Erzeugung und Kennzeichnung von Murine Knochenmark gewonnenen dendritischen Zellen mit Qdot Nanokristalle für Tracking-Studien

1. Dissection der Maus Oberschenkel-und Schienbein und Kultur von Knochenmarkzellen Sacrifice 2 Mäuse durch CO 2-Erstickung und sorgfältig sezieren tibias und Oberschenkelknochen ohne Eingriff in die Knochen endet. Reinigen Sie die Knochen von allen angeschlossenen Gewebe durch Tissue-Papier. Achten Sie darauf, um die Knochen zu brechen. Sterilisieren der Knochen durch Eintauchen in 70% Ethanol für 10 min in einer 35 mm Petrischale. Von diesem Moment an, in einem Biosafety Haube arbeiten, um eine Kontamination der Zellkulturen zu vermeiden. Recover die Knochen aus dem Ethanol und lassen Sie sie an der Luft trocknen für 5 min in einer Petrischale im Biosicherheitswerkbank. Schneiden Sie die Oberschenkel zur Hälfte, und die Tibia von der dünnsten Spitze. Infuse der Innenseite des Knochens mit 1 ml RPMI-Medium (ohne Serum, sondern mit Antibiotika) mit einer sterilen Spritze auf eine sterile Petrischale. Die Zellsuspension wird gesammelt und gewaschen 2X in RPMI-Medium durch 10 min Zentrifugation in einem 15 ml Zentrifugenröhrchen bei 1.100 RPM in einer Kühlzentrifuge (4 ° C) mit einem Ausschwingrotor. Nach der letzten Waschung, die Zellen in 2 ml ACK-Lysepuffer und Inkubation für 5 min bei Raumtemperatur, um rote Blutkörperchen zu beseitigen. Fügen Sie 13 ml RPMI mit 10% FBS, resuspendieren und waschen in diesem Medium 2X mit den gleichen Einstellungen wie in 1.6 beschrieben. Zählen von Zellen, anpassen, um 2 x 10 5 Zellen / ml mit RPMI 10% FBS, und fügen Sie rm-GM-CSF (20 ng / ml Endkonzentration) 5. 10 ml dieser Suspension in eine sterile, mikrobiologische Qualität, 10 cm Petrischale und Kultur in einem CO 2-Inkubator (37 ° C, 5% CO 2). Drei Tage später kommen weitere 10 ml RPMI 10% FBS mit 20 ng / l rmGM-CSF zu jedem der vorbereiteten Platten. Drei Tage später 10 ml Zellsuspension aus jeder Petrischale erholt, zentrifugiert, wie in 1,6, resuspendiert in das gleiche Volumen RPMI 10% FBS mit rmGM-CSF und kehrte in die Petrischale. Die Zellen werden für 2 weitere Tage in der CO 2-Inkubator. 2. Sammlung und Kennzeichnung von DCs Nach 8 Tagen in Kultur lose anhaftenden Zellen werden durch Waschen der Petrischalen mit frischem Medium wieder. Dieses Protokoll macht etwa 2-4 x10 8 DCs in unseren Händen. Die Zellen können für DC-Phänotyp mittels Durchflusszytometrie analysiert werden. Gesammelten Zellen werden dann mit den Qtracker 655 Zellen Labeling Kit streng nach den Anweisungen des Herstellers gekennzeichnet. Wir haben hervorragende Ergebnisse Kennzeichnung murinen Knochenmark-abgeleitete DCs mit qdots bei 10 nM Konzentration. Um dies zu erreichen, Aliquots Qtracker Zelle Labeling Kit Komponenten A und B sind in gleichen Volumina gemischt, inkubiert für 5 min bei Raumtemperatur, und sofort verdünnt 1 / 100 in frischem Medium mit Vortexen für 30 s. Um Flecken 5 x 10 6 DCs, mix 5 ul der einzelnen Komponenten des Kits A und B in einem Eppendorf-Röhrchen und inkubieren für 5 min bei Raumtemp. Dann fügt man 1 ml RPMI 10% FBS inkubiert, und Vortex für 30 Sekunden. 0,5 ml Zellsuspension mit 5 x10 6 DCs, und bei 37 ° C für 60 min. Dann waschen Sie die Zellen 2X in RPMI 10% FBS (1.100 RPM). Die Zellen können in RPMI für weitere Kultur oder in PBS werden für die Injektion in Versuchsmäusen resuspendiert. 3. Evaluation von markierten DC Zellmarkierung können mittels Fluoreszenz-Mikroskopie ausgewertet werden. Um dies zu erreichen, ist ein Tropfen der Zellsuspension auf einen Objektträger gegeben, bedeckt mit einem Deckglas und ausgewertet mit einem Fluoreszenzmikroskop unter Berücksichtigung, dass diese qdots Emissions-und Anregungsspektren von 565nm und 405-525nm haben bzw. (Abb. 3 ) An diesem Punkt können die markierten Zellen verwendet werden, um Tiere zu injizieren, oder Reifung kann durch Inkubation dieser Zellen für 48 h induziert werden (37 ° C, 5 CO 2) in Gegenwart von LPS (100 ng / ml) und TNF-( 20 ng / ml). Fluoreszenzmarkierung nicht durch DC-Reifung (Abb. 4) betroffen. 4. Repräsentative Ergebnisse: Hiermit erklären wir beschrieben, wie man murine Knochenmark abgeleiteten DCs vorbereiten und wie beschriftet sie mit fluoreszierenden qdots. Abb.. 1 fasst die Verfahren, um die Zelle zu erhalten, während Abb.. 2 zeigt das Verfahren, um sie mit qdots Etikett. Wie in Abb.. 3, fast alle Zellen werden durch diesen Vorgang bezeichnet, und das ist nicht von DC-Reifung mit entzündlichen Faktoren (Abb. 4). Abb. betroffen. 5 zeigt, dass Qdot-gefärbten DCs (Abb. 5a), vergleichbar mit nicht-gefärbten Zellen verhalten, wenn mit einer entzündlichen Cocktail behandelt. Beide Zellpräparationen ähnlich hochregulieren Ausdruck kostimulatorischen Molekülen (Abb. 5b), und produzieren ähnliche Mengen an IL-6 (Abb. 5c) und Stickstoffmonoxid (Abb. 5d) bei der Reifung Reize. Dies stimmt mit VorjahrOrganisationseinheiten veröffentlichten Daten zeigt, dass Qdot Färbung hat keinen Einfluss auf die Fähigkeit von DC bis zu reifen Zellen hervorrufen können Immunreaktionen [6] ein. Diese Zellen können dann für die Injektion Versuchstiere verwendet werden. Wie in Abb.. 6, 2 Tage nach intravenöser Injektion von markierten DCs in Mäusen, konnten wir Qdot-gefärbten Zellen in der Milz zu erkennen. Dies ist auch in Übereinstimmung mit früheren veröffentlichten Daten über die Verwendung der Qdot Nanokristalle zur Migration von DC in vivo zu bewerten [6] durch nicht-invasive Bildgebung und Durchflusszytometrie. Abbildung 1. Flussdiagramm DC-Generation aus dem Knochenmark. Hiermit möchten wir zeigen den Prozess zu Knochenmark-abgeleitete DC zu erhalten. Beide Schienbeine und Oberschenkel sind seziert und sauber aus den umliegenden Gewebes. Knochen Tipps erhalten und das Innere der Knochen sind mit mittlerer gespült. Nach Beseitigung roten Blutkörperchen, sind Knochenmarkszellen für 8 Tage in Gegenwart von GM-CSF, um sie in DCs differenzieren kultiviert. Abbildung 2. Flussdiagramm der Kennzeichnung Verfahren. Equal Aliquots Qtracker Zelle Labeling Kit Komponenten A und B sind in ein Eppendorf-Röhrchen gemischt. Dendritische Zellen sind aus 8-Tage-Knochenmark-Kulturen mit GM-CSF gesammelt und mit dem Etikett Farbstoff für 60 min bei 37C. Dann Zellen werden in Medium gewaschen, um überschüssige Markierung von Partikeln zu vermeiden. Abbildung 3. Fluorescent Mikrofotografie von DCs sofort nach der Markierung. Ein Tropfen der markierten Zellen wurde auf einen Objektträger aufgebracht und bedeckt von einem Deckglas. Dann wurden die Proben in einem Fluoreszenz-Mikroskop ausgewertet und die Bilder wurden durch eine Micropublisher 5,0 Digitale CCD-Farbkamera (Qimaging, Surrey, BC Canada) erworben. Abbildung 4. Fluorescent Mikrofotografie von DCs nach 48 h Reifung in vitro. Labeled DCs wurden für 48 h mit LPS (100 ng / ml) und TNF-α (20 ng / ml) auf Glasplättchen auf einer CO 2-Inkubator (37 ° C, 5% CO 2) kultiviert. Dann wurden die Proben mit PBS (5 min, 2X) gewaschen, mit Aceton (15 min, 4 ° C) und Gegenfärbung mit DAPI. Die Zellen wurden in einem Fluoreszenz-Mikroskop wie oben ausgewertet. Abbildung 5. Biologische Aktivität von Qdot gefärbten reifen DCs. Labeled DCs in vitro wie oben gereift wurden mittels Durchflusszytometrie (A) analysiert und (B). (A) Qdot-gefärbten Zellen geben ein starkes Signal in der FL3 (PerCP) Kanal. Shaded Histogramm: ungefärbten Kontrolle. Und Isotypkontrollen; (B) Qdot-gefärbten und ungefärbten DCs wurden zusätzlich mit spezifischen Antikörpern gegen Reifung Marker CD86 und CD40 gefärbt. Die Zellen wurden dann in einem FACSort Durchflusszytometer (Becton Dickinson, San Jose, CA) analysiert. Zusätzlich wurden IL-6 (C) und Stickstoffmonoxid (NO) in Überständen von reifen Qdot-gefärbten DCs und Kontrollen bestimmt. Spiegel von IL-6 und Stickoxid wurden mittels ELISA-Analyse und Griess-Assay als wir bisher 7 beschrieben, 8 bestimmt. Alle Daten zeigten in dieser Abbildung ist repräsentativ für zwei oder drei unabhängigen Experimenten zeigen ähnliche Ergebnisse. Die Daten wurden mittels ANOVA mit dem GraphPad Software analysiert. Abbildung 6. Erkennung von markierten DCs in seziert Gewebe. Labeled reife DCs (1×10 6 Zellen) wurden intravenös in C57BL / 6 Mäusen injiziert. (A) Zwei Tage später Mäuse getötet und Milz gesammelt, schockgefroren, eingebettet in OCT und 8 pM Abschnitte hergestellt unter Verwendung eines Kryostaten. Dann wurden die Proben mit Aceton (15 min, 4 ° C) fixiert und mit DAPI gegengefärbt. Die Zellen wurden in einem Fluoreszenz-Mikroskop wie oben ausgewertet Abb. 6a:. 40fache Vergrößerung, Abb. 6b: 100-facher Vergrößerung, Bild. 6C, 400-facher Vergrößerung.