Summary

затравочный<em> Anopheles gambiae</em> Комары с бусами для индуцирования и измерить меланизации иммунный ответ

Published: January 12, 2017
doi:

Summary

Through inoculation with beads, the described technique enables the stimulation of the mosquito melanization response in the hemolymph circulating system. The amount of melanin covering the beads can be measured after dissection as a measure of the immune response.

Abstract

Стимуляция иммунного ответа является распространенным инструментом в беспозвоночными исследований с целью изучения эффективности и механизмов иммунитета. Эта стимуляция основана на введении непатогенных частиц в насекомых, так как частицы будут обнаружены иммунной системой и будет индуцировать образование иммунных эффекторов. Мы сосредоточимся на стимуляции реакции меланизации в комара Anopheles gambiae. Результаты ответа меланизации в капсулой инородных частиц и паразитов с темным слоем меланина. Чтобы стимулировать этот ответ, комары заражают с бисером в грудной полости с использованием микрокапиллярных стеклянных трубок. Затем, после того, как 24 часов, комары рассечены, чтобы получить шарики. Степень меланизации борта измеряется с помощью программного обеспечения для анализа изображений. Бусинки не имеют патогенного воздействия паразитов, или их способности уклоняться или подавлять иммунный ответ. Эти инъекции являются способом колбыповторно иммунной эффективности и влияния иммунных раздражений на других черт истории жизни, такие, как плодовитость или долговечность. Это не совсем так же, как непосредственно изучает паразита и хозяина взаимодействий, но это интересный инструмент для изучения иммунитета и его эволюционной экологии.

Introduction

Насекомые полагаются на иммунные ответы , чтобы защитить себя от паразитов и патогенных микроорганизмов 1 3 , которые нарушают через их кутикулу или их эпителия средней кишки 4. В комаров, эти реакции являются эффективными против бактерий, вирусов 5 6, 7 филяриатозных нематод и паразитов малярии 1,8,9. В комаров, ключевой иммунный ответ является герметизация инородных частиц с меланином 10 12. Эта герметизация может произойти в кишке или в гемолимфе циркуляционная система 10 12. Этот ответ меланизации является результатом про-фенолоксидазы каскад 10 12, и это может привести к гибели паразитов или их фагоцитоз. У взрослых комаров, где количество форменных клеток ограничено, меланизации является гуморальный ответ, как и против плазмодия паразитов или филяриатозных нематод 7.В некоторых других насекомых, то есть непосредственно Гемоциты клетки , которые собираются вокруг паразита melanize их 7. Кроме того, меланин также имеет важное значение для ряда других физиологических процессов , как производство яиц и кутикулы заживления ран 7.

Стимуляция иммунных реакций используется в качестве инструмента для изучения иммунитета насекомых в нескольких сельского хозяйства и общественного здравоохранения модельных систем 13 18. Он используется в Anopheles gambiae комары, основной вектор малярии в Африке, чтобы изучить паразита и хозяина взаимодействий 14 16,19. Эти методы основаны на способности насекомых обнаружить паразитов с их рецепторами распознавания образов (PRR) 2. Комары могут также обнаружить другие молекулы, мешающие их биологии, таких как патоген-ассоциированных молекулярных моделей (PAMPs), или обнаружить свои собственные поврежденные клетки вследствие высвобождения коллагена и нуклеиновых кислот. Иммунной клетки комаровs такие как гемоцитах используются для обнаружения 20 23. Основные иммунные сигнальные пути являются Imd, Toll, JAK / STAT 24, и вмешательство рибонуклеиновой кислоты (RNAi) 25,26. Оба Toll и пути IMD влияют на реакцию меланизации и взаимодействовать с про-фенолоксидазы каскад 10 12.

Стандартный инструмент, используемый для стимуляции реакции меланизации является прививка комара с небольшим бусинки в гемолимфе грудной полости. Степень меланина инкапсулирования затем может быть измерено 19 после извлечения бусинку через рассечение комара. В большинстве исследований, только один шарик был введен в комара 15,16,27, но инъекции больше бусин можно с целью изучения пределов ответа меланизации 19. Эти шарики вводят с использованием раствора для инъекций (физиологический сыворотки), чтобы ограничить нарушение москитной физиологии ивысыхание комаров 15,16,27. Краситель добавляют к этому раствору, чтобы облегчить выбор шарик. Это то же самое для решения рассечение , используемого для извлечения шарика 15,16,27.

Преимущество инокулируя насекомых с непатогенных раздражители является способность сосредоточиться на непосредственном воздействии на иммунный ответ. Там нет осложняющие эффекты , вызванные паразитами патогенности 28, иммуносупрессии 29 31, или иммунной уклонения от 31 34. Кроме того, последствия раздражений на других черт истории жизни, таких как долговечность или плодовитости, также могут быть изучены. Таким образом, исследователи , изучающие эволюционной экологии может потребоваться такие инструменты 2,35,36. Например, иммуно-вызов шмели имеют сокращенную продолжительность жизни при голодании. Подобные негативные эффекты иммунных раздражений и развертываний наблюдались в различных моделях беспозвоночных, что часто приводит к короткойэр продолжительность жизни или менее репродуктивный успех 13,27,37. Такие исследования могут проводиться в различных средах 2,4,38. Стимулирующие иммунитет также представляет интерес для тех , сосредоточив внимание непосредственно на иммунопатологии 39,40.

Этот протокол основан на инокуляции бусинок с комарами, чтобы стимулировать реакцию меланизации и непосредственно измерить количество меланина. Это позволяет количественное и качественное исследование реакции меланизации в различных экспериментальных условиях. Такой инструмент может быть распространен на стимуляцию других иммунных реакций, таких как антибактериальное ответ на убитых нагреванием бактерий 41. Она также может быть проведено во многих экологических условиях.

Protocol

1. Физиологический раствор для инъекций и Вскрытие Приготовьте солевой раствор путем добавления NaCl, KCl и CaCl 2 в дистиллированной воде , чтобы получить 1,3 мМ NaCl, 0,5 мМ KCl, 0,2 мМ и CaCl 2 при рН = 6,8. Добавить 1 мл раствора 0,1 зеленого% метилового эфира в 99 мл физиологического р?…

Representative Results

Комары не все melanize бусинки точно так же, как и некоторые гранулы менее покрыты меланина , чем другие (рисунок 1). Действительно, некоторые шарики оставались синим из – за отсутствия меланизации, в то время как другие были полностью темным (рисунок 1). ?…

Discussion

Этот метод инъекции полезно, чтобы стимулировать и изучить реакцию меланизации в комаров. Например, здесь мы изучали влияние иммунной стимулов нагрузки.

Важным шагом в этой процедуре является правильно прививать комара. Любое чрезмерное повреждение мышц полета или сам…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This research was possible through funding from the University of Neuchâtel. We would like to thank all the students that helped in improving this technique, namely our colleague Kevin Thievent. We would also like to thank the members of the Thomas Lab for making their laboratory available. We would like to thank Janet Teeple for her help with mosquito rearing. We would also like to thanks Loyal Hall in the laboratory of Pr. Tom Baker for his help in the preparation of the micro capillary glass tubes.

Materials

Microcapillary glass tubes GB120TF-10 science-products.com GB120TF-10 http://www.science-products.com/Products/CatalogG/Glass/Glass.html
Microcaps Capillary pipette bulb Drumond 1-000-9000
negatively charged Sephadex CM C-25 beads Sigma-Aldrich, Steinheim, Germany C25120 SIGMA need few to start
Methyl green Sigma-Aldrich 323829 ALDRICH need few to start
Software ImageJ opensource Version 1.47f7 or later

References

  1. Dong, Y., Aguilar, R., Xi, Z., Warr, E., Mongin, E., Dimopoulos, G. Anopheles gambiae immune responses to human and rodent Plasmodium parasite species. PLoS pathog. 2 (6), e52 (2006).
  2. Sadd, B. M., Schmid-Hempel, P. PERSPECTIVE: Principles of ecological immunology. Evolutionary Appl. 2 (1), 113-121 (2008).
  3. Crompton, P. D., Moebius, J., et al. Malaria Immunity in Man and Mosquito: Insights into Unsolved Mysteries of a Deadly Infectious Disease*. Annu Rev Immuno. 32 (1), 157-187 (2014).
  4. Schmid-Hempel, P. EVOLUTIONARY ECOLOGY OF INSECT IMMUNE DEFENSES. Annu Rev Entomol. 50 (1), 529-551 (2005).
  5. Hillyer, J. F., Schmidt, S. L., Christensen, B. M. Rapid phagocytosis and melanization of bacteria and Plasmodium sporozoites by hemocytes of the mosquito Aedes aegypti. J parasito. 89 (1), 62-69 (2003).
  6. Carissimo, G., Pondeville, E., et al. Antiviral immunity of Anopheles gambiae is highly compartmentalized, with distinct roles for RNA interference and gut microbiota. PNAS. 112 (2), E176-E185 (2015).
  7. Christensen, B. M., Li, J., Chen, C. -. C., Nappi, A. J. Melanization immune responses in mosquito vectors. Trends parasito. 21 (4), 192-199 (2005).
  8. Collins, F., Sakai, R., et al. Genetic selection of a Plasmodium-refractory strain of the malaria vector Anopheles gambiae. Science. 234 (4776), 607-610 (1986).
  9. Warr, E., Lambrechts, L., Koella, J. C., Bourgouin, C., Dimopoulos, G. Anopheles gambiae immune responses to Sephadex beads: Involvement of anti-Plasmodium factors in regulating melanization. Insect Biochem Molec. 36 (10), 769-778 (2006).
  10. Fuchs, S., Behrends, V., Bundy, J. G., Crisanti, A., Nolan, T. Phenylalanine metabolism regulates reproduction and parasite melanization in the malaria mosquito. PloS one. 9 (1), e84865 (2014).
  11. Cerenius, L., Söderhäll, K. The prophenoloxidase-activating system in invertebrates. Immuno Rev. 198, 116-126 (2004).
  12. Cerenius, L., Lee, B. L., Söderhäll, K. The proPO-system: pros and cons for its role in invertebrate immunity. Trend Immuno. 29 (6), 263-271 (2008).
  13. Moret, Y., Schmid-Hempel, P. . Survival for immunity: the price of immune system activation for bumblebee workers. , 1166-1168 (2000).
  14. Suwanchaichinda, C., Paskewitz, S. M. Effects of Larval Nutrition, Adult Body Size, and Adult Temperature on the Ability of Anopheles gambiae(Diptera: Culicidae) to Melanize Sephadex Beads. J Med Entomol. 35 (2), 157-161 (1998).
  15. Chun, J., Riehle, M., Paskewitz, S. M. Effect of Mosquito Age and Reproductive Status on Melanization of Sephadex Beads in Plasmodium-Refractory and -Susceptible Strains of Anopheles gambiae. J Invertebr Pathol. 66 (1), 11-17 (1995).
  16. Schwartz, A., Koella, J. C. Melanization of Plasmodium falciparum and C-25 Sephadex Beads by Field-Caught Anopheles gambiae (Diptera: Culicidae) from Southern Tanzania. J Med Entomol. 39 (1), 84-88 (2002).
  17. Zahedi, M., Denham, D. A., Ham, P. J. Encapsulation and melanization responses of Armigeres subalbatus against inoculated Sephadex beads. J Invertebr Pathol. 59 (3), 258-263 (1992).
  18. Laughton, A. M., Garcia, J. R., Altincicek, B., Strand, M. R., Gerardo, N. M. Characterisation of immune responses in the pea aphid, Acyrthosiphon pisum. J insect physiol. 57 (6), 830-839 (2011).
  19. Barreaux, A. M. G., Barreaux, P., Koella, J. C. Overloading the immunity of the mosquito Anopheles gambiae with multiple immune challenges. Parasite Vector. 9 (1), 210 (2016).
  20. Lazzaro, B. P., Rolff, J. Danger, Microbes, and Homeostasis. Science. 332 (6025), 43-44 (2011).
  21. Arrighi, R. B. G., Faye, I. Plasmodium falciparum GPI toxin: a common foe for man and mosquito. Acta trop. 114 (3), 162-165 (2010).
  22. Michel, K., Kafatos, F. C. Mosquito immunity against Plasmodium. Insect Biochem Molec. 35 (7), 677-689 (2005).
  23. Osta, M. A., Christophides, G. K., Vlachou, D., Kafatos, F. C. Innate immunity in the malaria vector Anopheles gambiae: comparative and functional genomics. J Exp Biol. 207 (15), 2551-2563 (2004).
  24. Christophides, G. K., Vlachou, D., Kafatos, F. C. Comparative and functional genomics of the innate immune system in the malaria vector Anopheles gambiae. Immunol Rev. 198 (1), 127-148 (2004).
  25. Blair, C. D. Mosquito RNAi is the major innate immune pathway controlling arbovirus infection and transmission. Future microbiol. 6 (3), 265-277 (2011).
  26. Fragkoudis, R., Attarzadeh-Yazdi, G., Nash, A. A., Fazakerley, J. K., Kohl, A. Advances in dissecting mosquito innate immune responses to arbovirus infection. J Gen Virol. , (2009).
  27. Schwartz, A., Koella, J. C. The cost of immunity in the yellow fever mosquito, Aedes aegypti depends on immune activation. J evol biol. 17 (4), 834-840 (2004).
  28. Lambrechts, L., Vulule, J. M., Koella, J. C. Genetic correlation between melanization and antibaterial immune responses in a natural population of the malaria vector Anopheles gambiae. Evolution. 58 (10), 2377 (2004).
  29. Boete, C., Paul, R. E. L., Koella, J. C. Direct and indirect immunosuppression by a malaria parasite in its mosquito vector. P Roy Soc B-Biol Sci. 271 (1548), 1611-1615 (2004).
  30. Sacks, D., Sher, A. Evasion of innate immunity by parasitic protozoa. Nat immunol. 3 (11), 1041-1047 (2002).
  31. Zambrano-Villa, S., Rosales-Borjas, D., Carrero, J. C., Ortiz-Ortiz, L. How protozoan parasites evade the immune response. Trend Parasito. 18 (6), 272-278 (2002).
  32. Damian, R. T. Parasite immune evasion and exploitation: reflections and projections. Parasitology. 115, S169-S175 (1997).
  33. Schmid-Hempel, P. Parasite immune evasion: a momentous molecular war. Trend ecol evol. 23 (6), 318-326 (2008).
  34. Schmid-Hempel, P. Immune defence, parasite evasion strategies and their relevance for "macroscopic phenomena" such as virulence. P Roy Soc B-Biol Sci. 364 (1513), 85-98 (2009).
  35. Stearns, S. C., Koella, J. C. The evolution of phenotypic plasticity in life history traits- predictions of reaction norms for age and size at maturity. Evolution. 40 (5), 893-913 (1986).
  36. Stearns, S. C. Life-history tactics: a review of the ideas. Q rev biol. 51 (1), 3-47 (1976).
  37. Valtonen, T. M., Kleino, A., Ramet, M., Rantala, M. J. Starvation Reveals Maintenance Cost of Humoral Immunity. Evol Biol. 37 (1), 49-57 (2010).
  38. Sheldon, B. C., Verhulst, S. Ecological immunology: costly parasite defences and trade-offs in evolutionary ecology. Trend Ecol Evo. 11 (8), 317-321 (1996).
  39. Graham, A. L., Allen, J. E., Read, A. F. Evolutionary causes and consequences of immunopathology. Annu Rev Ecol Evol S. 36, 373-397 (2005).
  40. Best, A., Long, G., White, A., Boots, M. The implications of immunopathology for parasite evolution. P Roy Soc B-Biol Sci. 279 (1741), 3234-3240 (2012).
  41. Cator, L. J., George, J., et al. 34;Manipulation" without the parasite: altered feeding behaviour of mosquitoes is not dependent on infection with malaria parasites. P Roy Soc B-Biol Sci. 280 (1763), 20130711 (2013).
  42. Voordouw, M. J., Lambrechts, L., Koella, J. No maternal effects after stimulation of the melanization response in the yellow fever mosquito Aedes aegypti. Oikos. 117 (8), 1269-1279 (2008).
  43. Paskewitz, S., Riehle, M. A. Response of Plasmodium refractory and susceptible strains of Anopheles gambiae to inoculated Sephadex beads. Dev comp immunol. 18 (5), 369-375 (1994).

Play Video

Cite This Article
Barreaux, A. M. G., Barreaux, P., Thomas, M. B., Koella, J. C. Inoculating Anopheles gambiae Mosquitoes with Beads to Induce and Measure the Melanization Immune Response. J. Vis. Exp. (119), e55013, doi:10.3791/55013 (2017).

View Video