在室温下保存在密封的塑料盒中。 1. 基质辅助激光解吸/电离成像质谱(MALDI-IMS) 种子切片协议让每个物种的三个种子在去离子水中静置24小时。 第二天?…

Representative Results

所设计的方案能够对 E. precatoria 和 E. edulis 种子进行 MALDI-IMS 分析。因此,我们可以确认碳水化合物的分子量和聚合度(DP)作为部分结构解析。MALDI-IMS分析提供的分子信息(图1和图2)显示了代表己糖低聚物(Δ = 162 Da)的[M + K]+加合物的峰,而无需向基质中添加盐。在两个种子组织中鉴定出己糖二聚体 (m/z 381?…

Discussion

植物由具有特定生化功能的特殊组织组成。因此,MALDI-IMS的样品制备方案必须根据具有特定物理化学性质的各种植物组织进行设计,因为样品必须保持其原始的分析物分布和丰度,以获得高质量的信号和空间分辨率8

在进行MALDI-IMS分析之前,首要考虑因素是正确收集和储存样品。然而,在植物中,样品制备通常因分析的组织而异。例如,植物组织中的细胞?…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作由塞拉皮海拉研究所 (Serra-1708-15009) 和卡洛斯·查加斯·菲略支持里约热内卢州研究基金会 (FAPERJ-JCNE-SEI-260003/004754/2021) 资助。塞拉皮海拉研究所和国家科学技术发展委员会(CNPq)为费利佩·洛佩斯·布鲁姆博士和加布里埃尔·马丁斯博士(机构能力建设计划/INT/MCTI)颁发了奖学金。高等教育人员改进协调会 (CAPES) 因向 Davi M. M. C. da Silva 先生颁发硕士奖学金而受到认可。马萨斯生物分子光谱中心(CEMBIO-UFRJ)因提供MALDI-IMS分析服务而受到认可,并感谢Alan Menezes do Nascimento先生和由MCTI/SISNANO/INT-CENANO-CNPQ 442604资助的Centro de Caracterização em Nanotecnologia para Materiais e Catálise(CENANO-INT)进行基本成分分析。

Materials

1 mL Gastight Syringe Model 1001 TLL, PTFE Luer Lock Hamilton Company 81320
2,5-Dihydroxybenzoic acid Sigma Aldrich Co, MO, USA 149357
APCI needle Bruker Daltonik, Bremen, Germany 602193
AxiDraw V3 xy motion platform Evil Mad Scientist, CA, USA 2510
Carbon double-sided conductive tape
Compass Data Analysis software  creation of mass list
Compressed air
copper double-faced adhesive tape 3M, USA 1182-3/4"X18YD
Cryostat CM 1860 UV Leica  Biosystems, Nussloch, Germany
Diamond Wafering Blade 15 HC
Everhart-Thornley detector
FlexImaging Bruker Daltonik, Bremen, Germany image acquisition
FTMS Processing Bruker Daltonik, Bremen, Germany data calibration
Gelatin from bovine skin Sigma Aldrich Co, MO, USA G9391
High Profile Microtome Blades Leica 818 Leica  Biosystems, Nussloch, Germany 0358 38926
indium tin oxide coated glass slide Bruker Daltonik, Bremen, Germany 8237001
Inkscape Inkscape Project c/o Software Freedom Conservancy, NY, USA
IsoMet 1000 precision cutter Buehler, Illinois, USA
Methanol J.T.Baker 9093-03
Mili-Q water 18.2 MΩ.cm
Oil vacuum pump
Optimal Cutting Temperature Compound Fisher HealthCare, Texas, USA 4585
Parafilm "M" Sealing Film Amcor HS234526B
Quanta 450 FEG FEI Co, Hillsboro, OR, USA
SCiLS Lab (Multi-vendor support) MS Software  Bruker Daltonik, Bremen, Germany
Software INCA Suite 4.14 V Oxford Instruments, Ableton, UK
Solarix 7T Bruker Daltonik, Bremen, Germany
Syringe pump kdScientific, MA, USA 78-9100K
Trifluoroacetic acid Sigma Aldrich Co, MO, USA 302031
X-Max spectrometer Oxford Instruments, Ableton, UK

Referanslar

  1. Buchberger, A. R., DeLaney, K., Johnson, J., Li, L. Mass spectrometry imaging: a review of emerging advancements and future insights. Analytical Chemistry. 90 (1), 240-265 (2018).
  2. Heeren, R. M. A. MALDITechniques in Mass Spectrometry Imaging. Encyclopedia of Spectroscopy and Spectrometry. , (2017).
  3. Shariatgorji, M., Svenningsson, P., Andrén, P. E. Mass spectrometry imaging, an emerging technology in neuropsychopharmacology. Neuropsychopharmacology. 39 (1), 34-49 (2014).
  4. Zaima, N., Hayasaka, T., Goto-Inoue, N., Setou, M. Matrix-assisted laser desorption/ionization imaging mass spectrometry. International Journal of Molecular Sciences. 11 (12), 5040-5055 (2010).
  5. Qin, L., et al. Recent advances in matrix-assisted laser desorption/ionisation mass spectrometry imaging (MALDI-MSI) for in Situ analysis of endogenous molecules in plants. Phytochemical Analysis. 29 (4), 351-364 (2018).
  6. Bhandari, D. R., et al. High resolution mass spectrometry imaging of plant tissues: Towards a plant metabolite atlas. Analyst. 140 (22), 7696-7709 (2015).
  7. Boughton, B. A., Thinagaran, D., Sarabia, D., Bacic, A., Roessner, U. Mass spectrometry imaging for plant biology: a review. Phytochemistry Reviews. 15 (3), 445-488 (2016).
  8. Dong, Y., et al. Sample preparation for mass spectrometry imaging of plant tissues: a review. Frontiers in Plant Science. 7, 60 (2016).
  9. Zhang, Y. X., Zhang, Y., Shi, Y. P. A reliable and effective sample preparation protocol of MALDI-TOF-MSI for lipids imaging analysis in hard and dry cereals. Food Chemistry. 398, 133911 (2023).
  10. Brum, F. L., Martins, G. R., Mohana-Borges, R., da Silva, A. S. The acquisition of thin sections of açaí (Euterpe oleracea Mart.) seed with elevated potassium content for molecular mapping by mass spectrometry imaging. Rapid Communications in Mass Spectrometry. , e9474 (2023).
  11. Martins, G. R., et al. Chemical characterization, antioxidant and antimicrobial activities of açaí seed (Euterpe oleracea Mart.) extracts containing A- and B-type procyanidins. LWT. 132, 109830 (2020).
  12. Martins, G. R., et al. Phenolic profile and antioxidant properties in extracts of developing açaí (Euterpe oleracea Mart.) seeds. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 70 (51), 16218-16228 (2022).
  13. Jorge, F. T. A., Silva, A. S. A., Brigagão, G. V. Açaí waste valorization via mannose and polyphenols production: techno-economic and environmental assessment. Biomass Conversion and Biorefinery. , (2022).
  14. Carvalho, L. M. J., Esmerino, A. A., Carvalho, J. L. V. Jussaí (Euterpe edulis): a review. Food Science and Technology. 42, (2022).
  15. Yamaguchi, K. K. d. L., Pereira, L. F. R., Lamarão, C. V., Lima, E. S., Veiga-Junior, V. F. d. Amazon acai: chemistry and biological activities: A Review. Food Chemistry. 179, 137-151 (2015).
  16. Wu, R., et al. Copper adhesive tape attached to the reverse side of a non-conductive glass slide to achieve protein MALDI-imaging in FFPE-tissue sections. Chemical Communications. 57 (82), 10707-10710 (2021).
  17. Dufresne, M., Patterson, N. H., Norris, J. L., Caprioli, R. M. Combining salt doping and matrix sublimation for high spatial resolution MALDI imaging mass spectrometry of neutral lipids. Analytical Chemistry. 91 (20), 12928-12934 (2019).
  18. Aguiar, M. O., de Mendonça, M. S. Morfo-anatomia da semente de Euterpe precatoria Mart (Palmae). Revista Brasileira de Sementes. 25, 37-42 (2003).
  19. Panza, V., Láinez, V., Maldonado, S. Seed structure and histochemistry in the palm Euterpe edulis. Botanical Journal of the Linnean Society. 145 (4), 445-453 (2004).
  20. Alves, V. M., et al. Provenient residues from industrial processing of açaí berries (Euterpe precatoria Mart): nutritional and antinutritional contents, phenolic profile, and pigments. Food Science and Technology. 42, (2022).
  21. Inada, K. O. P., et al. Screening of the chemical composition and occurring antioxidants in jabuticaba (Myrciaria jaboticaba) and jussara (Euterpe edulis) fruits and their fractions. Journal of FunctionalFoods. 17, 422-433 (2015).
  22. Monteiro, A. F., Miguez, I. S., Silva, J. P. R. B., Silva, A. S. High concentration and yield production of mannose from açaí (Euterpe oleracea Mart.) seeds via mannanase-catalyzed hydrolysis. Scientific Reports. 9 (1), 10939 (2019).

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Martins, G. R., Brum, F. L., da Silva, D. M. M. C., Barbosa, L. C., Mohana-Borges, R., da Silva, A. S. Preparation of Hard Palm Seeds for Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization-Imaging Mass Spectrometry Analysis. J. Vis. Exp. (196), e65650, doi:10.3791/65650 (2023).

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