Summary

<sub> 1</sub> F<sub> O</sub> АТФазы Подготовка пузырька и техника исполнительских патч зажим Записи субмитохондриальных мембран везикул

Published: May 04, 2013
doi:

Summary

Способе выделения пузырьков субмитохондриальных обогащенный F1FO АТФ-синтазы комплексов из мозга крысы описано. Эти пузырьки позволяют изучение активности АТФазы F1FO комплекса и его модуляции с использованием техники записи патч зажима.

Abstract

Митохондрии участвуют во многих важных клеточных функций, включая метаболизм, выживание 1, развитие и, кальциевой сигнализации 2. Два из наиболее важных функций митохондрий связаны с эффективного производства АТФ, энергия валюты из клетки, по окислительного фосфорилирования, и посредством сигналов запрограммированной клеточной смерти 3.

Фермент в первую очередь отвечает за производство АТФ F1FO-АТФ-синтазы, которая также называется АТФ-синтазы 4-5. В последние годы, роль митохондрий в апоптозе и некротической гибели клеток получила значительное внимание. В апоптоза, BCL-2 семьи белки, такие как Bax введите митохондриальные наружной мембраны, олигомеризоваться и проницаемыми внешнюю мембрану, высвобождая проапоптотические факторов в цитозоль 6. В классическом некротической гибели клеток, такие как отходы ишемии или эксайтотоксичностью в нейронах, крупе, плохо регулируется увеличение матрицы кальций способствует открытию внутреннего пор мембраны, митохондриальных пор переход проницаемости или МРТР. Это деполяризует внутренней мембраны и вызывает осмотические сдвиги, способствующие разрыву внешней мембраны, выпуск проапоптотические факторы и метаболические дисфункции. Многие белки, включая Bcl-XL 7 F1FO взаимодействовать с АТФ-синтазы, модулирующей функции его. Bcl-X L непосредственно взаимодействует с бета-субъединицы АТФ-синтазы F1FO, и это взаимодействие уменьшается утечка проводимость в F1FOATPasecomplex, увеличение чистой переноса Н + на F1FO в течение F1FO АТФазы 8 и тем самым увеличивая митохондриальной эффективности. Для изучения активности и модуляция АТФ-синтазы, мы изолированы от грызунов мозговых пузырей субмитохондриальных (SMVs), содержащий F1FO АТФазы. SMVs сохранить структурную и функциональную целостность F1FO АТФазы, как показано на Alavian соавт. Здесь мы описываем способчто мы успешно используется для изоляции SMVs из мозга крысы, и мы разграничить технику патч зажим для анализа активности канала (ионная проводимость утечки) из SMVs.

Protocol

1. Мозг митохондриальной Изоляция (адаптировано из Браун MR и др.. 9) Жертвоприношение крысы с использованием методов одобрены Институциональные уходу и использованию животных комитета (IACUC). Отрежьте голову животного путем обезглавливания, порезать кожу и выставит…

Representative Results

Первым шагом нашего протокола позволяет изолировать очищенной митохондрии, как показано методом вестерн-блоттинга на рисунке 1. На фиг.2 показан пример полученного из головного мозга субмитохондриальных записи патч везикул. Использование наизнанку патч конфигураци…

Discussion

Описанные здесь способы включить выделение чистой митохондрий в конце стадии 1 и субмитохондриальных везикулы (SMVs) после шага 2 от всего головного мозга без различия клетки phenotypes.SMVspurified этим методом, по существу свободный от загрязнения другими субклеточные органеллы, как показано <stron…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Name Company Catalogue number
Potter-Elvehjem Tissue Grinder withPTFEPestle Krackeler Scientific, Inc. 1-7725T-5
Eppendorf Centrifuge 5424 Eppendorf 5424 000.410
4639 Cell Disruption Vessel Parr Instrument Company 4639
Ficoll Sigma-Aldrich F5415
Polycarbonate centrifuge tubes Beckman Coulter P20314
SW-50.1 rotor Beckman Coulter
L8-70M Ultracentrifuge Beckman Coulter
Digitonin Sigma-Aldrich D5628
Lubrol PX (C12E9) Calbiochem 205534
Axopatch 200B Axon Instruments
Digidata 1440A Molecular Device
pClamp10.0 Molecular Device
Manipulator Sutter Instrument
Borosilicate glass capillary World Precision Instruments 1308325
Flaming/Brown Micropipette Puller Model P-87 Sutter Instrument

References

  1. Cheng, W. C., Berman, S. B., Ivanovska, I., Jonas, E. A., Lee, S. J., Chen, Y., Kaczmarek, L. K., Pineda, F., Hardwick, J. M. Mitochondrial factors with dual roles in death and survival. Oncogene. 25, 4697-4705 (2006).
  2. Duchen, M. R., et al. Mitochondria and calcium in health and disease. Cell Calcium. 44, 1-5 (2008).
  3. Lemasters, J. J. Modulation of mitochondrial membrane permeability in pathogenesis, autophagy and control of metabolism. J. Gastroenterol. Hepatol. 22, S31-S37 (2007).
  4. Cox, G. B., Jans, D. A., Fimmel, A. L., Gibson, F., Hatch, L. Hypothesis. The mechanism of ATP synthase. Conformational change by rotation of the beta-subunit. Biochim. Biophys. Acta. 768, 201-208 (1984).
  5. Cox, G. B., Fimmel, A. L., Gibson, F., Hatch, L. The mechanism of ATP synthase: a reassessment of the functions of the b and a subunits. Biochim. Biophys. Acta. 849, 62-69 (1986).
  6. Cory, S., Huang, D. C., Adams, J. M. The Bcl-2 family: roles in cell survival and oncogenesis. Oncogene. 22, 8590-8607 (2003).
  7. Vander Heiden, M. G., Thompson, C. B. Bcl-2 proteins: regulators of apoptosis or of mitochondrial homeostasis. Nat. Cell Biol. 1, 209-216 (1999).
  8. Alavian, K. N., Li, H., Collis, L., Bonanni, L., Zeng, L., Sacchetti, S., Lazrove, E., Nabili, P., Flaherty, B., Graham, M., Chen, Y., Messerli, S. M., Mariggio, M. A., Rahner, C., McNay, E., Shore, G. C., Smith, P. J. S., Hardwick, J. M., Jonas, E. A. Bcl-xL regulates metabolic efficiency of neurons through interaction with the mitochondrial F1FO ATP synthase. Nat. Cell Biol. 13 (10), 1224-1233 (2011).
  9. Brown, M. R., Sullivan, P. G., Dorenbos, K. A., Modafferi, E. A., Geddes, J. W., Steward, O. Nitrogen disruption of synaptoneurosomes: an alternative method to isolate brain mitochondria. Journal of Neuroscience Methods. 137, 299-303 (2004).
  10. Chan, T. L., Greenawalt, J. W., Pedersen, P. L. Biochemical and ultrastructural properties of a mitochondrial inner membrane fraction deficient in outer membrane and matrix activities. J. Cell Biol. 45 (2), 291-305 (1970).
  11. Young, H. K. o., Delannoy, M., Hullihen, J., Chiu, W., Pedersen, P. L. Mitochondrial ATP Synthasomes. J. Biol. Chem. 278 (14), 12305-12309 (2003).

Play Video

Cite This Article
Sacchetti, S., Alavian, K. N., Lazrove, E., Jonas, E. A. F1FO ATPase Vesicle Preparation and Technique for Performing Patch Clamp Recordings of Submitochondrial Vesicle Membranes. J. Vis. Exp. (75), e4394, doi:10.3791/4394 (2013).

View Video