JoVE Journal > Bioengineering
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Results
Discussion
Disclosures
Acknowledgements
Materials
References
Türkçe

Automatically Generated
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Bioengineering

2D İnsan Kök Hücre Kaynaklı Kardiyomiyositlerde Kardiyak Kontraktilite Modülasyon Tedavisinin Değerlendirilmesi

Published: December 16, 2022
doi:
10.3791/64848
, , ,
1Office of Science and Engineering Laboratories, Center for Devices and Radiological Health,U.S. Food and Drug Administration

Summary

Burada, video tabanlı mikroskopi ile birlikte esnek bir substrat üzerine kaplanmış, 2D insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyosit (hiPSC-CM) monokatmanlarını kullanan non-invaziv bir kardiyak tıbbi cihaz kontraktilitesi değerlendirme yöntemini gösteriyoruz. Bu araç, kardiyak elektrofizyoloji cihazlarının kasılma özelliklerinin in vitro değerlendirilmesinde yararlı olacaktır.

Abstract

İnsan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyositler (hiPSC-CM’ler) şu anda çoklu in vitro uygulamalar için araştırılmakta ve düzenleyici sunumlarda kullanılmaktadır. Burada, kullanımlarını kardiyak tıbbi cihaz güvenliği veya performans değerlendirmelerine genişletiyoruz. Esnek hücre dışı matriks (ECM) bazlı hidrojel substrat üzerine kaplanmış sağlam bir şekilde büzülen 2D hiPSC-CM’lerin tek katmanlarında kardiyak tıbbi cihaz kontraktil özelliklerini değerlendirmek için yeni bir yöntem geliştirdik. Bu araç, kardiyak elektrofizyoloji cihazı sinyallerinin insan kalp fonksiyonu üzerindeki etkilerinin (örneğin, kasılma özellikleri) standart laboratuvar ekipmanı ile ölçülmesini sağlar. 2D hiPSC-CM monokatmanları, 48 kuyucuklu bir formatta esnek bir hidrojel substrat üzerinde 2-4 gün boyunca kültürlendi.

HiPSC-CM’ler standart kardiyak kontraktilite modülasyonu (CCM) tıbbi cihaz elektrik sinyallerine maruz bırakıldı ve kontrol (yani sadece pacing) hiPSC-CM’lerle karşılaştırıldı. 2D hiPSC-CM’lerin temel kasılma özellikleri, piksel yer değiştirmeye dayalı video tabanlı algılama analizi ile ölçülmüştür. Esnek hidrojel substrat üzerine kaplanmış CCM ile uyarılmış 2D hiPSC-CM’ler, artmış pik kasılma genliği ve hızlandırılmış kasılma ve gevşeme kinetik de dahil olmak üzere, taban çizgisine göre (yani CCM stimülasyonundan önce) önemli ölçüde gelişmiş kontraktil özellikler göstermiştir. Ayrıca, esnek hidrojel substratın kullanılması, sağlıklı ve hastalıklı hiPSC-CM’lerde video tabanlı kardiyak-uyarma kontraksiyon kaplin okumalarının (yani elektrofizyoloji, kalsiyum işleme ve kasılma) çoklanmasını sağlar. Kardiyak elektrofizyolojik sinyallerin insan kardiyak kontraksiyonu üzerindeki etkilerinin doğru tespiti ve miktarının belirlenmesi, kardiyak tıbbi cihaz geliştirme, optimizasyon ve riskten arındırma için hayati öneme sahiptir. Bu yöntem, klinik olmayan kardiyak tıbbi cihaz güvenliği veya etkinlik testi için değerli olması gereken kardiyak sinsityumun kasılma özelliklerinin sağlam bir şekilde görselleştirilmesini ve nicelleştirilmesini sağlar. Bu makalede, 2D hiPSC-CM hidrojel substrat monokatmanları üretme metodolojisi ayrıntılı olarak açıklanmaktadır.

Introduction

Amerika Birleşik Devletleri nüfusu yaşlandıkça, kalp yetmezliği hastalarının sayısı artmaya devam ediyor ve doğrudan tıbbi maliyetler 1,2. Kalp yetmezliğini tedavi etmek için yeni tedaviler ve bu tür tedavileri test etmek için yenilikçi klinik olmayan metodolojiler geliştirmeye kritik bir ihtiyaç vardır. İnsan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyositler (hiPSC-CM’ler), terapötik gelişim sürecine yardımcı olmak için in vitro bir araç olarak önerilmiş ve düzenleyici sunumlarda kullanılmıştır 3,4. Bununla birlikte, standart sert 2D kültür koşullarında (yani, geleneksel doku kültürü plastik veya cam) kaplandığında sağlam kasılma özelliklerinin bulunmaması nedeniyle kontraktilite çalışmaları için yaygın kullanımları sınırlandırılmıştır5,6,7,8. Daha önce, sağlam görünür kasılma özellikleri 9 üretmek için izole edilmiş tek hiPSC-CM’lerin esnek bir hidrojel substrat üzerine kaplanmasının faydasınıgöstermiştik. İzole hiPSC-CM’lerin, yeni izole edilmiş yetişkin tavşan ventriküler kardiyomiyositlerininkilerle karşılaştırılabilir kontraktil özelliklere sahip olduğunu gösterdik. Ayrıca, bu yöntemin farmakolojik ajanlara kontraktil yanıtları değerlendirmedeki yararlılığını gösterdik7. Ayrıca, diğer çalışmalar bu teknolojiyi temel bilim ve hastalık modellemesi için mekanik değerlendirmelere uygulamıştır10,11,12. Burada, bu metodoloji 2D hiPSC-CM monokatmanlarına genişletilmiştir ve fizyolojik olarak ilgili kardiyak kontraktilite modülasyonu (CCM) tıbbi cihaz elektrik sinyallerinin in vitro olarak değerlendirilmesindeki faydası gösterilmiştir.

CCM, uyarıcı olmayan elektrofizyolojik sinyallerin kardiyak siklusun mutlak refrakter periyodu sırasında miyokarda iletildiği bir intrakardiyak kalp yetmezliği tedavisidir13,14. İnsan kalp hücresi modellerinde CCM’yi değerlendirmek için tekrarlanabilir yöntemler eksiktir. Önceki çalışmalar, CCM kasılma yanıtını değerlendirmek için çeşitli kardiyak hücre modelleri kullanmıştır. Taze izole edilmiş tavşan ventriküler kardiyomiyositlerinin CCM stimülasyonuna kalsiyum ve kasılma genliğinde geçici bir artış ile yanıt verdiğini in vitro olarak gösterdik15. İzole köpek ventriküler kardiyomiyositlerinde yapılan bir başka çalışmada, hücre içi kalsiyum geçici genliğinin CCM kaynaklı olarak arttığıgösterilmiştir 16. Bununla birlikte, CCM çalışmalarının çoğunluğu ex vivo ve in vivo hayvan preparatları kullanmıştır. Bu çalışmaların birbirleriyle ilişkilendirilmesi zordur, çünkü çeşitli CCM nabız parametreleri ve tür17 uygularlar. İzole edilmiş bir tavşan papiller modelindeki bir çalışma, CCM kaynaklı kontraktilitenin8,18 arttığını ve bir dizi tüm kalp çalışmasının CCM kaynaklı kontraktil fonksiyonunarttığını göstermiştir 19,20,21. Bu çalışmalar önemli mekanik içgörüler sağlamıştır. Bununla birlikte, CCM de dahil olmak üzere in vitro kardiyak EP kontraktil çalışmaları için tekrarlanabilir insan modellerinin eksikliği vardır. Bu amaçla, birkaç 2D ve 3D hiPSC modeli geliştirdik ve kasılma özelliklerinin CCM kaynaklı gelişimini parametreye bağlı bir şekilde gösterdik. Ayrıca, CCM kaynaklı inotropik etkilerin kısmen nöronal girdi ve β-adrenerjik sinyalleme 8,17,22 aracılık ettiği bulunmuştur. Yine de, CCM tedavisinin mekanizmaları hakkında daha fazla şey bilinmesi gerekir ve sözleşmeli insan kardiyomiyositlerinin kullanılması bu sonuca ulaşmada yardımcı olabilir. Bu nedenle, yeni CCM cihazlarını ve sinyallerini değerlendirmek, düzenleyici süreci hızlandırmak, hayvan modelleri üzerindeki yükü azaltmak ve cihaz geliştiricisinin karar vermesine yardımcı olmak için insan klinik olmayan araçlar geliştirmeye önemli bir ihtiyaç vardır 8,17,23,24. Herhangi bir laboratuvara aktarılabilen ve maliyetleri düşürmek için standart ekipman ve düşük hücre gereksinimleri kullanan kolay, kendin yap protokolleri geliştirmek önemlidir. Bu yöntem, CCM stimülasyonunun insan kardiyomiyosit fonksiyonu üzerindeki etkilerini aydınlatır ve CCM güvenliği veya etkinliği hakkında önemli bilgiler sağlar17. Burada, sağlık ve hastalıkta akut kardiyak elektrofizyoloji tıbbi cihaz (yani CCM) kontraktil yanıtlarını ölçmek için standartlaştırılmış klinik olmayan bir araç üretmek için esnek bir hidrojel substrat üzerinde 2D hiPSC-CM monokatmanları üretme yöntemini açıklıyoruz.

Protocol

1. Plakaların ve ortamların hazırlanması NOT: Tipik bir hücre dışı matris (ECM) bazlı hidrojel alikot, -20 ° C’de depolanan steril bir 1.5 mL tüp içinde ~ 200 μL’dir. Steril bir doku kültürü davlumbazında, her bir oyuğa 2 mL% 0.1 jelatin (Malzeme Tablosu) aktararak steril bir 6 delikli plaka hazırlayın. Kapağı 6 delikli plakaya yerleştirin ve kaplanmış plakanın en az 1 saat boyunca 37 ° C’de inkübe olmasına izin verin. HiPSC-CM’leri esnek hidrojel substrat üzerine tohumlamadan bir gün önce, buzdolabında buz üzerinde bir hidrojel (Malzeme Tablosu) aliquot çözülür. 500 mL RPMI 1640, 10 mL 50x B-27 Takviyesi ve 5 mL penisilin-streptomisin9’u karıştırarak kardiyomiyosit ortamını (Malzeme Tablosu) hazırlayın. 2. Kriyokorunmuş hiPSC-CM’lerin tohumlanması HiPSC-CM’leri esnek hidrojel substrat üzerine tohumlamadan iki gün önce, hiPSC-CM’leri %0,1 jelatin kaplı steril 6 delikli plakalar üzerine önceden plakalayın. Standart bir çözme protokolü 9,25 kullanarak hiPSC-CM’leri çözün. Daha sonra, üreticinin talimatlarına göre kuyu başına toplam 1.500.000 hiPSC-CM (Malzeme Tablosu) plakası (Şekil 1A)26. HiPSC-CM’lerin kriyoprezervasyondan 37 ° C ve% 5 CO 2’de iyileşmesini sağlamak için hiPSC-CM’leri standart kardiyomiyosit ortamında 2-4 gün boyuncakültürleyin. Harcanan ortamı her 48 saatte bir% 100 kardiyomiyosit ortamı ile yenileyin. 3. Önceden kaplanmış hiPSC-CM’lerin ayrıştırılması ve sayılması Ayrışmadan önce hiPSC-CM’lerin durumunu kontrol edin. HiPSC-CM’lerin sağlığını değerlendirin, canlılık ve istikrarlı dayak sağlayın.NOT: HiPSC-CM popülasyonunun saflığı önemlidir (örneğin, > kardiyak troponin T)7. Hidrojel substratın kardiyomiyosit olmayan hücreler tarafından bozulmasını azaltmak için bir kardiyomiyosit seçim yöntemi (örneğin, metabolik seçim veya sıralama) önerilir25,26. HiPSC-CM’leri CaCl 2 veya MgCl2 (Malzeme Tablosu) olmadan D-PBS kuyusu başına 4 mL ile2 kat yıkayın. D-PBS’yi aspire edin, her bir oyuğa 1 mL oda sıcaklığı ayrışma reaktifi ekleyin ve ardından 37 ° C’de 15 dakika boyunca inkübe edin. Steril 15 mL konik tüpe 10 mL kardiyomiyosit ortamı ekleyin. HiPSC-CM’leri 6 delikli plakadan 1.000 μL pipetle ayırın (Şekil 1B). Hücre süspansiyonunu 15 mL konik tüp26’ya ekleyin. Artık hiPSC-CM’leri toplamak için kuyuyu 1 mL taze kardiyomiyosit ortamı ile durulayın ve bunları 15 mL konik tüpe ekleyin. Konik tüpün son hacmini 15 mL’ye getirin. 5 dakika (200 × g) santrifüj. Süpernatantı 1 mL işaretine kadar çıkarın. Kardiyomiyosit ortamındaki hücreleri 5 mL’lik son bir hacme kadar askıya alın. HiPSC-CM’leri manuel veya otomatik bir hücre sayacı ile sayın. Esnek hidrojel substratlar hazırlanırken hiPSC-CM süspansiyonunu oda sıcaklığında inkübe edin (maksimum 30 dakika). 4. Esnek hidrojel substratların hazırlanması 1 μL’de ayarlanmış 20 μL’lik bir pipet, 20 μL pipet uçları (ör. 20 μL) ve steril 48 delikli cam alt plaka hazırlayın. Hidrojel substratları yapmadan önce bir kronometre/zamanlayıcının hazır olduğundan emin olun. Steril doku kültürü davlumbazında, ECM bazlı hidrojel substratı tüpe hafifçe dokunarak karıştırın ve hemen tekrar buzun üzerine yerleştirin. Ardından, ilk hidrojel substrat kaplanmadan hemen önce kronometreyi / zamanlayıcıyı başlatın – bu sıfır zamanıdır. Pipet ucunu soğutmak için hidrojel substratın 1 μL’si ~3x yukarı ve aşağı pikap eder. Seyreltilmemiş hidrojel substratın ~1 μL’sini, pipeti 45° açıyla tutarak 48 delikli plakanın her bir kuyucuğunun dibine yatay olarak uygulayın (Şekil 1C, Şekil 2A ve Şekil 3A). Deneyleri 40x büyütme 7,9,17,27’de gerçekleştirirken substratın tanımlanmasına yardımcı olmak için tüm hidrojel substratlarını her bir kuyucukta aynı yönde (Şekil 2 ve Şekil 3) plakalayın.NOT: Her ~1 μL hattı bir hidrojel substrattır (Şekil 3). Tipik olarak, 48 kuyu hazırlamak ~ 5 dakika sürer. Yatay olarak eğilmiş bir mikro plaka standının (örneğin, 30 °) kullanılması, kuyunun tabanının ve hidrojel substratın daha iyi görülmesini sağlayabilir. Kuyunun tüm uzunluğuna (yani soldan sağa) gittiğinizden emin olun. Kısa hidrojel substratlar çok kalın olabilir, böylece substrat stabilitesini azaltır. Hidrojel substratın pipet ucunda kurumasına izin vermeyin. Bu durumda, hızlı bir şekilde yeni bir uca geçin ve hemen devam edin. Alternatif olarak, soğutulmuş pipet uçları kullanılabilir. ECM bazlı hidrojel substrat, buz üzerinde olmadığında hızla polimerize olabilir. Bir seferde birkaç kuyunun hazırlanması (örneğin, 10) önerilmektedir. Ek olarak, sahte bir 48 kuyucuklu plakada pratik yapmanız önerilir. Kapağı 48 delikli plakaya yerleştirin ve hücreleri eklemeden önce hidrojel substratların steril doku kültürü davlumbazındaki oda sıcaklığında 8-10 dakika kuluçkaya yatmasına izin verin (Şekil 2B).NOT: Önerilen kuluçka sürelerine uymak önemlidir. 10 dakikadan fazla bir kuluçka süresi, sert hidrojel substratlara ve görünür kasılmalara yol açmayacaktır. 8 dakikadan daha kısa bir kuluçka süresi, çöken substratlara yol açabilir. 1.000 μL’lik bir pipet kullanarak, hiPSC-CM’leri derhal doğrudan hidrojel substratların üzerine damla damla tohumlayın, kuyu başına ~30.000 canlı hiPSC-CM, ~200 μL kardiyomiyosit ortamının düşük orta hacminde (Şekil 2B ve Şekil 3B).NOT: Bu işlem, hidrojel substrat polimerizasyonunu durdurur ve hiPSC-CM’lerin7,9,17,27 substratında olmasını sağlar. Kapağı plakaya yerleştirin ve hiPSC-CM’lerin hidrojel substrata yapışmasını sağlamak için hiPSC-CM’lerin steril doku kültürü davlumbazında oda sıcaklığında 10-15 dakika boyunca bozulmadan inkübe etmesine izin verin (Şekil 2C). Her bir oyuğa yavaşça ~ 100 μL taze kardiyomiyosit ortamı ekleyin (son hacim: kuyucuk başına ~ 300 μL). Kapağı plakaya yerleştirin ve 2-4 gün boyunca% 5 CO2 olan 37 ° C’de bir inkübatöre aktarın. Kasılma deneyleri yapılmadan önce her 24 saatte bir% 100 ortamı yenileyin.NOT: Doğru morfoloji için hiPSC-CM’leri görsel olarak inceleyin; Kaplamadan hemen sonra, hiPSC-CM’ler yuvarlak görünmelidir (Şekil 3B). Tohumlamadan sonraki 2. günde, sağlam görünür kasılma (Ek Video S2) ile akıcı bir 2D hiPSC-CM tek katmanlı sinsityum gözlenecektir (Şekil 3C) (Ek Video S1). 5. Kasılma kaydı ve analizi Aşağıdakileri içeren Tyrode çözeltisi olan CCM test ortamını hazırlayın (mmol / L cinsinden): CaCl 2 0.5, NaCl 134, KCl 5.4, MgCl2 1, glikoz 10 ve HEPES 10, pH NaOH ile 7.4’e ayarlanır ve bir su banyosunda 37 ° C’ye dengelenir.NOT: CCM tahlil penceresini geliştirmek için submaksimal hücre dışı kalsiyum (0,5 mM) kullanılır. 37 °C ve %5 CO2’ye dengelemek için mikroskop ve çevresel kontrol odasını açın. Kardiyomiyosit ortamını 48 delikli plakadan çıkarın ve her bir oyuğa 600 μL CCM tahlil ortamı ile iki kez hafifçe durulayın. Kuyu başına 300 μL CCM tahlil ortamı ekleyin ve 48 kuyucuklu plakayı çevresel kontrol odasındaki mikroskop üzerine yerleştirin. Elektrotları yerleştirin ve hücreleri 5 dakika boyunca dengeleyin. Kasılma videolarını kaydetmek için video tabanlı mikroskopi kullanın. Video kayıt yazılımını açın ve 100 kare / sn kare hızını ayarlayın. hiPSC-CM tek katmanının merkezine yakın bir ilgi alanı (ROI) seçin.NOT: hiPSC-CM monokatmanlarının kenarına yakın bir yatırım getirisi seçmeyin, çünkü bu kasılma kayıtları için kararsız olabilir. Daha sonra, alan, 2D hiPSC-CM monolayer’larını elektriksel olarak hızlandırmak için hücreleri ticari bir darbe jeneratörü (Malzeme Tablosu) ile uyarır. Temel darbe parametreleriyle 1 Hz’de 1,5x eşiğinde hiPSC-CM’leri hızlandırın (örneğin, 2 ms uyaran darbe süresi ~14 V/cm olan monofazik kare dalga tempolu darbeler)17. En az beş vuruş 17,28 için yalnızca (yani, CCM’den önce) (Şekil 1D) daralma videosunu hızlandırarak taban çizgisini kaydedin. Ardından, hiPSC-CM tek katmanını deneysel bir elektrik sinyaliyle uyarın (Şekil 1D). Bu protokolü takip etmek için standart CCM stimülasyon parametrelerini kullanın: 5.14 ms faz süresine (20.56 ms toplam süre), ~28 V / cm (faz genliği), sıfır fazlar arası aralık ve 30 ms gecikme (yani, pacing darbesinin sonundan CCM darbesinin başlangıcına kadar geçen süre) iki simetrik bifazik darbesi (Şekil 1D) 29,30 tıklatın ve CCM kaynaklı kasılma videosunu en az beş vuruş için kaydedin. CCM sinyalini kapatın, temel bir tempo darbesiyle uyarın ve en az beş vuruş için iyileşme döneminin (yani CCM’den sonra) bir daralma videosunu kaydedin. Kasılma videolarını otomatik olarak analiz etmek ve temel kasılma özelliklerini (örneğin, kasılma genliği, büzülme eğimi, gevşeme eğimi, tepe noktasına kadar geçen süre, taban çizgisine kadar geçen süre% 90 ve büzülme süresi% 50) ölçmek için standart büzülme yazılımı kullanın 7,17,31,32. Substrat üzerine kaplandıktan sonra 2-14. günlerden itibaren kontraktil deneyler için esnek hidrojel substrat üzerindeki 2D hiPSC-CM’leri kullanın.

Representative Results

Bu protokolde açıklanan, esnek bir hidrojel substrat üzerinde gözle görülür şekilde daralan 2D hiPSC-CM monokatmanları oluşturmak için basit ve sağlam bir araçtır. Kasılma özelliklerinin ölçümü, kontraktilite analiz yazılımı ile birlikte video tabanlı kayıt ile gerçekleştirilir. Bu, kasılma genliği, kasılma eğimi, gevşeme eğimi, zirveye kadar geçen süre, başlangıç çizgisine kadar geçen süre% 90 ve kasılma süresi% 50 dahil olmak üzere kardiyomiyosit kontraktilitesinin temel parametrelerinin nicelleştirilmesini sağlar. Model, çeşitli “sağlıklı” donörlerden gelen hiPSC-CM’lerin (Şekil 4) temel kontraktil özelliklerini karakterize etmek için kullanılır ve kardiyak elektrofizyoloji tıbbi cihaz sinyallerinin (yani, CCM) değerlendirilmesine genişletilebilir. Standart CCM stimülasyon parametrelerinin uygulanması (Şekil 1D)29,30, in vitro olarak gelişmiş kontraktil özellikler ile sonuçlanmıştır (Şekil 5 ve Tablo 1)17. Ayrıca, bu yöntemin, hücre dışı kalsiyum konsantrasyonlarının modülasyonunun CCM stimülasyonu olan ve olmayan insan kontraktil özellikleri üzerindeki etkilerini değerlendirmek için kullanılabileceğini gösterdik (Şekil 6)17. Kasılmanın beklenen başlangıç kalsiyum bağımlılığı 7,17 ve kardiyomiyosit monokatmanı seviyesinde kalsiyum duyarlılığında CCM kaynaklı bir artış gözlenmiştir. Ek olarak, β-adrenerjik sinyal yolunun farmakolojik sorgulanması (Şekil 7), CCM kaynaklı inotropik etkilerin kısmen β-adrenerjik sinyal17 aracılık ettiğini ortaya koymuştur. Ayrıca, bu araç, CCM’nin hastalık durumları bağlamındaki etkisini anlamak için dilate kardiyomiyopati (DCM) 33,34,35 (Şekil 8) dahil olmak üzere hastaya özgü hastalık kardiyomiyositlerine genişletilebilir; Gerçekten de, burada test edilen CCM “dozunda” artmış kontraktil genlik ve hızlandırılmış kontraksiyon ve gevşeme kinetiği gözlenmiştir (Şekil 8). Laboratuvarımızda CCM taklit cihazı bulunmakla birlikte, burada kullanılan metodoloji o sisteme özgü değildir ve diğer kardiyak elektrofizyoloji cihazlarına da uygulanabilir. Resim 1: 2B hiPSC-CM in vitro CCM modelinin şematik özeti. (A) HiPSC-CM’ler, jelatin (%0,1) kaplı 6 delikli plakalar üzerine tek katmanlı formatta önceden kaplanmıştır. (B) Kültürde 2 gün sonra, hiPSC-CM’ler ayrışır ve esnek bir hidrojel substrat üzerine kaplanmak üzere hazırlanır. (C) İzole edilmiş hiPSC-CM’ler, 48 kuyucuklu bir formatta (solda) dizilmiş hidrojel substratlar üzerinde yüksek yoğunlukta kaplanır ve (0.5 mM) hücre dışı kalsiyum Tyrode çözeltisinde (sağda) test edilir. (D) HiPSC-CM’leri uyarmak için ticari bir darbe üreteci ve standart klinik CCM darbe parametreleri29,30 (sağda) kullanılır; kardiyak fonksiyon video tabanlı analiz ile değerlendirilir (solda). (E) CCM’den önce (temel: 5 V), CCM sırasında (CCM: 10 V) ve CCM’den sonra (kurtarma: 5 V) temsili büzülme kayıtları. Bu rakam Feaster ve ark.17’den yeniden basılmıştır. Kısaltmalar: hiPSC-CM = insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyosit; CCM = kardiyak kontraktilite modülasyonu. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın. Şekil 2: Esnek hidrojel substrat kaplama ve tohumlama şeması. (A) Tamamen çözülmüş, seyreltilmemiş ECM bazlı hidrojel substrat, kuyu başına 1 μL hidrojel substrat (sağ panel) ile steril 48 delikli bir plakaya (sol panel) uygulanır. (B) Hidrojel substratın oda sıcaklığında 8-10 dakika (sağ panel) inkübe edilmesine izin verilir, ardından yüksek yoğunluklu hiPSC-CM’ler düşük orta hacimde (~ 200 μL) (sol panel) kaplanır. (C) 10-15 dakikalık inkübasyondan sonra, her bir kuyucuğa (sol panel) ortam eklenir ve plakalar standart bir doku kültürü inkübatörüne (sağ panel) taşınır. Kısaltmalar: ECM = hücre dışı matris, hiPSC-CM = insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyosit; RT = oda sıcaklığı. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın. Şekil 3: Hücre dışı matris bazlı hidrojel substrat. (A) Substrat kuyuya uygulandıktan hemen sonra 48 delikli cam alt plakanın bir kuyusundaki temsili hidrojel substrat (hücre yok). (B) HiPSC-CM’ler tohumlandıktan sonra zaman 0. (C) HiPSC-CM’ler tohumlandıktan 24 saat sonra zaman. Bu panel Feaster ve ark.17’den yeniden basılmıştır. Beyaz oklar, hidrojel substratın kenarını, 4x büyütmeyi gösterir. Ölçek çubuğu = 1 mm. Kısaltma: hiPSC-CM = insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyosit. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın. Şekil 4: 2D hiPSC-CM tek katmanlı kontraktil özelliklerinin karakterizasyonu. (A) 1 Hz’de (5 V) tempolu 2D hiPSC-CM’lerin temsili büzülme kaydı. (B) Bir kasılma döngüsünü gösteren temsili kasılma izleri. (C) Özet çubuğu grafikleri. Veriler ortalama ± SEM. n = 18. Kısaltma: hiPSC-CM = insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyosit. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın. Şekil 5: CCM’nin 2D hiPSC-CM kontraktil özellikleri üzerindeki akut etkisi. (A) CCM öncesi (5 V), CCM sırasında (10 V) ve CCM’den sonra (5 V) temsili kasılma kaydı. (B) Anlık etkilerin temsili kasılma izleri (yani, CCM vuruşundan önceki son, ilk CCM vuruşu ve CCM vuruşundan sonraki ilk vuruş, + ile gösterilir). (C) Anlık etkilerin özet çubuk grafikleri. Yüzde değişim, veriler ortalama SEM ±. n = 23. *p < 0,05, **p < 0,01, ***p < 0,001, ****p 0,0001 <. Bu rakam Feaster ve ark.17’den yeniden basılmıştır. Kısaltmalar: hiPSC-CM = insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyosit; CCM = kardiyak kontraktilite modülasyonu. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın. Şekil 6: Hücre dışı kalsiyum modülasyonunun CCM yanıtı üzerindeki etkisi. (A) CCM’den önce (5 V), CCM sırasında (10 V) ve CCM’den sonra (5 V) her grup için ani etkilerin temsili kasılma izleri; hiPSC-CM’ler 0.25-2 mM’lik artan hücre dışı kalsiyum (Cao) konsantrasyonlarına maruz kaldı. (B-D) CCM’nin kasılma özelliklerinin (yani genlik ve kinetik) kalsiyum duyarlılığı üzerindeki etkisini gösteren gözü yönlendirmek için dönüştürülmüş veriler (sigmoidal) (tepe eğimi = 1.0). n = grup başına 6-8. Bu rakam Feaster ve ark.17’den yeniden basılmıştır. Kısaltmalar: hiPSC-CM = insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyosit; CCM = kardiyak kontraktilite modülasyonu. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın. Şekil 7: Farmakolojik zorluk. CCM’den önce (5 V), CCM sırasında (10 V) ve CCM’den sonra (5V) her grup için temsili büzülme izleri; hiPSC-CM’ler (A) araç veya (B) metoprolol (2 μM) ile ön işlemden geçirildi. (C,D) Her koşul için özet çubuğu grafikleri. Yüzde değişim, veriler ortalama SEM ±. n = grup başına 10. *p < 0,05, **p < 0,01, ***p < 0,001, ****p 0,0001 <. Bu rakam Feaster ve ark.17’den yeniden basılmıştır. Kısaltmalar: hiPSC-CM = insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyosit; CCM = kardiyak kontraktilite modülasyonu. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın. Şekil 8: CCM’nin hastalıklı 2D hiPSC-CM’lerin kontraktil özellikleri üzerindeki akut etkisi. (A) DCM L35P için temsili kasılma izi, kontrol tabanı (öncesi, 6 V) ve DCM L35P artı CCM (10 V). (B) Özet çubuğu grafikleri. Yüzde değişim, veriler SEM ± ortalamadır. n = 3. *p 0,05 <, **p 0,01 <. Kısaltmalar: hiPSC-CM = insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyosit; CCM = kardiyak kontraktilitenin modülasyonu; DCM = dilate kardiyomiyopati. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın. Ek Video S1: Hücre dışı matris tabanlı hidrojel üzerindeki hiPSC-CM’lerin zaman aşımı. Esnek hidrojel substrat üzerine kaplanmış iki boyutlu hiPSC-CM’ler; Zaman: 0-90 saat; 48 delikli cam alt plakanın bir kuyusu; 4x büyütme. HiPSC-CM’ler yatay tek katmanlı bir sinsityum oluşturur (yani soldan sağa). Ölçek çubuğu = 1 mm. Bu videoyu indirmek için lütfen buraya tıklayın. Ek Video S2: hücre dışı matris bazlı hidrojel üzerindeki hiPSC-CM’ler. Esnek hidrojel substrat üzerine kaplanmış iki boyutlu hiPSC-CM’ler; Zaman: ~24 saat; 48 delikli cam alt plakanın bir kuyusu; 4x büyütme. HiPSC-CM’ler tek katmanlı morfoloji oluşturur ve ~ 24 saat sonraki kaplamada sağlam büzülme gösterir. Ölçek çubuğu = 1 mm. Bu video Feaster ve ark.17’den alınmıştır. Bu videoyu indirmek için lütfen tıklayınız. Parametre CCM Sonra Bolluk 16 ± %4** 4 ± 5% Zirveye Ulaşma Süresi -20 ± %9* 7 ± %5 Zirveye Ulaşma Süresi 90% -22 ± %8* 6 ± 5% Taban çizgisine kadar geçen süre -8 ± %5 4 ± 4% Taban çizgisine kadar geçen süre 90% -12 ± %6* 5 ± %5 Kasılma Süresi -13 ± %6 3 ± 5% Kasılma Süresi -6 ± 5 % 3 ± 5% Kasılma Süresi 0 ± 5% 3 ± 4% N 23 23 Tablo 1: Kasılma özellikleri. CCM öncesine göre yüzde değişim (5 V); veriler, CCM (10 V) sırasında ve CCM’den (5 V) sonra her gruptaki tüm vuruşlar için SEM’± ortalamadır. n = 23. *p < 0,05, **p < 0,01, ***p < 0,001, ****p 0,0001 <. Bu tablo Feaster et al.17’den yeniden basılmıştır.

Discussion

Burada özetlenen protokol, ticari reaktifler7,17 ile esnek bir hücre dışı matris (ECM) bazlı hidrojel substrat üzerinde sağlam bir şekilde büzülen 2D hiPSC-CM monokatmanları oluşturmak için bir yöntemi açıklamaktadır. Esnek hidrojel substrat üzerine tohumlanan hiPSC-CM’ler canlı kalır ve gelişmiş kontraktil özelliklere sahiptir7. Bu teknik, standart laboratuvar ekipmanlarına ve yeteneklerine dayanır7. Protokolde, ECM bazlı hidrojel substrat ile çalışma da dahil olmak üzere, detaylara dikkat edilmesi gereken birkaç kritik adım vardır. Potansiyel bir sorun, ortamda serum varlığıdır. Bu, hiPSC-CM’lerin birleşik tek katmanlı bir tabaka yerine ağlar (örneğin, endotelyal / vasküler ağlar) oluşturmasına neden olabilir; Bu nedenle, esnek hidrojel hiPSC-CM monokatmanlarının kurulması sırasında serumsuz bir ortam önerilir (yani, gün 0 ila gün 4). Benzer şekilde, aynı anda çok fazla hidrojel substrat hazırlamak, operatör yorgunluğu nedeniyle zayıf veya düzensiz substratlara neden olabilir. Hızlı çalışmak önemli olsa da, her hidrojel substratın bütünlüğü kritik öneme sahiptir. Benzer şekilde, hiPSC-CM’leri dikkatlice tohumlamalı ve ortamı değiştirmelidir; bu zorla yapılmamalıdır. Ortamı değiştirirken, hidrojel substratını veya hücreleri bozmamak için kuyunun üst kenarından yavaşça eklenmelidir. Standart 2D hiPSC-CM kültürlerinde olduğu gibi (yani, geleneksel doku kültürü plastik veya cam), düşük yoğunlukta kaplama, eksik tek katmanlı oluşuma neden olacaktır. Hidrojel substrat üzerinde olduklarını doğrulamak için hiPSC-CM’leri görsel olarak incelemek ve doğru zamanlamayı sağlamak için bir zamanlayıcı kullanmak önemlidir. Ayrıca, 2D hiPSC-CM monokatmanlarının hidrojel substrat üzerinde 14 günden fazla kültürlenmesi, ECM özelliklerine ve substrat üreticisinin talimatlarına bağlı olarak tek katmanlı bozulmaya neden olabilir.

Mevcut yöntemde dikkate alınması gereken birkaç sınırlama vardır. İlk olarak, bu protokolde kullanılan hücreler ticari bir hiPSC-CMs sağlayıcısındandı ve bu hücreler elektriksel olarak bağlanmış hücrelerin bir sinsityumunu oluşturur. Sinsityum, üç kardiyak alt tipin hepsinden (yani ventriküler, atriyal ve nodal) hiPSC-CM’lerin bir karışımını içerir17. Çalışmalar, alt tipe özel bir hiPSC-CM popülasyonundan (yani,% 100 ventriküler veya% 100 atriyal) yararlanabilir. İkincisi, bu yöntem sadece hiPSC-CM’leri kullanırken, kardiyak fibroblastlar, endotel hücreleri ve nöronlar dahil olmak üzere miyosit olmayanlar hiPSC-CM işlevselliğini artırabilir22,36. Üçüncüsü, 2D hiPSC-CM’ler, spontan atma, amorfik morfoloji ve inotropik yanıt eksikliği de dahil olmak üzere nispeten olgunlaşmamış kardiyomiyositlerin çeşitli özelliklerini gösterir 8,37. Dördüncüsü, bu protokol sağlam bir şekilde büzülen 2D hiPSC-CM monokatmanları üretirken, mühendislik kalp dokuları (EKT’ler) gibi işlevsel olarak geliştirilmiş 3D hiPSC-CM modellerinin, fizyolojik kalsiyum konsantrasyonları8,38 altında gelişmiş bir CCM kaynaklı kontraktil yanıt ile sonuçlanması muhtemeldir. Son olarak, burada açıklanan protokol 48 kuyucuklu bir format için tasarlanmıştır. Bununla birlikte, optimizasyon ve otomasyonun dahil edilmesiyle, bu yüksek verimli bir biçime (örneğin, 96 delikli veya 384 delikli plakalar) ölçeklendirilebilir.

HiPSC-CM çalışmaları için mevcut altın standart, geleneksel sert 2D kültür koşullarıdır (yani, doku kültürü plastik veya cam). Elektrofizyoloji3 ve kalsiyum işleme39 çalışmaları için yararlı olsa da, geleneksel metodoloji minimum kontraktil özellikler 5,6,7 ile sonuçlanır. Sonuç olarak, geleneksel katı 2D kültür koşulları, CCM kontraktil etkilerinin değerlendirilmesine uygun değildir8. İşlevsel olarak geliştirilmiş 3D hiPSC-CM ECT yöntemleri38 teknik olarak zorlayıcıdır, zaman alıcıdır ve her laboratuvarda kolayca bulunamayan sofistike ekipmanlar gerektirir. Bu protokolde, 3D ECT yöntemlerinden veya uzun vadeli, geleneksel 2D yöntemlerden 7,40,41’den daha kısa bir zaman diliminde sağlam bir şekilde daralan 2D hiPSC-CM monokatmanları oluşturmak için basit bir metodoloji açıklıyoruz. Ayrıca, burada kullanılan reaktifler, hidrojel substrat ve hiPSC-CM’ler de dahil olmak üzere ticari olarak temin edilebilir ve her ikisi de önemli ölçüde lottan partiye tutarlılığa sahiptir. Çıkarılabilir platin tel elektrotlar (elektrot arası mesafe: 2,0 mm, genişlik: 1,0 mm) kullanırken, çeşitli elektrot malzemeleri ve konfigürasyonları in vitro 8,15,17,18,22 CCM kontraktil değerlendirmelerine uygundur. Benzer şekilde, 7,31,32 kasılmavideolarının analizini sağlayan birden fazla otomatik yazılım mevcuttur.

Kardiyak tıbbi cihaz kontraktilitesini değerlendirmek için klinik olmayan yöntemlerin çoğunluğu büyük ölçüde pahalı in vivo hayvan modellerine (örneğin, köpekler veya domuzlar) ve teknik olarak zorlu papiller kas şeritlerine (örneğin, tavşanlar) dayanır18. Bu yazıda, kardiyak elektrofizyoloji tıbbi cihaz sinyallerinin kontraktilite üzerindeki etkilerini değerlendirmek için bir insan in vitro modeli tanımlanmıştır. Bu araç, hayvan çalışmalarına bağımlılığı azaltabilir ve kardiyak elektrofizyoloji cihazlarının kontraktil özelliklerinin in vitro değerlendirilmesi için yararlı olabilir.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma kısmen, Oak Ridge Bilim ve Eğitim Enstitüsü tarafından yönetilen Cihazlar ve Radyolojik Sağlık Merkezi’ndeki Araştırma Katılım Programı’na, ABD Enerji Bakanlığı ile ABD Gıda ve İlaç İdaresi arasındaki kurumlar arası bir anlaşma ile atanmasıyla desteklenmiştir. Yazarlar Richard Gray, Trent Robertson ve Anna Avila’ya önerileri ve teknik yardımları için teşekkür eder. Çalışma, ABD Gıda ve İlaç İdaresi, Bilim ve Mühendislik Laboratuvarları Ofisi tarafından finanse edildi.

Materials

0.1% Gelatin STEMCELL Technologies 7903 Pre-plating Culture Substrate
48-well Plate MatTek  P48G-1.5-6-F Hydrogel Substrate hiPSC-CM Culture, Glass
6-well Plate Thermofisher 140675 hiPSC-CM Culture, Plastic
B-27 Supplement, with insulin Invitrogen 17504-044 Cardiomyocyte Media
Calcium Chloride dihydrate (CaCl2) Fisher Scientific c70-500 Tyrode’s solution
CellOPTIQ Platform and Software  Clyde Biosciences Contraction Recording and Analysis
Conical tube 15 mL Corning  352099 hiPSC-CM Dissociation
Digital CMOS Camera Hamamatsu C11440-42U30 Contraction Video Recording
D-PBS Life Technologies 14190-144 Cell Wash
Environmental Control Chamber OKOLAB INC H201-K-FRAME Environmental Regulation
Glucose  Sigma-Aldrich G8270-1kg Tyrode’s solution
Hemocytometer Fisher Scientific 22-600-107 hiPSC-CM Counting
HEPES Sigma-Aldrich H3375 Tyrode’s solution
iCell Cardiomyocytes Plating Medium Fujifilm Cellular Dynamic, Inc.  M1001 hiPSC-CM Plating Media
iCell Cardiomyocytes2, 01434 Fujifilm Cellular Dynamic, Inc.  R1017 hiPSC-CMs
Incubator (37 °C, 5% CO2) Thermofisher 50116047 Maintain hiPSC-CMs
Inverted Microscope Olympus IX73 Imaging hiPSC-CMs
Magnesium Chloride hexahydrate (MgCl2)  Fisher Scientific m33-500 Tyrode’s solution
Matrigel Growth Factor Reduced Basement Membrane Matrix Corning  356230 Flexible Hydrogel Substrate
Microcentrifuge tubes 1.5 ml Fisher Scientific 05-408-129 Hydrogel Substrate Aliquot
Model 4100 Isolated High Power Stimulator AM-Systems Model 4100  Pulse Generator
MyCell Cardiomyocytes DCM LMNA L35P, 01016 Fujifilm Cellular Dynamic, Inc.  R1153 DCM hiPSC-CMs
Pen-Strep Invitrogen 15140-122 Cardiomyocyte Media
Pipette L-20 Rainin 17014392 Plating Hydrogel Substrate
Pipette P1000 Fisher Scientific F123602G
Pipette tips, 1000 ul Fisher Scientific 02-707-509
Pipette tips, 20 ul Rainin GPS-L10S Making Hydrogel Substrate
Potassium Chloride (KCl)  Fisher Scientific P330-500 Tyrode’s solution
RPMI 1640, with glucose  Invitrogen 11875 Cardiomyocyte Media
Sodium Chloride (NaCl) Fisher Scientific s641-212 Tyrode’s solution
Sodium Hydroxide (NaOH) Sigma-Aldrich 221465 Tyrode’s solution
Stimulation Electrodes Pacing and CCM Stimulation
Stopwatch/Timer Fisher Scientific 02-261-840 Plating Hydrogel Substrate
Trypan Blue Stain Life Technologies T10282 hiPSC-CM Counting
TrypLE Express  Life Technologies 12605-010 hiPSC-CM Dissociation
DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Jackson, S. L., et al. National burden of heart failure events in the United States, 2006 to 2014. Circulation: Heart Failure. 11 (12), 004873 (2018).
  2. Cook, C., Cole, G., Asaria, P., Jabbour, R., Francis, D. P. The annual global economic burden of heart failure. International Journal of Cardiology. 171 (3), 368-376 (2014).
  3. Blinova, K., et al. International multisite study of human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes for drug proarrhythmic potential assessment. Cell Reports. 24 (13), 3582-3592 (2018).
  4. Yang, X., Ribeiro, A. J. S., Pang, L., Strauss, D. G. Use of human iPSC-CMs in nonclinical regulatory studies for cardiac safety assessment. Toxicology Sciences. 190 (2), 117-126 (2022).
  5. Zuppinger, C. 3D cardiac cell culture: A critical review of current technologies and applications. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 6, 87 (2019).
  6. Huethorst, E., et al. Conventional rigid 2D substrates cause complex contractile signals in monolayers of human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. The Journal of Physiology. 600 (3), 483-507 (2022).
  7. Feaster, T. K., et al. Matrigel mattress: A method for the generation of single contracting human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Circulation Research. 117 (12), 995-1000 (2015).
  8. Feaster, T. K., et al. Acute effects of cardiac contractility modulation stimulation in conventional 2D and 3D human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocyte models. Frontiers in Physiology. 13, 1023563 (2022).
  9. Feaster, T. K. . Implementation of human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocyte to model excitation-contraction coupling in health and disease. , (2015).
  10. Cadar, A. G., et al. Real-time visualization of titin dynamics reveals extensive reversible photobleaching in human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 318 (1), 163-173 (2020).
  11. Parikh, S. S., et al. Thyroid and glucocorticoid hormones promote functional T-tubule development in human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Circulation Research. 121 (12), 1323-1330 (2017).
  12. Wang, L., et al. Hypertrophic cardiomyopathy-linked mutation in troponin T causes myofibrillar disarray and pro-arrhythmic action potential changes in human iPSC cardiomyocytes. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 114, 320-327 (2018).
  13. Campbell, C. M., Kahwash, R., Abraham, W. T. Optimizer Smart in the treatment of moderate-to-severe chronic heart failure. Future Cardiology. 16 (1), 13-25 (2020).
  14. PMA P180036. FDA Summary of Safety and Effectiveness Data. Food and Drug Administration Available from: https://www.accessdata.fda.gov/cdrh_docs/pdf18/P180036B.pdf (2019)
  15. Blinova, K., et al. Acute effects of nonexcitatory electrical stimulation during systole in isolated cardiac myocytes and perfused heart. Physiological Reports. 2 (8), 12106 (2014).
  16. Sabbah, H. N., et al. Cardiac contractility modulation with the impulse dynamics signal: Studies in dogs with chronic heart failure. Heart Failure Reviews. 6 (1), 45-53 (2001).
  17. Feaster, T. K., Casciola, M., Narkar, A., Blinova, K. Acute effects of cardiac contractility modulation on human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Physiological Reports. 9 (21), 15085 (2021).
  18. Brunckhorst, C. B., Shemer, I., Mika, Y., Ben-Haim, S. A., Burkhoff, D. Cardiac contractility modulation by non-excitatory currents: Studies in isolated cardiac muscle. European Journal of Heart Failure. 8 (1), 7-15 (2006).
  19. Mohri, S., et al. Cardiac contractility modulation by electric currents applied during the refractory period. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 282 (5), 1642-1647 (2002).
  20. Mohri, S., et al. Electric currents applied during refractory period enhance contractility and systolic calcium in the ferret heart. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 284 (4), 1119-1123 (2003).
  21. Burkhoff, D., et al. Electric currents applied during the refractory period can modulate cardiac contractility in vitro and in vivo. Heart Failure Reviews. 6 (1), 27-34 (2001).
  22. Narkar, A., Feaster, T. K., Casciola, M., Blinova, K. Human in vitro neurocardiac coculture (ivNCC) assay development for evaluating cardiac contractility modulation. Physiological Reports. 10 (21), 15498 (2022).
  23. Harris, K., et al. Comparison of electrophysiological data from human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes to functional preclinical safety assays. Toxicological Sciences. 134 (2), 412-426 (2013).
  24. Blinova, K., et al. Comprehensive translational assessment of human-induced pluripotent stem cell derived cardiomyocytes for evaluating drug-induced arrhythmias. Toxicological Sciences. 155 (1), 234-247 (2017).
  25. Ma, J., et al. High purity human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes: electrophysiological properties of action potentials and ionic currents. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 301 (5), 2006-2017 (2011).
  26. Burridge, P. W., Holmstrom, A., Wu, J. C. Chemically defined culture and cardiomyocyte differentiation of human pluripotent stem cells. Current Protocols in Human Genetics. 87, 1-15 (2015).
  27. Cadar, A. G., Feaster, T. K., Durbin, M. D., Hong, C. C. Production of single contracting human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes: Matrigel mattress technique. Current Protocols in Stem Cell Biology. 42, 1-7 (2017).
  28. Narkar, A., Willard, J. M., Blinova, K. Chronic cardiotoxicity assays using human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes (hiPSC-CMs). International Journal of Molecular Sciences. 23 (6), 3199 (2022).
  29. OPTIMIZER® Smart Implantable Pulse Generator INSTRUCTIONS FOR USE. ImpulseDynamics Available from: https://impulse-dynamics.com/wp-content/uploads/2020/05/13-290-008-01-US-Rev-01-OPT-Smart-IPG-IFU.pdf (2018)
  30. OPTIMIZER™ Smart Mini Implantable Pulse Generator INSTRUCTIONS FOR USE. ImpulseDynamics Available from: https://impulse-dynamics.com/wp-content/uploads/2021/02/13-290-011-EU-Rev-00-OPTIMIZER-Smart-Mini-IPG-IFU-EU.pdf (2019)
  31. Sala, L., et al. MUSCLEMOTION: A versatile open software tool to quantify cardiomyocyte and cardiac muscle contraction in vitro and in vivo. Circulation Research. 122 (3), 5-16 (2018).
  32. Grune, T., Ott, C., Haseli, S., Hohn, A., Jung, T. The "MYOCYTER" – Convert cellular and cardiac contractions into numbers with ImageJ. Scientific Reports. 9, 15112 (2019).
  33. Masarone, D., et al. Use of cardiac contractility modulation as bridge to transplant in an obese patient with advanced heart failure: A case report. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 9, 833143 (2022).
  34. Nadeem, M., Tariq, E. F., Aslam, H. M., Illahi, Y., Shah, R. All-cause mortality outcomes of usage of cardiac contractility modulation in patients with dilated cardiomyopathy ineligible for cardiac re-synchronization therapy: An updated meta-analysis of randomized controlled trials. Cureus. 12 (9), 10627 (2020).
  35. Manganelli, G., et al. Use of cardiac contractility modulation in an older patient with non-ischemic dilated cardiomyopathy: A case report. Clinics and Practice. 11 (4), 835-840 (2021).
  36. Mannhardt, I., et al. Automated contraction analysis of human engineered heart tissue for cardiac drug safety screening. Journal of Visualized Experiments. (122), e55461 (2017).
  37. Gintant, G., et al. Repolarization studies using human stem cell-derived cardiomyocytes: Validation studies and best practice recommendations. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 117, 104756 (2020).
  38. Feric, N. T., et al. Engineered cardiac tissues generated in the Biowire™ II: A platform for human-based drug discovery. Toxicology Sciences. 172 (1), 89-97 (2019).
  39. Hwang, H. S., et al. Human induced pluripotent stem cell (hiPSC) derived cardiomyocytes to understand and test cardiac calcium handling: A glass half full. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 89, 379-380 (2015).
  40. Lundy, S. D., Zhu, W. Z., Regnier, M., Laflamme, M. A. Structural and functional maturation of cardiomyocytes derived from human pluripotent stem cells. Stem Cells and Development. 22 (14), 1991-2002 (2013).
  41. Stoehr, A., et al. Automated analysis of contractile force and Ca2+ transients in engineered heart tissue. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 306 (9), 1353-1363 (2014).

Tags

AICardiac Contractility ModulationInduced Pluripotent Stem CellCardiomyocytesMedical Device EvaluationCell CultureCell DissociationFlexible Hydrogel Substrates

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Cite This Article
Feaster, T. K., Casciola, M., Narkar, A., Blinova, K. Evaluation of Cardiac Contractility Modulation Therapy in 2D Human Stem Cell-Derived Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (190), e64848, doi:10.3791/64848 (2022).
Download Citation
Reprints and Permissions

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image