Summary

زراعة والكهربية من الخلايا على رقائق التصحيح، المشبك NRCC

Published: February 07, 2012
doi:

Summary

نظهر كيف مستو التصحيح، المشبك رقائق ملفقة في المجلس الوطني للبحوث في كندا يتم تعقيم، تستعد، محملة المتوسطة، مطلي مع الخلايا، ويستخدم لتسجيلات الكهربية.

Abstract

نظرا لحساسيتها الفائقة والقدرة على رصد ومراقبة الخلايا الفردية على مستوى القنوات الأيونية، والتصحيح، تحامل هو معيار الذهب من الكهربية المطبقة على نماذج من الأمراض وشاشات الأدوية على حد سواء 1. الأسلوب ينطوي تقليديا الاتصال بلطف زنزانة مع ماصة الزجاج يشغلها حل الفسيولوجية من أجل عزل قطعة من الغشاء تحت ذروته 2. إلكترود إدراجها في ماصة يلتقط ايون قناة نشاط داخل غشاء أو التصحيح، عندما تمزق، لخلية كاملة. في العقد الماضي، تم اقتراح التصحيح، المشبك رقائق كبديل 3 و 4: فيلم وعلقت يفصل بين المتوسطة الفسيولوجية من ثقافة المتوسط، وفتحة microfabricated في الفيلم محل ذروة ماصة. وقد تم إدماج التصحيح، المشبك رقائق في النظم الآلية وتسويقها للالفرز الفائق الإنتاجية 5. إلى incrتخفيف من الناتج، وأنها تشمل تسليم fluidic من الخلايا من التعليق، وتحديد المواقع الخاصة بهم على فتحة بواسطة الشفط، والروتين الآلي للكشف عن خلية إلى تحقيق الأختام والدخول في وضع خلية كاملة. وأفادت ونحن على تصنيع شريحة التصحيح، المشبك السيليكون مع مقاومة محسنة وشكل فتحة تسمح بتسجيل عالي الجودة من إمكانات العمل في الخلايا العصبية حلزون مثقف مؤخرا، ونحن وذكرت أيضا التقدم نحو استجواب الخلايا العصبية في الثدييات 7. هي ملفقة لدينا التصحيح، المشبك رقائق في المركز الكندي تلفيق الضوئيات مسبك التجارية، وتتوفر في سلسلة كبيرة. نحن حريصون على الدخول في تعاون مع electrophysiologists للتحقق من صحة استخدام التكنولوجيا NRCC في نماذج مختلفة. وتستخدم رقائق وفقا للمخطط العام وتتمثل في الشكل رقم 1: لشرائح السليكون هو في الجزء السفلي من قارورة ثقافة زجاجي والجزء الخلفي من فتحة متصلة chann الجوفيةشرم مزودة أنابيب على طرفي الصفقة. يتم استزراع الخلايا في قنينة ويتم رصد الخلية على رأس لجنة التحقيق من قبل القطب القياس المدرجة في 2 channel.The خارج الموانئ fluidic تسهيل تبادل حل مع الحد الأدنى من إزعاج للخلية، وهذه هي ميزة مقارنة مع ماصات زجاجية للداخل الخلايا نضح.

الشكل 1

الشكل 1. مبدأ القياس باستخدام NRCC التصحيح، المشبك رقاقة

نحن هنا من التفصيل البروتوكولات لتعقيم ورئيس والرقائق، تحميلها مع لوحة، والمتوسطة منها مع الخلايا، واستخدم أخيرا لهم للتسجيلات الكهربية.

Protocol

1. رقاقة تلفيق في عملية وصفها في عدد 6 نتيجة في فيلم قائم بذاته سميك 3 ميكرومتر، وانخفاض 1 مقاومة الوصول Mohm وعلى نحو سلس، وظهرت على شكل قمع الفتحة التي تسهل ختم الحميمة مع الخلية 9، انظر الشكل رقم 2. وsingulated رقائق ولصقها في حزم زجاجي مع فتحة التي تواجه حفرة توصيل رقاقة إلى قناة تحت الأرض. تم الاستغناء عن الإلتصاق بطريقة تقلل من السعة تحويلة إلى PF 17 الاسمي. يتم تركيبها مع اثنين من حزم قطرها 1.5 مم و 6 مم أنابيب زجاجية طالما الموانئ fluidic (الشكل 3). الشكل 2. مسح صورة مجهرية الإلكترون من قسم ايون شعاع تركز على شريحة من التصحيح، المشبك NRCC يظهر ثاني أكسيد السيليكون السلس السطح وشكل قمع الذي يفضل الاتصالات خلية حميم، وفتحة الضحلة ويمثل مقاومه وصول منخفضه. الشكل 3. يتم لصقها على رقاقة في الجزء السفلي من القارورة ثقافة في حزمة زجاجي مزودة fluidics الجوفية وأنابيب زجاجية. 2. التعقيم، وفتيلة والاختبار يجب أن يتم تنفيذ الخطوات التالية في علم الأحياء مجلس الوزراء السلامة لتجنب التلوث أو يسد من فتحة. ويمكن استخدام الرقائق في تعقيم نظافة Harrick البلازما الأساسية (www.harrickplasma.com) مع الضغط ميليبار 0،1-0،3 الهواء المتبقي لمدة 15 دقيقة على أقصى قدر من السلطة في 18 دبليو اخرى نظم البلازما الجوية، مع كثافة الطاقة مقارنة (24 ميغاواط / سم 3) والحفاظ على المنتج من كثافة الطاقة والوقت ثابت. العلاج البلازما يجعل أيضا من رقائق ماء، مما يسهل فتيلة. تتناسب مع أنابيب زجاجية معقمة Silastic مختبر أنبوب السيليكون، 1MM معرف X 2mm في التطوير التنظيمي (كول Parmerالقط. # 96115-08)، 3inch على جانب واحد، 1 بوصة على الجانب الآخر. شغل fluidics من خلال أنابيب مع العقيمة الحل معيار تصفية العازلة الفوسفات (PBS)، والتأكد من المحاصرين لا فقاعة. مقطع من أنبوب السيليكون طويلة في حين الضغط على برنامج تلفزيوني من الجانب قصيرة في 1 الصراف الآلي. ويمكن لمجموعة من برنامج تلفزيوني تتسرب من خلال فتحة تكون مرئية في قارورة. مقطع العرض الضغط من برنامج تلفزيوني وفصل أنبوب السيليكون قصير من هذا العرض. ملء قارورة مع تصفية PBS باستخدام حقنة. تزج 1 جي / حج: CL قطب كهربائي في أنبوب قصير ومكافحة الكهربائي في قارورة. يتم استخدام متر مقاومة للتأكيد على أن المقاومة وصول ما بين 300kohm و3Mohm والسعة تحويلة بين 10pF و25pF. ألف رقاقة مع انخفاض المقاومة من المحتمل أن يكون تسرب، ويعتبر من أعلى السعة غير مناسب للاستخدام لأنه لا يجوز القبض على أسرع ديناميات الكهربية الخلية 6. ألف رقاقة مع انخفاض السعةأو يعتبر أعلى مقاومة صوم، على الرغم من أنه يمكن أن يكون ببساطة أن فقاعة محاصرين في فوهة. وبعض رقائق إعادة اختبار بعد 1H، ووجدت لديهم مقاومة كهربائية الصحيح. مسح قناة fluidic مع ماء منزوع الأيونات العقيمة؛ تفريغ قارورة أعلى وشطف مع مرتين، واحدة. تزج في رقاقة حزم مع الأنابيب في المياه العذبة منزوع الأيونات المعقمة ل30min ثم يتم تحميلها مع رقائق الأخرى في وعاء مملوء بالماء المعقم منزوع الأيونات العقيمة. هذا يضمن أن تبقى رقائق ماء وحمايتها من التلوث. 3. رقائق في إعداد مختبر بيولوجيا الخلية يتم تنفيذ الخطوات التالية في HEPA تصفية رقائقي تدفق غطاء محرك السيارة باستخدام تقنيات العقيم، لا بد من تصفية جميع الحلول المستخدمة في هذا الإجراء تعقيمها قبل استخدامها باستخدام فلتر 0.22μm. فتح الحاوية رقاقة تحت غطاء محرك السيارة HEPA تصفية رقائقي تدفق وإزالة رقاقات من CONTAiner مواجهة لتجنب شفط الملوثات العائمة ممكن إلى أعلى القارورة. شطف العلوي من قنينة من 2X رقاقة مع الماء المصفى حديثا منزوع الأيونات معقم لإزالة أي حطام المتبقي من سطح رقاقة. نضح منزوع الأيونات الماء المعقم قبالة رأس القارورة. ربط واحدة من نهاية الأنابيب silastic تعلق على قناة fluidic إلى حقنة الضغط التي تحتوي على ماء منزوع الأيونات العقيمة التي تمت تصفيتها. في نظامنا، والمحاقن مملوءة حل يتعرضن لضغوط من قبل الصدد الى خزان الهواء المضغوط لتعيين 20psi. للتأكد من العقم، ويتم تصفية الهواء (0.22 ميكرون فلتر) قبل دخوله الى حقنة ونظامنا أيضا لديه صمام / إيقاف تسمح لنا لوقف أو الضغط عند الحاجة. باستخدام ملقط قاطع للنزف، المشبك في نهاية الناتج من الأنابيب. فتح / قبالة صمامات للضغط على حل. لشطف fluidic subterranen من الشريحة مع المياه العذبة منزوع الأيونات عقيم، unclamp نهاية الناتج من الأنابيب. لللم الماء تصل من خلال فتحة، المشبك في نهاية الإخراج من أنبوب مع مرقئ. لتجنب تصريف المياه، المشبك نهايات المدخلات والمخرجات من الأنبوب مع المرقأة وأغلق على / قبالة صمامات. فصل في نهاية الإدخال للأنابيب من الحقنة. إدراج سدادات الزجاج في كلا طرفي الأنبوب وإزالة المرقأة. ملء قارورة ماء مع أعلى steriled مرشح منزوع الأيونات. وضع غطاء من طبق العقيمة 35 ملم في قاعدة طبق العقيمة 100 ملم رقاقة مكان على الجزء العلوي من غطاء 35 مم و 100 مم مع غطاء غطاء صحن. رقائق صورة للتأكد من أن الغشاء وفتحة من رقائق خالية من الحطام و / أو فقاعات الهواء. في مختبرنا نستخدم مجهرا تستقيم و20X هدف طويل المسافة العمل. إذا الحطام و / أو فقاعات الهواء موجودة، طرد مرارا قناة fluidic وقارورة أعلى. إذا لا يمكن أن الحطام و / أو فقاعات الهواء يمكن إزالتها يتم تجاهل رقاقة. مرة واحدة في الأوقات العصيبةالمصورة، والعودة إلى غطاء محرك السيارة تدفق رقائقي وافصل طرفي الأنبوب. تعلق واحدة من نهاية الأنابيب إلى حقنة تحتوي على وسائل الاعلام الضغط الفسيولوجية. المشبك في نهاية الإخراج من أنبوب مع مرقئ فتح صمام الضغط، وإزالة مرقئ من نهاية الإخراج من fluidics ومسح قناة fluidic مع وسائل الاعلام الفسيولوجية لشطف fluidic الجوفية مع وسائل الاعلام الفسيولوجية، وفتح على / قبالة صمامات وإزالة مرقئ من نهاية الناتج من الأنابيب. لإجبار وسائل الإعلام الفسيولوجية تصل من خلال فتحة، المشبك في نهاية الإخراج من أنبوب مع مرقئ. المشبك نهاية الإدخال من الأنبوب مع مرقئ وأغلق على / قبالة صمامات. إزالة نهاية الإدخال للأنابيب من المحاقن والمكونات طرفي الأنبوب مع المقابس الزجاج. إزالة المرقأة. إزالة المياه من قارورة أعلى. ملء قارورة أعلى مع وسائل الاعلام مرشح الفسيولوجية تعقيمها. وضع رقاقة ظهر في طبق بيتري مم 100. وضع قاعدة للصحن 35 ملم الى 100 ملم طبق وملء مع ماء منزوع الأيونات تعقيم فلتر لتخصيب الرطوبة. تغطية صحن حتى الوقت قد حان لتصفيح 4. تصفيح خلية من الخلايا العصبية الحلزون قد رقائق التصحيح، المشبك تكون مناسبة لمجموعة متنوعة من الأعمال التحضيرية. ونحن حاليا اختبار رقائق لدينا مع الخلايا العصبية في الثدييات القشرية الابتدائية وحصلت على النتائج الأولية مع الخلايا المزروعة لمدة 14 يوما 7، مما يدل على أن لدينا بروتوكول تعقيم غير كافية، وأنه في الأوقات العصيبة ليس السامة للخلايا في المدى الطويل الثقافات. لغرض هذا البروتوكول، وقد تم اختيار الخلايا العصبية الحلزون لأنها تمثل نموذجا بسيطا ولكن راسخة لدراسة الخلايا العصبية الكهربية 11، وهذا هو الحال مع تلك الخلايا التي حصلنا عليها أهم النتائج إلى تاريخ 10. مفصلة وإجراءات عزل خلية ثقافة لديهاوصفت سابقا 12 و 13. إزالة القشرة الخارجية 2-3 الراكدة شهر المنقعية القديمة مع ملقط كليلة والحيوانات تخدير في المياه المالحة التي تحتوي على المنقعية يسترين 10٪. تنفيذ كافة الخطوات اللاحقة ضمن جو معقم و مطهر رقائقي تدفق الهواء مع غطاء محرك السيارة معدات تعقيم تشريح والحلول في درجة حرارة الغرفة. تحل محل وسائل الاعلام الفسيولوجية في fluidics مع الحل المناسب تسجيل باستخدام ماصة إيبندورف. في حالة من العصبية المنقعية الحل يحتوي على (مم): 50 بوكل، 5 MgCl 2، 5 ethylenebis (oxyethylenenitrilo) tetraacetic حامض (EGTA) و 4 5 – (2-هيدروكسي إيثيل)-1-piperazineethanesulfonic حامض (HEPES؛ درجة الحموضة 7.4 ؛ 130 mOsm) 14 يعلقون على القواقع في طبق Sylgard مليئة المالحة المنقعية وإزالة دماغ كامل كما هو موضح سابقا 13 علاج isolatأدمغة إد في وسائل الإعلام المعرفة (DM) مع انزيم التربسين (محلول 0.2٪، سيغما، دليل # T-9201) لمدة 18 دقائق تليها معاملة في بلدية دبي ومثبط التربسين (سيغما، فول الصويا، وكتالوج # T-9003) لمدة 15 دقيقة. دبوس العقول في طبق Sylgard صغيرة مليئة الأسمولية ارتفاع تعريف وسائل الاعلام (HODM – مارك ألماني مع السكر المضافة؛ 750 ميكروليتر من محلول الجلوكوز 1M إلى DM مل 20). باستخدام الملقط الجميلة ومقص تشريح، وإزالة غمد الخارجي والداخلي من العقد من الفائدة، وتعريض الخلايا العصبية. باستخدام ماصة النار زجاج المصقول مليئة HODM وتعلق على microsyringe، وتطبيق الشفط لطيف بالقرب من خلية من مصلحة (يسار دواسة ظهري 1) حتى يفصل الخلايا العصبية من المخ وعلق العمل في ماصة. ومن ثم انتقل لماصة والزجاج، وانخفض إلى neurochips الفردية حيث طرد لطيف من microsyringe يسمح الخلايا العصبية دفعت بلطف من ماصة ووضعها على رأس الثقوب التصحيح الفردية على رقائق البطاطس. السماح للخلايا على الجلوس دون عائق لمدة لا تقل عن 2H في درجة حرارة الغرفة لتعزيز تمسكهم سطح رقاقة المحيطة فتحة. 5. التسجيلات الكهربية لربط الرقائق إلى مكبر للصوت (في حالتنا مكبر للصوت Multiclamp 700B، الأجهزة الجزيئية، فوستر سيتي، كاليفورنيا، الولايات المتحدة الأمريكية) استبدال الحل في fluidic الجوفية وفي قارورة رقاقة مع حلول تسجيل المناسبة. مخزنة على الرقم الهيدروجيني 7.9 مع HEPES 14: في حالة الخلايا العصبية المنقعية، وتملأ الغرف العلوية مع ثقافة المالحة المنقعية (51.3 كلوريد الصوديوم، و 1.7 بوكل، 4 CaCl2، وMgCl2 1.5 مم). للاستقرار، والغراء رقاقة على شريحة زجاجية ووضعه تحت المجهر. لربط رقاقة إلى مكبر للصوت (في حالتنا مكبر للصوت Multiclamp 700B، الأجهزة الجزيئية، فوستر سيتي، كاليفورنيا، الولايات المتحدة الأمريكية)، وقطع واحدة من نهاية الأنابيب، وتضاف سيلفييتم توصيل الأسلاك التي ص إلى مرحلة الرأس. وضع الإلكترود المرجعي في قارورة أعلى شريحة. رقاقة جاهز الآن للتسجيل. تطبق خطوة بالسيارات 5 مع مكبر للصوت لقياس مقاومة مجموع (ص ر)، وتحديد تكوين الخلايا العصبية: الخلية المرفقة (R T> 1 GΩ)؛ خلية كاملة (RT = 50-100 العابرين MΩ زائد بالسعة، مما يدل من تمزق غشاء خلال فتحة)، أو أي ختم (R ر <5 MΩ). وأظهر 80٪ من الخلايا في مجموعة من التجارب الماضية لدينا 10، 58٪ في المئة من الخلايا لديها مقاومة عالية، والأختام، من هؤلاء، والاستجابات منفعل. 6. ممثل النتائج تطبق depolarizing البقول الحالية (20 السلطة الفلسطينية زيادة) إلى الخلايا العصبية (في هذه الحالة LPeD1). الاستمرار على الخلايا العصبية في وثيقة VM إلى إمكاناتها يستريح (~ – 60 MV). مراقبة الردود على هذه النبضات depolarizing. يجب أن إمكانات العمل تجاوزتيمكن ملاحظة إذا كانت الخلايا العصبية هي قابلة للحياة. ويبين الشكل 4 نتيجة ممثل الذي تمت مناقشته في التفاصيل في 15 و 14. ردود الجهد الشكل 4. (أعلى) من الخلية العصبية LPeD1 إلى سلسلة متدرجة من البقول الحالية داخل الخلايا (أدناه). تم تطبيق البقول الحالية في VM = – 60mV. استكشاف الأخطاء وإصلاحها قبل الطلاء، ورقائق الصورة لتحديد ما إذا كان الغشاء وفتحة خالية من الحطام ومناسبة لطلاء. نحن نستخدم مجهرا تستقيم و20X هدف طويل المسافة العمل. في مجموعة من التجارب الماضية لدينا 1، وتستعد بنجاح بنسبة 67 في المئة في المئة من رقائق على هذا النحو. إذا الحطام و / أو فقاعات الهواء موجودة تجاهل شريحة وحاول واحد آخر. قد تكون حاولت مختلف المعالجات السطحية (البلازما) أو الطلاء (PDL، PEI الخ)، ولكن قد يكون نجاح تعتمد بشكل كبير على نوع من الخلاياالمستخدمة. تكوين حل ("ماصة") fluidic في حاسما لتشكيل GIGA-ختم والخلية الكاملة. ضبط الحل، وإيلاء الاهتمام لدرجة الحموضة، الأسمولية، وماكياج الأيونية. للثقافة على المدى الطويل، تبدأ مع وسائل الإعلام في قناة ميكروفلويديك، ثم التحول إلى ماصة حل قبل التسجيل عن طريق لطيف خطورة تغذيها نضح (~ 0.5 مل / دقيقة).

Discussion

NRCC لاستجواب رقاقة التصحيح، المشبك برنامجه هو أداة قوية لارتفاع المقايسات محتوى معلومات الأدوية والتحقيق في نماذج في المختبر من المرض. مزاياها مقارنة الماصات الزجاجية هي مقاومة وصول المنخفض، والتي هي ميزة للتحقيق في الخلايا الكبيرة، وعلى الرغم من سعة أكبر إلى حد ما سيؤدي في ديناميات مماثلة لأصغر الخلايا. وقد تم الخلية من تلقاء أنفسهم إلى أختام الفتحة التي تم الحصول عليها بشكل روتيني، وقد لوحظ كل دخول الخلية لتكون 14 عفوية. وهناك فرق واضح بين شرائح وطريقة ماصة الزجاج هو حقيقة أن لجنة التحقيق هو جزء من خلية طبق والثقافة، وإذا لم يقدم يدويا في اتصال مع غشاء الخلية. زراعة الخلايا، وربما جزء من شبكات وظيفية، والنتائج في المزيد من النماذج ذات الصلة من الناحية البيولوجية كنماذج المرض، وآلية مختلفة لتأمين خلية عالية للتحقيق في الأختام 16. لكن، على النقيض من ذلك مع تعليق خلية، طموح المدفعتي أن تستخدم لوضع خلية في التحقيق. الخلايا العصبية الحلزون، والخلايا الكبيرة الأخرى، قابلة للتحديد المواقع دليل على رأس لجنة التحقيق. لأصغر الخلايا التي تتطلب فترات زمنية أطول والثقافة، ونحن قد ينفي الحاجة إلى أي تلاعب والحفاظ على وجود احتمال كبير للحصول على ختم من قبل البروتينية التصاق الزخرفة على الجزء العلوي من تحقيقات لوضع الخلايا على الجزء العلوي من تحقيقات، وأظهر وضع الخلايا على مسبار 17،18.

NRCC أيضا بوضع بوليميد ميكروفلويديك التصحيح، المشبك رقاقة 19 مع السعة المماثلة لتلك التي ماصة الزجاج. الهدف النهائي من هذا المشروع هو عبارة عن تحقيقات متعددة التصحيح، المشبك رقاقة الذي يسمح للرصد في وقت واحد لنشاط الخلايا العصبية الكهربية من عدة تعمل في سلوك الشبكة على قرار من القنوات الأيونية فرد 14. هذا الأسلوب هو أسلوب ارتفاع القرار مكملا للمصفوفات متعددة القطب-20.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

الكتاب يرغبون في الاعتراف اليكسي بوغدانوف لتصنيع رقائق التصحيح، المشبك في CPFC، وهوى تران، تشاو بينغ وشيو ماثيو للحصول على المساعدة مع الجمعية. وأيد Naweed سيد من قبل المعهد الكندي للمنح الصحة (CIHR) بحوث. كولين لوقا هو المستفيد من NSERC وألبرتا مؤسسة التراث عن منحة دراسية الطبية (AHFMR) البحوث.

References

  1. Walz, W. Patch-Clamp Analysis: Advanced Techniques. Neuromethods. , 38 (2007).
  2. Neher, E., Sakmann, B. Single-channel currents recorded from membrane of denervated frog muscle fibers. Nature. 260, 799-802 (1976).
  3. Behrends, J. C., Fertig, N. Ch. 14: Planar Patch-clamp. Neuromethods. , (2007).
  4. Fertig, N., Tilke, A., Blick, R. H. Stable integration of isolated cell membrane patches in a nanomachined aperture. Applied Physics Letters. 77, 1218-1220 (2000).
  5. Dunlop, J., Bowlby, M., Peri, R., Vasilyev, D., Arias, R. High-throughput electrophysiology: an emerging paradigm for ion-channel screening and hysiology. Nat. Rev. Drug. Discov. 7 (4), 358-368 (2008).
  6. Py, C., Denhoff, M., Martina, M. A novel silicon patch-clamp chip permits high-fidelity recording of ion channel activity from functionally defined neurons. Biotechnology and Bioengineering. 107 (4), 593-600 (2010).
  7. Martinez, D., Martina, M., Kremer, L. Development of patch-clamp chips for mammalian cell applications. Micro and Nanosystems. 2 (4), (2010).
  8. Py, C., Salim, D., Monette, R. Cell to aperture interaction in patch-clamp chips visualized by fluorescence microscopy and focused-ion beam sections. Biotechnology & Bioengineering. 108, 1395-1403 (2011).
  9. Martina, M., Luk, C., Py, C. Interrogation of Cultured Neurons using Patch-Clamp Chips. Journal of Neural Engineering. 8, 034002 (2011).
  10. Bell, H. J., Syed, N. I. Hypoxia-induced modulation of the respiratory CPG. Frontiers in bioscience : a journal and virtual library. 14, 3825-3835 (2009).
  11. Syed, N. I., Bulloch, A. G. M., Lukowiak, K. In vitro reconstruction of the respiratory central pattern generator of the mollusk Lymnaea. Science. 250, 282-285 (1990).
  12. Syed, N. I., Zaidi, H., Lovell, P., Windhorst, U., Johansson, H. In vitro reconstruction of neuronal circuits: A simple model system approach. Modern techniques in neuroscience research. , (1999).
  13. Martina, M., Luk, C., Py, C. Interrogation of Cultured Neurons using Patch-Clamp Chips. Journal of Neural Engineering. 8, 034002 (2011).
  14. Py, C., Denhoff, M., Martina, M., et al. Silicon patch-clamp chip suitable for high-fidelity recording of ion channel activity from cultured neurons. Biotechnology and Bioengineering. 107 (4), (2010).
  15. Ong, W. -. L., Yobas, L., Ong, W. -. Y. A missing factor in chip-based patch clamp assay: gigaseal. Journal of Physics: Conference Series. 34, 187 (2006).
  16. Charrier, A., Martinez, D., Monette, R. Cell placement and guidance on substrates for neurochip interfaces. Biotechnology and Bioengineering. 105, 368-373 (2010).
  17. Diaz-Quijada, D., Maynard, C. C. o. m. a. s., Monette, T., Py, R., A, C. K. r. a. n. t. i. s., Mealing, G. Surface Patterning with Chemisorbed Chemical Cues for Advancing Neurochip Applications. Industrial & Engineering Chemistry Research. 50 (17), 10029-10035 (2011).
  18. Martinez, D., Py, C., Denhoff, M., et al. High-fidelity patch-clamp recordings from neurons cultured on a polymer microchip. Biomedical Microdevices. 12, 977-97 (2010).
  19. Taketani, M., Baudry, M. . Advances in Network Electrophysiology: Using Multi-Electrode Arrays. , (2006).

Play Video

Cite This Article
Py, C., Martina, M., Monette, R., Comas, T., Denhoff, M. W., Luk, C., Syed, N. I., Mealing, G. Culturing and Electrophysiology of Cells on NRCC Patch-clamp Chips. J. Vis. Exp. (60), e3288, doi:10.3791/3288 (2012).

View Video