Se describe un procedimiento experimental sencillo y rápido para la generación de fibroblastos primarios de las orejas y la cola de los ratones. El procedimiento no requiere una formación especial de los animales y se puede utilizar para la generación de cultivos de fibroblastos de los oídos almacenados a temperatura ambiente durante hasta 10 días.
Las células primarias se derivan directamente de tejidos y se cree que son más representativa del estado fisiológico de las células in vivo que las líneas celulares establecidas. Sin embargo, cultivos de células primarias por lo general tienen una vida finita y deben ser restablecido con frecuencia. Los fibroblastos son una fuente fácilmente accesible de células primarias. En este caso, hablamos de un procedimiento experimental simple y rápida para establecer cultivos de fibroblastos primarios de las orejas y la cola de los ratones. El protocolo puede ser utilizado para establecer cultivos de fibroblastos primarios de los oídos almacenados a temperatura ambiente durante hasta 10 días. Cuando el protocolo se sigue cuidadosamente, las contaminaciones son poco probable que ocurra a pesar de la utilización de tejido no estéril almacenada por un tiempo prolongado en algunos casos. Los fibroblastos proliferan rápidamente en la cultura y se puede ampliar a un número considerable antes de someterse a la senescencia replicativa.
Las células primarias se derivan de tejido y se cultivaron viven bajo condiciones in vitro. Se asume generalmente que las células primarias se asemejan más el estado fisiológico y el fondo genético del tejido del que se derivan de líneas celulares inmortalizadas o tumorales 1. Por esa razón, las células primarias representan un modelo útil para el estudio de cuestiones biológicas 2,3. Sin embargo, a diferencia de las líneas celulares establecidas que crecen indefinidamente, células primarias, finalmente, se someten a la senescencia en la cultura y necesitan ser restablecido con frecuencia.
Células primarias comúnmente usados incluyen fibroblastos, células epiteliales, células endoteliales, células T, células B, macrófagos derivados de médula ósea (BMDM) y células dendríticas derivadas de médula ósea (BMDC). Los fibroblastos se utilizan a menudo como modelo de cultivo celular primario. Ofrecen ventajas clave sobre otras células primarias. Los cultivos celulares son fáciles de establecer, fácilmente mantenido y no requieren Purificación de las células antes de la cultura. Tienen rápida proliferación inicial y sin necesidad de protocolos de medio o de activación especializados. Los fibroblastos se pueden transfectar eficientemente usando biológicos, químicos, físicos y protocolos de 4,5. Hay una posibilidad de almacenar oídos por hasta 10 días a temperatura ambiente antes de establecer cultivos celulares. Cultivos de fibroblastos son propicias para la visualización de los procesos citoplásmicos y adecuado para la reprogramación en células madre pluripotentes inducidas (iPS) 6.
Los fibroblastos son células importantes del tejido conectivo que secretan las proteínas de colágeno y matriz extracelular 7. Ellos proporcionan el marco estructural en muchos tejidos 8 y juegan un papel esencial en la curación de heridas y reparación de tejidos 9,10.
A continuación, describimos una (<4 h) Protocolo simple y rápida para establecer cultivos de fibroblastos de las orejas y la cola de los ratones 11. El protocolo requiere un mínimo de ratónexperiencia para la cosecha de los tejidos (en contraste con otros protocolos 12,13) y se puede utilizar para establecer cultivos de oídos almacenados en un medio a temperatura ambiente durante hasta 10 días.
Aquí le ofrecemos un procedimiento experimental simple, barato y rápido para establecer cultivos de fibroblastos primarios de las orejas y la cola de los ratones. La extracción debe resultar en fibroblastos en división adherentes y rápidamente dentro de 3 días post-aislamiento del tejido. Una limitación importante de células primarias es la senescencia, una detención del crecimiento permanente 15. Utilizando el protocolo, cultivos de fibroblastos se pueden pasaron durante 5 a 6 veces antes de fibrobl…
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by the NRF grant HUJ-CREATE – Cellular and Molecular Mechanisms of Inflammation.
RPMI-1640 | HyClone | SH30027.01 | |
Fetal Calf Serum | HyClone | SV30160.03 | |
2-mercaptoethanol | Sigma-Aldrich | M3148 | |
Asparagine | Sigma-Aldrich | A4159 | |
Glutamine | Sigma-Aldrich | G8540 | |
Penicillin/Streptomycin | HyClone | SV30010 | |
Ethanol | Merck Millipore | 107017 | Absolute for analysis |
Collagenase D | Roche Diagnostics | 11088866001 | From Clostridium histolyticum, lyophilized, non-sterile |
Pronase protease | Merck Millipore | 53702 | From Streptomyces griseus |
Tris buffer (pH 8) | 1st BASE | 1415 | Ultra pure grade |
0.5M EDTA (pH 8) | 1st BASE | BUF-1053 | Biotechnology grade |
10X Phosphate Buffered Saline (PBS) | 1st BASE | BUF-2040-10X4L | Ultra pure grade |
Trypsin-EDTA solution 10X | Sigma-Aldrich | 59418C-100ML | 0.5% trypsin, 0.2% EDTA, trypsin gamma irradiated by SER-TAIN process, without phenol red, in saline |
Amphotericin B | Sigma-Aldrich | A2492-20ml | 250 μg/ml in deionized water, sterile-filtered |
Scissors | Aesculap | ||
Forcep | Aesculap | AE-BD312R | |
0.2 μM syringe filter | Sartorius Stedim | 16534 | |
70 μM cell strainer | SPL | 93070 | |
Syringe plunger | Terumo | SS+10L | |
Cryovial tube | NUNC | 368362 | |
1.7 ml microcentrifuge tube | Axygen | MCT-175-C | |
10 cm cell culture dish | Greiner | 664160 | Cell culture treated dish |
15 ml conical bottom tube | Greiner | 188271 | |
50 ml conical bottom tube | Greiner | 227261 | |
Water bath | GFL | 1002 | |
Centrifuge | Eppendorf | 5810R | |
Incubation shaker | Sartorius Stedim | Certomat-BS1 | |
Zeiss Axiovert 25 light microscope | Carl Zeiss AG |