Summary

Imaging InlC secreción de investigar la infección celular por el patógeno bacteriano<em> Listeria monocytogenes</em

Published: September 19, 2013
doi:

Summary

Listeria monocytogenes es un patógeno bacteriano Gram positiva utilizado frecuentemente como un modelo importante para el estudio de parasitismo intracelular. Imágenes tardías L. monocytogenes etapas de infección en el contexto de los pequeños ARN de interferencia pantallas permite el estudio global de las vías celulares requeridos para la infección bacteriana de las células huésped diana.

Abstract

Patógenos bacterianos intracelulares pueden ser concebidos como herramientas moleculares para disecar cascadas de señalización celular debido a su capacidad para manipular exquisitamente y subvertir las funciones celulares que se requieren para la infección de tejidos diana del huésped. Entre estos agentes patógenos bacterianos, Listeria monocytogenes es un microorganismo Gram positiva que se ha utilizado como un paradigma para el parasitismo intracelular en la caracterización de la respuesta inmune celular, y que ha desempeñado un papel decisivo en el descubrimiento de las vías moleculares que controlan la dinámica del citoesqueleto y de la membrana de la trata. En este artículo se describe un ensayo microscópico robusta para la detección de las etapas de la infección celular tardías de L. monocytogenes basan en el etiquetado fluorescente de InlC, una proteína secretada bacteriana que se acumula en el citoplasma de las células infectadas; este ensayo se puede acoplar a las pequeñas pantallas de ARN de alto rendimiento de interferencia automatizados con el fin de carbonizarterizar vías de señalización celular implicadas en la altura o hacia abajo-regulación de la infección.

Introduction

La bacteria Gram positiva Listeria monocytogenes es un patógeno transmitido por los alimentos que invade las células huésped, interrumpe su vacuola internalización y se replica en el citoplasma de las células huésped 1. L. monocytogenes facilidad de manipulación en el contexto de laboratorio (rápido crecimiento, baja toxicidad para los individuos sanos) asociado con la persistencia de rasgos de virulencia bacterianas observadas en modelos celulares y animales (actividad hemolítica, leucocitosis) permite su uso inicial en la década de 1960 como un modelo importante para el estudio de parasitismo intracelular y para el establecimiento de los fundamentos teóricos de la inmunidad celular contra la infección 2. A finales de 1980 y principios de 1990, la disección del ciclo intracelular bacteriano 3, así como la caracterización molecular de la virulencia bacteriana más importante factores de 4-7 favoreció el uso de L. monocytogenes como una herramienta clave molecular para la manipulación y el pernoy de las funciones de la célula huésped. La presencia de no virulenta (L. innocua) y (Listeria monocytogenes) especies virulentas en el género Listeria allanaron el camino para estudios genómicos comparativos 8 que, junto con la reciente creación de la completa L. monocytogenes transcriptoma 9, han aumentado nuestra comprensión de la evolución de la L. monocytogenes como un patógeno humano y como un sistema modelo para estudios de infección 10.

L. monocytogenes induce su internalización en las células huésped en la interacción de las proteínas de la superficie bacteriana INLA y InlB con sus receptores de células huésped E-cadherina y Met, respectivamente 11-12. Estudios basados ​​en la candidata inicial condujeron a la identificación del enlace cateninas-actina α / β como un componente importante de la vía InlA-13 y la invasión de la fosfoinosítido 3-quinasa (PI 3-K) como un efector crítico de la InlB- casca invasión dependientede 14-15. Ensayos proteómicos y basados ​​funcional posteriormente permitieron la identificación de nuevos elementos del citoesqueleto y 16 segundos mensajeros lipídicos 17 requeridos para la invasión de la célula huésped. Estudios transcripcionales 18 y proteómica cuantitativa basada en la espectrometría de masas 19 se han esclarecido algunos puntos en relación con la activación de cascadas de señalización de acogida y la represión de la respuesta inmune durante la L. monocytogenes infección. La biología de sistemas se acerca basado en la inactivación de los grandes conjuntos de genes (kinomes, genomas completos) por pequeños ARN de interferencia (siRNA) silenciamiento se han abierto recientemente nuevas vías para el análisis de la serie mundial de las cascadas de señalización en el contexto de las funciones celulares específicas, incluyendo la fagocitosis y internalización patógeno 20. Pantallas siRNA del genoma completo han realizado anteriormente para investigar cascadas celulares requeridos para la infección de L. monocytogenes en fagocítica Drosophila </eM> células S2 21-22, pero este tipo de análisis no ha sido realizado en las células no fagocíticas, que representan objetivos críticos para la infección in vivo.

Hemos optimizado un protocolo para la detección microscópica de las etapas tardías de la infección por L. monocytogenes que es adecuado para siRNA estudios de alto rendimiento de la entrada de bacterias dentro de las células epiteliales. Nuestro ensayo se aprovecha de una L. altamente invasiva monocytogenes cepa que presenta una mutación puntual en PrfA, el principal regulador de la transcripción de L. monocytogenes factores de virulencia 6: esta mutación (llamado PrfA *) hace que PrfA constitutivamente activa 23 y conduce a un aumento de la expresión de las proteínas de invasión inlA y InlB, por lo tanto, favorecer la entrada de bacterias en células no fagocíticas de lo contrario pobremente infectados. Nuestra lectura para la infección se basa en la detección de la acumulación citosólica de la secretada InlC proteína bacteriana: esta molécula esun efector pleiotrópica que se expresa preferentemente por intra-citoplasmática L. monocytogenes 9 y que participa no sólo en la célula de células-a-bacteriana propagan 24 pero que también modula las respuestas inmunes del huésped 25. El marcaje fluorescente de la secreción de InlC por bacterias intracelulares no sólo permite distinguir claramente infectado a partir de células no infectadas, sino que también representa una lectura de punto final que se puede utilizar para diseccionar posteriormente infección en sus diferentes pasos: entrada, de escape vacuolar, citosólica bacteriana la proliferación y propagación de célula a célula. Este protocolo basado en microscopía-puede estar acoplado a las pantallas de siRNA por lo tanto, para estudiar las vías celulares implicadas en la infección de células huésped por L. monocytogenes.

Protocol

1. Preparación de Celular y bacterianas Culturas, Herramientas de transfección y Anticuerpos primarios Preparar una placa de agar fresco para aislar individuo L. monocytogenes colonias a partir de un stock de glicerol bacteriana (50% glycerol/50% saturada cultivo de una noche de líquido bacteriano) mantuvo a -80 ° C. El uso de un bastidor de aluminio (se mantiene a -80 ° C) para el transporte de un Congelados glicerol bacteriana de valores, las bacterias del rayado en una infusión de c…

Representative Results

Etiquetado fluorescente de citoplasmática InlC proporciona una lectura robusta para la infección de células por L. monocytogenes, como se ilustra en la Figura 1: la célula central en la micrografía es altamente infectadas por la cepa P14.PrfA * 23 como se puede observar en la imagen de contraste de fase (puntas de flecha, Figura 1A) y se confirma por la señal DAPI donde bacterias individuales se pueden distinguir con claridad (fig. 1B). La tinc…

Discussion

Varios parámetros son críticos para el éxito de nuestro protocolo InlC-detección, incluyendo el uso de líneas de células sanas que muestran un citoplasma suficientemente grande para permitir una detección inequívoca de la señal de InlC. En el ensayo se presentan en este artículo se propone el uso de células HeLa CCL2, que son particularmente muy adecuado para nuestro ensayo debido a la extensión de su espacio citosólico; otros clones de HeLa tales como células HeLa Kioto muestran un citoplasma más pequeñ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

La investigación en el laboratorio de P. Cossart es apoyado por el Instituto Pasteur, el Institut National de la Santé et de la Recherche Medicale, el Instituto Nacional de Investigación Agronómica, ERC Advanced Grant (233.348), la Agence Nationale de la Recherche (Grant MIE- SignRupVac), la Fundación Louis-Jeantet y la Fondation Le Roch Les Mousquetaires. AK es un beneficiario de una beca de la Universidad de París-Pasteur Internacional de Doctorado del programa / Institut Carnot Maladies infectieuses. Damos las gracias a Jason Mercer para la optimización del protocolo de transfección celular.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Bacto Brain Heart Infusion BD 237500 For liquid BHI preparation
Bacto Agar BD 214010 Supplement to liquid BHI for BHI agar plates
Heat-Inactivated Fetal Bovine Serum Biowest 51830-500
DMEM Invitrogen 61965-026
Lipofectamine RNAiMax Invitrogen 13778-100
Gentamicin Sigma G1397-10ML
Formaldehyde (16%) EMS 15710 Prepare fresh before each experiment
Anti-Rabbit Alexa Fluor 546 Invitrogen A-11035
DAPI Invitrogen D-1306
Phalloidin Dy647 Dyomics 647-33
siRNA Scramble Dharmacon D-001810-10
siRNA Met Dharmacon L-003156-00-0005
Black 384-well microscopy cell culture plate Corning 3985
AxioObserver Z1 microscope Zeiss 431007 9901
sCMOS camera Andor Neo
Metamorph analysis software Molecular Devices 4000
CellProfiler analysis software Broad Institute Public software available at http://www.cellprofiler.org/

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Cite This Article
Kühbacher, A., Gouin, E., Mercer, J., Emmenlauer, M., Dehio, C., Cossart, P., Pizarro-Cerdá, J. Imaging InlC Secretion to Investigate Cellular Infection by the Bacterial Pathogen Listeria monocytogenes. J. Vis. Exp. (79), e51043, doi:10.3791/51043 (2013).

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