Summary

Ex Vivo optogénétiques Dissection de circuits Peur en tranches cérébrales

Published: April 05, 2016
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Summary

approches optogénétiques sont largement utilisés pour manipuler l'activité neuronale et d'évaluer les conséquences pour le fonctionnement du cerveau. Ici, une technique est décrit que , lors de l' expression in vivo de l'activateur optique channelrhodopsin, permet une analyse ex vivo des propriétés synaptiques de longue portée spécifique et les connexions locales dans les circuits neuronaux liés à la peur.

Abstract

approches optogénétiques sont maintenant largement utilisées pour étudier la fonction des populations de neurones et les circuits en combinant l'expression ciblée des protéines activées par la lumière et la manipulation ultérieure de l'activité neuronale par la lumière. Channelrhodopsins (CHRS) sont de cations canaux de lumière-dépendants et quand fusionné à une protéine fluorescente permet leur expression pour la visualisation et l'activation simultanée de types cellulaires spécifiques et leurs projections axonales dans les zones définies du cerveau. Par injection stéréotaxique de vecteurs viraux, des protéines de fusion peuvent être constitutivement Chr ou sous certaines conditions exprimées dans des cellules spécifiques d'une région du cerveau définie, et leurs projections axonales peuvent ensuite être étudiées anatomiquement et fonctionnellement par l' intermédiaire de l' activation ex vivo optogenetic dans des tranches de cerveau. Ceci est d'une importance particulière lorsque l'on cherche à comprendre les propriétés synaptiques des connexions qui ne pouvaient pas être traitées avec des approches classiques de stimulation électrique, ou dans l'identification roman affele loyer et la connectivité efférente qui a déjà été mal comprise. Ici, quelques exemples illustrent comment cette technique peut être utilisée pour étudier ces questions à élucider les circuits liés à la peur dans l'amygdale. L'amygdale est une région clé pour l'acquisition et l'expression de la peur, et le stockage de la peur et de souvenirs émotionnels. De nombreuses preuves suggèrent que le cortex préfrontal médian (CPFm) participe à différents aspects de l'acquisition de la peur et de l'extinction, mais sa connectivité précise avec l'amygdale commence à peine à être compris. Tout d' abord, il est montré comment ex vivo activation optogenetic peut être utilisée pour étudier les aspects de la communication synaptique entre les afférences MPFC et les cellules cibles dans l'amygdale basolatérale (BLA). En outre, il est illustré comment cette approche ex vivo optogenetic peut être utilisé pour évaluer les nouveaux modèles de connectivité à l' aide d' un groupe de neurones GABAergiques dans l'amygdale, le pôle paracapsular intercalation de cellules (mpITC), à titre d'exemple.

Introduction

des outils précis pour la visualisation et l'activation simultanée de connexions spécifiques entre les zones du cerveau et des types spécifiques de neurones sont de plus en plus important dans la compréhension des fonctions cérébrales et des maladies connectivité fonctionnelle états sains sous-jacents. Idéalement, cela implique une enquête physiologique des propriétés synaptiques précises avec lesquelles identifiés neurones communiquent. Cela est particulièrement vrai pour les connexions entre les zones du cerveau qui ne peuvent être conservés dans une seule tranche de cerveau aiguë. Dans le passé, cela a été réalisé en grande partie dans des expériences séparées. D'une part, les traceurs neuronaux injectés in vivo ont été employés combinée à la lumière ultérieure ou de l' analyse au microscope électronique des partenaires pré- et post – synaptiques. D'autre part, lorsque des faisceaux de fibres à partir de la région d'origine sont conservées et accessibles dans la préparation de tranches, la stimulation électrique a été utilisé pour évaluer les mécanismes de communication synaptiques avec des cellules dans la région cible,.

Avec l'avènement de l' optogénétique, l'expression ciblée de cations-canaux de lumière-gated, comme Channelrhodopsins (CHRS) fusionnée à des protéines fluorescentes, permet désormais l' activation des neurones et de leurs trajectoires axonales tout en permettant leur visualisation et l' analyse post-hoc anatomique 1- 4. Parce que les axones ChR exprimant peuvent être stimulés même quand il est coupé du parent somata 5, il est possible dans le cerveau des tranches à: 1) évaluer les contributions des régions du cerveau qui ne sont pas accessibles avec une stimulation électrique classique parce que des faisceaux de fibres ne sont pas séparables ou la trajectoire spécifique On ne sait pas; 2) d'identifier sans équivoque la région d'origine pour les entrées spécifiques qui ont été postulées mais incomplètement comprises; et 3) étudier la connectivité fonctionnelle entre les types cellulaires définis, à la fois localement et dans les projections à long terme. En raison d'un certain nombre d'avantages, cette cartographie optogenetic de circuits dans des tranches de cerveau est devenu largely utilisé dans les dernières années, et une variété de vecteurs viraux pour l'expression de CHRS fluorescence marqués sont facilement disponibles auprès de fournisseurs commerciaux. Quelques avantages clés d'activation optogenetic sur la stimulation électrique conventionnelle ne sont pas des dommages aux tissus en raison de placement des électrodes de stimulation, la spécificité de la stimulation de la fibre parce que la stimulation électrique peut également recruter des fibres de passage ou d'autres cellules voisines, et une stimulation aussi rapide et temporellement précis. En outre, l' injection stéréotaxique de vecteurs viraux peut facilement être ciblée sur des zones spécifiques du cerveau 6 et une expression spécifique conditionnelle ou de type cellulaire peuvent être réalisés en utilisant l' expression Cre dépendant et / ou des promoteurs spécifiques 7. Ici, cette technique est appliquée pour la cartographie de longue portée et de circuits locaux dans le système de la peur.

L'amygdale est une région clé pour l' acquisition et l' expression de la peur, et le stockage de la peur et de souvenirs émotionnels 8,9. Outre from l'amygdale, le cortex médial préfrontal (CPFm) et de l' hippocampe (HC), des structures qui sont réciproquement connectés à l'amygdale, sont impliqués dans les aspects de l' acquisition, la consolidation et la récupération de la peur et d' extinction des souvenirs 10,11. L' activité dans les subdivisions de la CPFm semble jouer un double rôle dans le contrôle de la peur à la fois haute et basse déclare 12,13. Cela pourrait être en partie médiée par des liaisons directes de CPFm à l'amygdale qui permettrait de contrôler l'activité de l'amygdale et de sortie. Par conséquent, au cours des dernières années, plusieurs études ont commencé en ex vivo des expériences de tranche pour étudier les interactions synaptiques entre afférences MPFC et les cellules cibles spécifiques dans l'amygdale 14-17.

Au cours de l'apprentissage de la peur, l'information sensorielle au sujet conditionné et inconditionné stimuli atteint l'amygdale via des projections des régions thalamiques et corticales spécifiques. Plasticité de ces entrées pour les neurones dans la partie latérale (LA) du BASOLamygdale ateral (BLA) est un mécanisme important qui sous – tend la peur conditionné 9,18. Des preuves croissantes suggèrent que les processus de plastique parallèles dans l'amygdale impliquent des éléments inhibiteurs pour contrôler la peur mémoire 19. Un groupe de neurones inhibiteurs en cluster sont les GABAergiques paracapsular intercalés cellules médiales (de mpITCs), mais leur connectivité et la fonction précise est incomplètement compris 20-22. Ici, la cartographie du circuit optogenetic est utilisé pour évaluer afférentes et efférentes la connectivité de ces cellules et leur impact sur ​​les neurones cibles dans l'amygdale, ce qui démontre que mpITCs reçoivent l' entrée sensorielle directe des stations de relais thalamiques et corticales 23. expression spécifique de ChR en mpITCs ou neurones BLA permet la cartographie des interactions locales, révélant que mpITCs inhibent, mais sont également mutuellement activé par, BLA principaux neurones, les plaçant dans des circuits inhibiteurs feed-forward et de rétroaction nouvelles qui contrôlent efficacement l'activité de BLA23.

Protocol

déclaration éthique: Toutes les procédures expérimentales étaient conformes à la directive européenne sur l'utilisation des animaux dans la recherche et ont été approuvés par le soin des animaux locaux et utilisation Comité (Regierungspräsidium Tübingen, état de Baden-Württemberg, Allemagne) responsable de l'Université de Tübingen. 1. Procédure d'injection stéréotaxique Préparer des outils stériles (ciseaux, scalpel, pinces, forage, aiguilles, matériel de suture) en …

Representative Results

Cette section présente le flux de travail d'une approche optogenetic ex vivo et des résultats représentatifs de différentes stratégies expérimentales pour étudier les propriétés physiologiques des projections sensorielles et modulateurs de longue portée à BLA et les neurones mpITC ainsi que les propriétés de connectivité locale entre mpITC et BLA. Après l' injection stéréotactique du vecteur v…

Discussion

Ce protocole décrit une méthode ex vivo enquête optogenetic des circuits neuronaux et la connectivité locale qui peuvent être facilement mises en œuvre sur la plupart, sinon tous, debout tranche enregistrement patch-clamp configurations en les dotant d'une ~ 470 LED au port de lumière épifluorescence nm. Un avantage majeur de la stimulation optogenetic des projections axonales en tranches est qu'il permet l'activation et l'investigation des propriétés des connexions qui ne sont pas acc…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Cora Hübner and Andrea Gall for help in acquiring some of the representative results. This work was supported by the Werner Reichardt Centre for Integrative Neuroscience (CIN) at the University of Tuebingen, an Excellence Initiative funded by the Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) within the framework of the Excellence Initiative (EXC 307), and by funds from the Charitable Hertie Foundation.

Materials

Surgery
Stereotactic frame Stoelting, USA 51670 can be replaced by other stereotactic frame for mice
Steretoxic frame mouse adaptor Stoelting, USA 51625
Gas anesthesia mask for mice Stoelting, USA 50264 no longer available, replaced by item no. 51609M
Pressure injection device, Toohey Spritzer Toohey Company, USA T25-2-900 other pressure injection devices (e.g. Picospritzer) can be used
Kwik Fill glass capillaries World Precision Instruments, Germany 1B150F-4
Anesthesia machine, IsoFlo Eickemeyer, Germany 213261
DC Temperature Controler and heating pad FHC, USA 40-90-8D
Horizontal Micropipette Puller Model P-1000 Sutter Instruments, USA P-1000
Surgical tool sterilizer, Sterilizator 75 Melag, Germany 08754200
rAAV-hSyn-ChR2(H134R)-eYFP (serotype 2/9) Penn Vector Core, USA AV-9-26973P
rAAV-CAGh-ChR2(H134R)-mCherry (serotype 2/9)  Penn Vector Core, USA AV-9-20938M
rAAV-EF1a-DIOhChR2(H134R)-YFP (serotype 2/1)  Penn Vector Core, USA AV-1-20298P
fast green Roth, Germany 0301.1
Isoflurane Anesthetic, Isofuran CP (1ml/ml) CP Pharma, Germany
Antiseptic, Betadine (providone-iodine) Purdure Products, USA BSOL32 can be replaced by other disinfectant
Analgesic, Metacam Solution (5mg/ml meloxicam) Boehringer Ingelheim, Germany can be replaced by other analgesics
Bepanthen eye ointment Bayer, Germany 0191 can be replaced by other eye ointment
Drill NM3000 (SNKG1341 and SNIH1681) Nouvag, Switzerland
Sutranox Suture Needle Fine Science Tools, Germany 12050-01
Braided Silk Suture Fine Science Tools, Germany 18020-60
Recordings, light stimulation, and analysis
artificial cerebrospinal fluid (ACSF) for composition see references #16 and #23
internal patch solutions for composition see references #16 and #23
MagnesiumSulfate Heptahydrate Roth, Germany P027.1 prepare 2M stock solution in purified water
Slicer, Microm HM650V Fisher Scientific, Germany 920120
Cooling unit for tissue slicer, CU65 Fisher Scientific, Germany 770180
Sapphire blade Delaware Diamond Knives custom order, inquire with company
Stereoscope, SZX2-RFA16 Olympus, Japan
Xcite fluorescent lamp (XI120Q-1492) Lumen Dynamics Group, Canada 2012-12699
Patch microscope, BX51WI Olympus, Japan
Multiclamp 700B patch amplifier  Molecular Devices, USA
Digitdata 1440A Molecular Devices, USA
PClamp software, Version 10 Molecular Devices, USA used to control data acquisition and stimulation
Bath temperature controler, TC05 Luigs & Neumann, Germany 200-100 500 0145
Three axis micromanipulator Mini 25 Luigs & Neumann, Germany 210-100 000 0010
Micromanipulator controller SM7 Luigs & Neumann, Germany 200-100 900 7311
glass capillaries for patch pipettes World Precision Instruments, Germany GB150F-8P
Cellulose nitrate filterpaper for interface chamber  Satorius Stedim Biotech, Germany 13006–50—-ACN
LED unit, CoolLED pE CoolLED, UK 244-1400 CoolLED or USL 70/470 and appropriate adapters are two alternative choices for LED stimulation
CoolLED 100 Dual Adapt CoolLED, UK pE-ADAPTOR-50E
LED unit, USL 70/470 Rapp Optoelectronic L70-000
Dual port adapter Rapp Optoelectronic inquire with company
Filter set red (excitation) AHF, Germany F49-560 Filters can be bought as set F46-008
                     (beamsplitter) AHF, Germany F48-585
                     (emission) AHF, Germany F47-630
Filter set green (excitation) AHF, Germany F39-472 Alternatives: filterset F36-149 or F46-002 (with bandpass emission)
                         (beamsplitter) AHF, Germany F43-495W
                         (emission) AHF, Germany F76-490
LaserCheck, handheld power meter Coherent, USA 1098293
IgorPro Software, Version 6 Wavemetrics, USA for electrophysiology data analysis, other alternative software packages can also be used 
Neuromatic suite of macros for IgorPro http://www.neuromatic.thinkrandom.com
Post hoc analysis of injections and projections
Paraformaldehyde powder (PFA) Roth, Germany 0335.2
Neurotrace 435/455 blue fluorescent Nissl stain Invitrogen N-21479
agar-agar for embedding and resectioning Roth, Germany 5210.3
30 x 10 mm petri dishes for embedding SPL Life Sciences alternatives can be used
Slides, Super Frost R. Langenbrinck, Germany 61303802 alternatives can be used
cover slips R. Langenbrinck, Germany 3000302 alternatives can be used
Vecta Shield mounting medium Vector Laboratories, USA H-1000 alternative mounting media can be used
cellulose nitrate filter for flattening slices for fixation Satorius Stedim Biotech, Germany 11406–25——N
Confocal Laser Scanning Microscope LSM 710 Zeiss, Germany

References

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Bosch, D., Asede, D., Ehrlich, I. Ex Vivo Optogenetic Dissection of Fear Circuits in Brain Slices. J. Vis. Exp. (110), e53628, doi:10.3791/53628 (2016).

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