Here, we present a robust, fast and scalable cardiomyocyte differentiation protocol for human pluripotent stem cells (hPSCs). Cardiomyocytes derived using this large-scale method can provide sufficient cell numbers for their effective use in human cardiovascular disease modeling, high-throughput drug screening, and potentially clinical applications.
Максимизация выгоды человеческих плюрипотентных стволовых клеток (hPSCs) для проведения исследований, моделирования болезней, фармацевтических и клинических применений требуются надежные методы для крупномасштабного производства функциональных типов клеток, включая кардиомиоциты. Здесь показано, что временное манипулирование WNT, TGF-бета, и SHH сигнальных путей приводит к высокоэффективным кардиомиоциты дифференцировка одноклеточных пассированными линий HPSC как в статической суспензии и перемешивали систем подвески в биореакторе. Используя эту стратегию, привела к ~ 100% избиение сфероидов, последовательно содержащие> 80% сердечного тропонина Т-позитивных клеток после 15 дней культивирования, заверенной в нескольких строках HPSC. Мы также сообщаем о вариации этого протокола для использования с клеточными линиями в настоящее время не приспособленных к одноклеточным пассажей, успех которого проверяется в 42 строках HPSC. Кардиомиоциты, генерируемые с помощью этих протоколов экспресс маркеров клональные конкретных и шоу ожидается electrophysiological функциональные возможности. Наш протокол представляет собой простую, эффективную и надежную платформу для крупномасштабного производства человеческих кардиомиоцитов.
Человеческие плюрипотентные стволовые клетки (hPSCs), в том числе человеческих эмбриональных стволовых клеток (ЭСК) и индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (hiPSCs), обладают способностью к самообновлению и способностью дифференцироваться в клетки трех эмбриональных зародышевых листков 1,2. Благодаря этим характеристикам, hPSCs обеспечивают ценную и неограниченный источник для генерации и масштабируемой производства болезней релевантных типов клеток для моделирования заболевания человека 3-5, для высокой пропускной способности скрининга лекарственных средств и токсичности анализов 6,7 и потенциально для клинического применения 8 , Генерация кардиомиоцитов из hPSCs дает возможность конкретно исследовать механизмы сложных сердечно-сосудистых заболеваний человека и их возможные процедуры, ранее выходящие за рамки наших возможностей из-за отсутствия соответствующих моделей животных и / или наличия пострадавших первичных тканей.
Все вышеупомянутые применения hPSCs пecessitate производство огромного количества высокообогащенного и функциональных кардиомиоцитов. Таким образом, наличие эффективной, воспроизводимый и масштабируемый в пробирке сердца протокола дифференцировки подходит для нескольких линий HPSC имеет решающее значение. Обычные протоколы кардиомиоцитов дифференциации использовали различные стратегии , такие как формирование эмбриоидного тела 9, 10 методов совместного культивирования, индукцию с коктейлями цитокинов 11 и методов белка трансдукции 12. Несмотря на достижения в области этих технологий, большинство по-прежнему страдают от низкой эффективности, требуют дорогих факторов роста, или предлагают ограниченную универсальность при попытке использовать несколько строк HPSC. На сегодняшний день эти проблемы установили пределы производства HPSC-производных кардиомиоцитов для исследований клеточной терапии на животных моделях, а также в фармацевтической промышленности для обнаружения наркотиков 13. Поэтому разработка надежных и доступных методов для большого-scale производство функциональных HPSC-производных кардиомиоцитов в масштабируемых системах культивирования будет в значительной степени способствовать их коммерческих и клинических приложений.
В этой рукописи, мы сообщаем о разработке экономически эффективной и комплексной сердечной системы дифференциации с высокой эффективностью, воспроизводимости и применимости к ЭСК и hiPSCs, генерируемых из различных источников и методов культуры, в том числе метод для крупномасштабного производства высокообогащенного обогащенные популяции HPSC-производных кардиомиоцитов с использованием биореактора. Кроме того, мы оптимизировали этот протокол для линий HPSC не приспособленных к фидерных свободных и / или отдельно взятой культуре клеток, таких как вновь созданных hiPSCs или больших когорт HPSC линий, имеющих отношение к анализу механизма заболевания.
Кардиомиоциты, полученные из hPSCs являются чрезвычайно привлекательным источником для использования в моделировании заболеваний человека, испытывать снадобья скрининга / токсичности и, возможно, в будущем, регенеративной терапии. Одним из основных препятствий для использования этих ?…
The authors have nothing to disclose.
This study was funded by grants provided from Royan Institute, Iranian Council of Stem Cell Research and Technology, the Iran National Science Foundation (INSF), the National Health and Medical Research Council of Australia (NHMRC; 354400), the National Heart Foundation of Australia/Heart Kids Australia (G11S5629), and the New South Wales Cardiovascular Research Network. HF was supported by a University International Postgraduate Scholarship from the University of New South Wales, Australia. RPH was supported by a NHMRC Australia Fellowship. The authors express their gratitude to the human subjects who participated in this research.
Knockout DMEM | Life Technologies | 10829018 | |
Knockout Serum Replacement (KO-SR) | Life Technologies | 10828028 | |
Glutamax | Life Technologies | 35050061 | |
MEM Non-essential Amino Acids | Life Technologies | 11140-050 | |
β-Mercaptoethanol | Life Technologies | 21985-023 | |
Basic Fibroblast Growth Factor (bFGF) | Miltenyi Biotec | 130-093-843 | |
RPMI1640 | Life Technologies | 11875093 | |
DPBS, no calcium, no magnesium | Life Technologies | 14190144 | |
DPBS | Life Technologies | 14287072 | |
Attachment Factor (AF) | Life Technologies | S006100 | |
ECM Gel | Sigma-Aldrich | E1270 | |
Laminin | Invitrogen | 23017-015 | |
DMEM | Life Technologies | 11965-092 | |
Fatal Bovine Serum (FBS) | Life Technologies | 16140-071 | |
B27 minus insulin | Gibco | A18956-01 | |
Penicillin/Streptomycin | Life Technologies | 15070063 | |
0.05% Trypsin/EDTA | Life Technologies | 25300-054 | |
Collagenase Type IV | Life Technologies | 17140-019 | |
Calcium Chloride (CaCl2) | Sigma-Aldrich | C7902 | |
Mitomycin C | Bioaustralis | BIA-M1183 | |
CHIR99021 | Miltenyi Biotec | 130-104-172 | |
IWP2 | Miltenyi Biotec | 130-105-335 | |
SB431542 | Miltenyi Biotec | 130-095-561 | |
Purmorphamine | Miltenyi Biotec | 130-104-465 | |
ROCK inhibitor Y-27632 | Miltenyi Biotec | 130-104-169 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Sigma-Aldrich | E6758 | |
Poly Vinyl Alcohol (PVA) | Sigma-Aldrich | 363073 | |
Gelatin | Sigma-Aldrich | G1890 | |
Trypan Blue | Bio-Rad | 145-0013 | |
Accumax | Innovative Cell Technologies Inc. | AM105 | |
Sigmacote | Sigma-Aldrich | SL2 | |
CELLSPIN | Integra Biosciences | 183 001 | |
Spinner flask with 1 pendulum, 100 ml | Integra Biosciences | 182 023 | |
Mouse Embryonic Fibroblasts (MEF) | Prepared in-house (or commercially available) | ||
Human pluripotent stem cell (hPSC) lines | Prepared in-house (or commercially available) |