Summary

Сила простоты: Эмбрионы морского ежа, как<em> В Vivo</em> Развивающие модели для изучения сложных Cell-к-Cell Signaling сетевых взаимодействий

Published: February 16, 2017
doi:

Summary

Это видео статье подробно простой в методологии естественных условиях , которые могут быть использованы для систематического и эффективного характеризуют компоненты сложных сигнальных путей и регуляторных сетей во многих беспозвоночных эмбрионов.

Abstract

Remarkably few cell-to-cell signal transduction pathways are necessary during embryonic development to generate the large variety of cell types and tissues in the adult body form. Yet, each year more components of individual signaling pathways are discovered, and studies indicate that depending on the context there is significant cross-talk among most of these pathways. This complexity makes studying cell-to-cell signaling in any in vivo developmental model system a difficult task. In addition, efficient functional analyses are required to characterize molecules associated with signaling pathways identified from the large data sets generated by next generation differential screens. Here, we illustrate a straightforward method to efficiently identify components of signal transduction pathways governing cell fate and axis specification in sea urchin embryos. The genomic and morphological simplicity of embryos similar to those of the sea urchin make them powerful in vivo developmental models for understanding complex signaling interactions. The methodology described here can be used as a template for identifying novel signal transduction molecules in individual pathways as well as the interactions among the molecules in the various pathways in many other organisms.

Introduction

Генные регуляторные сети (GRNs) и пути передачи сигналов устанавливают пространственную и временную экспрессию генов во время эмбрионального развития, которые используются для создания плана взрослого животного тела. Cell-к-клетке пути передачи сигналов являются важными компонентами этих регуляторных сетей, предоставляя средства, с помощью которых клетки взаимодействуют. Эти клеточные взаимодействия установить и уточнить экспрессию регуляторных генов и дифференцировки в и среди различных территорий во время эмбриогенеза 1, 2. Взаимодействие между секретируемых внеклеточных модуляторов (лиганды, антагонисты), рецепторов и ко-рецепторов контролируют деятельность путей передачи сигнала. Ассортимент внутриклеточных молекул трансдуцирует эти входы, приводящие к изменению экспрессии генов, деление, и / или формы клетки. В то время как многие из ключевых молекул, используемых при внеклеточных и внутриклеточных уровней в основных путей являютсяИзвестно, что это неполное знание обусловлено в значительной степени сложности отдельных сигнальных путей. Кроме того, различные сигнальные пути часто взаимодействуют друг с другом либо положительно , либо отрицательно на внеклеточный, внутриклеточный и транскрипционные уровни 3, 4, 5, 6. Важно отметить, что основные компоненты путей передачи сигнала являются высоко консервативными у всех видов многоклеточных, и, что примечательно, большинство основных сигнальных путей , часто выполняют сходные функции развития у многих видов при сравнении организмов от тесно связанной с фил , в частности , 7, 8, 9, 10, 11.

Изучение сигнализации в процессе развития является сложной задачей в любом организме, и тамнесколько серьезных проблем в изучении сигнальных путей в большинстве моделей вторичноротые (позвоночных, беспозвоночных хордовых, полухордовых и иглокожих): 1) У позвоночных существует большое число возможных лиганда и рецептора / со-модуляторов взаимодействий, внутриклеточные молекулы трансдукции, а также потенциальные взаимодействия между различными сигнальными путями из – за сложности генома 12, 13, 14; 2) Комплекс морфологии и морфогенетические движения у позвоночных часто делают его более трудным для интерпретации функциональных взаимодействий внутри и среди путей передачи сигнала; 3) Анализы в большинстве не-иглокожих видов беспозвоночных вторичноротые модели ограничены короткими окнами беременности, за исключением некоторых видов оболочников 15, 16.

эмбрионе морского ежа имеет несколько из указанных выше ограничений , и предлагает множество уникальных качеств для выполнения детального анализа путей передачи сигнала в естественных условиях. К ним относятся следующие: 1) Относительная простота морского ежа генома значительно уменьшает количество возможных лигандов, рецепторов / корецептором и внутриклеточной молекулы трансдукции взаимодействиях 17; 2) GRNs контролирующие спецификации и кучность стрельбы из зародышевых листков и основных эмбриональных осей хорошо установлены в морских ежей эмбрионов, помогая в понимании нормативного контекста клеток / территории приема сигналов 18, 19; 3) Многие пути передачи сигналов могут быть изучены между ранними спайности и гаструлы , когда эмбрионы состоят из одного многослойного эпителия, морфология которых легче анализировать; 4) Молекулы связаныd сигнальных путей в морских ежей легко манипулировать; 5) Многие морские ежи Gravid от 10 до 11 месяцев в год (например , Strongylocentrotus purpuratus и Lytechinus variegatus).

Здесь мы представляем метод системно и эффективно характеризуют компоненты сигнальных путей, которые определяют и модели территорий, в морских ежей эмбрионов, чтобы проиллюстрировать преимущества, которые несколько беспозвоночные модельные системы предлагают в изучении сложных молекулярных механизмов.

Protocol

1. Стратегия Высокая пропускная способность Morpholino Design Идентифицировать ген (ы) интерес (например , ген подход кандидатов, цис-регуляторными анализ, Секвенирование РНК и / или протеомические дифференциальные экраны). Используйте геномную, транскриптомики и данные экспре?…

Representative Results

В эмбрионе морского ежа мы показали , что 3 -х различных Wnt сигнальных ветвей (Wnt / β-катенин, Wnt / JNK и Wnt / PKC) 4, 25 взаимодействуют с образованием Wnt сигнальной сети , которая управляет передне-задней (AP) кучность. Одним из наиболее важных следст?…

Discussion

Методология, представленная здесь приведен пример, который иллюстрирует силу использования эмбрионов с меньшим количеством геномной и морфологической сложности, чем позвоночных животных, чтобы понять сигнальные пути трансдукции и GRNs, регулирующие фундаментальные механизмы развити…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank Dr. Robert Angerer for his careful reading and editing of the manuscript. NIH R15HD088272-01 as well as the Office of Research and Development, and Department of Biological Sciences at Mississippi State University provided support for this project to RCR.

Materials

Translational-blocking morpholino and/or splice-blocking morpholino Gene Tools LLC Customized More information at www.gene-tools.com
Glycerol Invitrogen 15514-011
FITC (dextran fluorescein isothiocyanate) Invitrogen, Life Technologies D1821 Make 25mg/mL stock solution
Paraformaldehyde 16% solution EM Grade Electron Microscopy Sciences 15710
MOPS Sigma Aldrich M1254-250G
Tween-20 Sigma Aldrich 23336-0010
Formamide Sigma Aldrich 47671-1L-F
Yeast tRNA Invitrogen 15401-029
Normal Goat Serum Sigma Aldrich G9023-10mL
Alkaline Phosphatase-conjugated anti-digoxigenin antibody Roche 11 093 274 910
Tetramisole hydrochloride (levamisole) Sigma Aldrich L9756-5G
Tris Base UltraPure Research Products Internationall Corp 56-40-6
Sodium Chloride Fisher Scientific BP358-10
Magnesium chloride Sigma Aldrich 7786-30-3
BCIP (5-Bromo-4-Chloro-3-indolyl-phosphate Roche 11 383 221 001
4 Nitro blue tetrazolium chloride (NBT) Roche 11 383 213 001
Dimethyl Formamide Sigma Aldrich D4551-500mL
Potassium Chloride Sigma Aldrich P9541-5KG
Sodium Bicarbonate Sigma Aldrich S5761-500G
Magnesium Sulfate Sigma Aldrich M7506-2KG
Calcium Chloride Sigma Aldrich C1016-500G

References

  1. Erwin, D. H., Davidson, E. H. The evolution of hierarchical gene regulatory networks. Nature reviews. Genetics. 10, 141-148 (2009).
  2. Peter, I. S., Davidson, E. H. Evolution of gene regulatory networks controlling body plan development. Cell. 144, 970-985 (2011).
  3. Borggrefe, T., et al. The Notch intracellular domain integrates signals from Wnt, Hedgehog, TGFbeta/BMP and hypoxia pathways. Biochimica et biophysica acta. 1863, 303-313 (2016).
  4. Range, R. C., Angerer, R. C., Angerer, L. M. Integration of canonical and noncanonical Wnt signaling pathways patterns the neuroectoderm along the anterior-posterior axis of sea urchin embryos. PLoS Biol. 11, e1001467 (2013).
  5. Cleary, M. A., van Osch, G. J., Brama, P. A., Hellingman, C. A., Narcisi, R. FGF, TGFbeta and Wnt crosstalk: embryonic to in vitro cartilage development from mesenchymal stem cells. Journal of tissue engineering and regenerative medicine. 9, 332-342 (2015).
  6. Lapraz, F., et al. RTK and TGF-beta signaling pathways genes in the sea urchin genome. Dev Biol. 300, 132-152 (2006).
  7. Pires-daSilva, A., Sommer, R. J. The evolution of signalling pathways in animal development. Nature reviews. Genetics. 4, 39-49 (2003).
  8. Sethi, A. J., Wikramanayake, R. M., Angerer, R. C., Range, R. C., Angerer, L. M. Sequential signaling crosstalk regulates endomesoderm segregation in sea urchin embryos. Science. 335, 590-593 (2012).
  9. Range, R. Specification and positioning of the anterior neuroectoderm in deuterostome embryos. Genesis. 52, 222-234 (2014).
  10. Petersen, C. P., Reddien, P. W. Wnt signaling and the polarity of the primary body axis. Cell. 139, 1056-1068 (2009).
  11. Lapraz, F., Haillot, E., Lepage, T. A deuterostome origin of the Spemann organiser suggested by Nodal and ADMPs functions in Echinoderms. Nature communications. 6, 8434 (2015).
  12. Kikuchi, A., Yamamoto, H., Sato, A. Selective activation mechanisms of Wnt signaling pathways. Trends in cell biology. 19, 119-129 (2009).
  13. Hogan, B. L. Bone morphogenetic proteins: multifunctional regulators of vertebrate development. Genes Dev. 10, 1580-1594 (1996).
  14. Houart, C., et al. Establishment of the telencephalon during gastrulation by local antagonism of Wnt signaling. Neuron. 35, 255-265 (2002).
  15. Bertrand, S., Escriva, H. Evolutionary crossroads in developmental biology: amphioxus. Development. 138, 4819-4830 (2011).
  16. Rottinger, E., Lowe, C. J. Evolutionary crossroads in developmental biology: hemichordates. Development. 139, 2463-2475 (2012).
  17. Genome Sequencing Sea Urchin, C., et al. The genome of the sea urchin Strongylocentrotus purpuratus. Science. 314, 941-952 (2006).
  18. Ben-Tabou de-Leon, S., Su, Y. H., Lin, K. T., Li, E., Davidson, E. H. Gene regulatory control in the sea urchin aboral ectoderm: spatial initiation, signaling inputs, and cell fate lockdown. Dev Biol. 374, 245-254 (2013).
  19. Saudemont, A., et al. Ancestral regulatory circuits governing ectoderm patterning downstream of Nodal and BMP2/4 revealed by gene regulatory network analysis in an echinoderm. PLoS Genet. 6, e1001259 (2010).
  20. Cameron, R. A., Samanta, M., Yuan, A., He, D., Davidson, E. SpBase: the sea urchin genome database and web site. Nucleic Acids Res. 37, D750-D754 (2009).
  21. Stepicheva, N. A., Song, J. L. High throughput microinjections of sea urchin zygotes. Journal of visualized experiments : JoVE. , e50841 (2014).
  22. Cheers, M. S., Ettensohn, C. A. Rapid microinjection of fertilized eggs. Methods in cell biology. 74, 287-310 (2004).
  23. Arenas-Mena, C., Cameron, A. R., Davidson, E. H. Spatial expression of Hox cluster genes in the ontogeny of a sea urchin. Development. , 4631-4643 (2000).
  24. Sethi, A. J., Angerer, R. C., Angerer, L. M. Multicolor labeling in developmental gene regulatory network analysis. Methods in molecular biology. , 249-262 (2014).
  25. Wikramanayake, A. H., Huang, L., Klein, W. H. beta-Catenin is essential for patterning the maternally specified animal-vegetal axis in the sea urchin embryo. Proc Natl Acad Sci U S A. 95, 9343 (1998).
  26. Yaguchi, S., Yaguchi, J., Angerer, R. C., Angerer, L. M. A Wnt-FoxQ2-nodal pathway links primary and secondary axis specification in sea urchin embryos. Dev Cell. 14, 97-107 (2008).
  27. Molina, M. D., de Croze, N., Haillot, E., Lepage, T. Nodal: master and commander of the dorsal-ventral and left-right axes in the sea urchin embryo. Curr Opin Genet Dev. 23, 445-453 (2013).
  28. Range, R. C., Glenn, T. D., Miranda, E., McClay, D. R. LvNumb works synergistically with Notch signaling to specify non-skeletal mesoderm cells in the sea urchin embryo. Development. 135, 2445-2454 (2008).
  29. Range, R., et al. Cis-regulatory analysis of nodal and maternal control of dorsal-ventral axis formation by Univin, a TGF-beta related to Vg1. Development. 134, 3649-3664 (2007).
  30. Warner, J. F., Miranda, E. L., McClay, D. R. Contribution of hedgehog signaling to the establishment of left-right asymmetry in the sea urchin. Dev Biol. 411, 314-324 (2016).
  31. Rottinger, E., et al. FGF signals guide migration of mesenchymal cells, control skeletal morphogenesis [corrected] and regulate gastrulation during sea urchin development. Development. 135, 353-365 (2008).
  32. Warner, J. F., McCarthy, A. M., Morris, R. L., McClay, D. R. Hedgehog signaling requires motile cilia in the sea urchin. Mol Biol Evol. 31, 18-22 (2014).
  33. Technau, U., Steele, R. E. Evolutionary crossroads in developmental biology. Cnidaria. Development. 138, 1447-1458 (2011).
  34. Yaguchi, J., Takeda, N., Inaba, K., Yaguchi, S. Cooperative Wnt-Nodal Signals Regulate the Patterning of Anterior Neuroectoderm. PLoS Genet. 12, e1006001 (2016).
  35. Duboc, V., Rottinger, E., Besnardeau, L., Lepage, T. Nodal and BMP2/4 signaling organizes the oral-aboral axis of the sea urchin embryo. Dev Cell. 6, 397-410 (2004).
  36. Bradham, C. A., et al. Chordin is required for neural but not axial development in sea urchin embryos. Dev Biol. 328, 221-233 (2009).
  37. Su, Y. H. Gene regulatory networks for ectoderm specification in sea urchin embryos. Biochimica et biophysica acta. 1789, 261-267 (2009).
  38. Lin, C. Y., Su, Y. H. Genome editing in sea urchin embryos by using a CRISPR/Cas9 system. Dev Biol. 409, 420-428 (2016).

Play Video

Cite This Article
Range, R. C., Martinez-Bartolomé, M., Burr, S. D. The Power of Simplicity: Sea Urchin Embryos as in Vivo Developmental Models for Studying Complex Cell-to-cell Signaling Network Interactions. J. Vis. Exp. (120), e55113, doi:10.3791/55113 (2017).

View Video