O protocolo aqui apresentado mostra uma técnica para criar um modelo de roedor de lesão cerebral. O método descrito aqui usa irradiação a laser e tem como alvo o córtex motor.
Uma técnica comum para induzir derrame em modelos experimentais de roedores envolve o transitório (muitas vezes denotado como MCAO-t) ou permanente (designado como MCAO-p) oclusão da artéria cerebral média (MCA) usando um cateter. Essa técnica geralmente aceita, no entanto, tem algumas limitações, limitando assim seu uso extensivo. A indução de AVC por este método é frequentemente caracterizada por alta variabilidade na localização e tamanho da área isquêmica, ocorrências periódicas de hemorragia e altas taxas de mortalidade. Além disso, a conclusão bem sucedida de qualquer um dos procedimentos transitórios ou permanentes requer perícia e muitas vezes dura cerca de 30 minutos. Neste protocolo, é apresentada uma técnica de irradiação a laser que pode servir como um método alternativo para induzir e estudar lesões cerebrais em modelos de roedores.
Quando comparada com ratos nos grupos de controle e MCAO, a lesão cerebral por indução a laser mostrou variabilidade reduzida na temperatura corporal, volume infarto, edema cerebral, hemorragia intracraniana e mortalidade. Além disso, o uso de uma lesão induzida pelo laser causou danos aos tecidos cerebrais apenas no córtex motor, ao contrário dos experimentos de MCAO, onde a destruição do córtex motor e dos tecidos estriais é observada.
Os achados desta investigação sugerem que a irradiação a laser pode servir como uma técnica alternativa e eficaz para induzir lesões cerebrais no córtex motor. O método também reduz o tempo para concluir o procedimento e não requer manipuladores especializados.
Globalmente, o AVC é a segunda principal causa de morte e a terceira principal causa de incapacidade1. O AVC também leva a uma incapacidade grave, muitas vezes exigindo cuidados extras da equipe médica e dos parentes. Há, portanto, a necessidade de compreender as complicações associadas ao transtorno e melhorar o potencial de desfechos mais positivos.
O uso de modelos animais é o passo inicial para a compreensão das doenças. Para garantir os melhores resultados da pesquisa, um modelo típico incluiria uma técnica simples, acessibilidade, alta reprodutibilidade e variabilidade mínima. Os determinantes nos modelos de derrame isquêmico incluem volume de edema cerebral, tamanho do infarto, a extensão da quebra da barreira hematoencefálica (BBB) e comprometimento funcional geralmente avaliado via escore de gravidade neurológica2.
A técnica de indução de derrame mais utilizada em modelos roedores oclui a artéria cerebral média (MCA) transitoriamente oupermanentemente 3. Esta técnica produz um modelo de avc semelhante ao dos humanos: tem uma penumbra em torno da área acariciada, é altamente reprodutível, e regula a duração da isquemia e a reperfusão4. No entanto, o método MCAO tem algumas complicações. A técnica é propensa a hemorragia intracraniana e lesão na retina ipsilateral com disfunção do córtex visual e hipertermia comum que muitas vezes levam a resultados adicionais5,,6,7. Outras limitações incluem altas variações no AVC induzido (decorrentes da provável extensão da isquemia para regiões não intencionais, como a região da artéria carótida externa), oclusão insuficiente do MCA e reperfusão prematura. Além disso, ratos de diferentes cepas e tamanhos exibem vários volumes de infarto8. Além de todas as desvantagens mencionadas, o modelo MCAO não pode induzir pequenos derrames isolados em áreas cerebrais profundas, pois é limitado tecnicamente em termos de sua exigência de tamanho mínimo do vaso para cateterismo. Isso torna a necessidade de um modelo alternativo ainda mais crítica. Outro método, fototrombose, fornece uma possível alternativa aos procedimentos de MCAO, mas não melhora a eficiência9. Esta técnica visa o traçado com luz e oferece algumas melhorias nos modelos anteriores. No entanto, a fototrombose requer uma craniotomia invasiva que esteja associada a compicações secundárias9.
À luz das deficiências descritas, o protocolo aqui apresentado fornece uma técnica de laser alternativa capaz para induzir lesões cerebrais em roedores. O mecanismo de ação da técnica laser é baseado nos efeitos fototérmicos do laser transmitidos em tecidos vivos, o que leva à absorção de feixes de luz por tecidos corporais e sua conversão em calor. As vantagens de usar uma técnica a laser são sua segurança e facilidade de manipulação. A capacidade de um laser de produzir calor para parar o sangramento torna-o muito importante na medicina, enquanto sua capacidade de amplificar diferentes feixes em um determinado ponto de encontro garante que os lasers evitem destruir tecidos saudáveis que estão no caminho do pontoalvo 10. O raio laser usado neste protocolo pode passar por um meio líquido baixo, como o osso, sem emitir sua energia e/ou causar qualquer destruição. Uma vez que atinge um meio líquido elevado, como tecidos cerebrais, ele usa sua energia para destruir os tecidos alvo. A técnica, portanto, pode induzir lesões cerebrais apenas na área apropriada do cérebro.
A técnica aqui apresentada mostrou uma enorme quantidade de capacidade de regular seus níveis de irradiação, produzindo as variações escolhidas de lesão cerebral pretendida desde o início. Ao contrário do MCAO original que impacta tanto o córtex quanto o estriato, a técnica de laser foi capaz de regular o impacto da lesão cerebral, induzindo lesões apenas no córtex motor pretendido. Aqui, o protocolo de lesão cerebral induzido pelo laser e um resumo dos resultados representativos para o procedimento realizado no córtex cerebral dos ratos são fornecidos.
É justo supor que a técnica de laser é minimamente invasiva, dado que não ocorreu mortes ou HAS no grupo laser. A causa primária da morte e a HAS é o dano aos vasos sanguíneos que leva a uma elevação da pressão intracraniana (ICP), como mostrado nas técnicas originais de MCAO10. A ausência de morte e HAS no grupo laser é provavelmente devido aos efeitos específicos dos lasers: eles não têm impacto direto nos vasos sanguíneos e podem induzir coagulação em caso de vazamento. O bai…
The authors have nothing to disclose.
Gostaríamos de agradecer ao Departamento de Anestesiologia do Centro Médico da Universidade de Soroka e à equipe de laboratório da Universidade Ben-Gurion do Negev por sua ajuda no desempenho deste experimento.
2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride | SIGMA – ALDRICH | 298-96-4 | |
50% trichloroacetic acid | SIGMA – ALDRICH | 76-03-9 | |
Brain & Tissue Matrices | SIGMA – ALDRICH | 15013 | |
Cannula Venflon 22 G | KD-FIX | 1.83604E+11 | |
Centrifuge Sigma 2-16P | SIGMA – ALDRICH | Sigma 2-16P | |
Compact Analytical Balances | SIGMA – ALDRICH | HR-AZ/HR-A | |
Digital Weighing Scale | SIGMA – ALDRICH | Rs 4,000 | |
Dissecting scissors | SIGMA – ALDRICH | Z265969 | |
Eppendorf pipette | SIGMA – ALDRICH | Z683884 | |
Eppendorf Tube | SIGMA – ALDRICH | EP0030119460 | |
Ethanol 96 % | ROMICAL | Flammable Liquid | |
Evans Blue 2% | SIGMA – ALDRICH | 314-13-6 | |
Fluorescence detector | Tecan, Männedorf Switzerland | model Infinite 200 PRO multimode reader | |
Heater with thermometer | Heatingpad-1 | Model: HEATINGPAD-1/2 | |
Infusion Cuff | ABN | IC-500 | |
Isofluran, USP 100% | Piramamal Critical Care, Inc | NDC 66794-017 | |
Multiset | TEVA MEDICAL | 998702 | |
Olympus BX 40 microscope | Olympus | ||
Optical scanner | Canon | Cano Scan 4200F | |
Petri dishes | SIGMA – ALDRICH | P5606 | |
Scalpel blades 11 | SIGMA – ALDRICH | S2771 | |
Sharplan 3000 Nd:YAG (neodymium-doped yttrium aluminum garnet) laser machine | Laser Industries Ltd | ||
Stereotaxic head holder | KOPF | 900LS | |
Sterile Syringe 2 ml | Braun | 4606027V | |
Syringe-needle 27 G | Braun | 305620 |