Summary

Övervakning av den mekaniska utvecklingen av vävnad under neuralrörsstängning av kycklingembryo

Published: November 10, 2023
doi:

Summary

Detta protokoll utvecklades för att longitudinellt övervaka de mekaniska egenskaperna hos neuralplattevävnad under kycklingembryoneurulation. Den är baserad på integrationen av ett Brillouin-mikroskop och ett inkubationssystem på scenen, vilket möjliggör levande mekanisk avbildning av neuralplattevävnad i ex ovo-odlade kycklingembryon.

Abstract

Neuralrörsstängning (NTC) är en kritisk process under embryonal utveckling. Misslyckande i denna process kan leda till neuralrörsdefekter, vilket orsakar medfödda missbildningar eller till och med dödlighet. NTC involverar en rad mekanismer på genetisk, molekylär och mekanisk nivå. Även om mekanisk reglering har blivit ett allt mer attraktivt ämne under de senaste åren, är det fortfarande till stor del outforskat på grund av bristen på lämplig teknik för att utföra mekanisk testning av 3D-embryonal vävnad in situ. Som svar på detta har vi utvecklat ett protokoll för att kvantifiera de mekaniska egenskaperna hos kycklingembryonal vävnad på ett beröringsfritt och icke-invasivt sätt. Detta uppnås genom att integrera ett konfokalt Brillouin-mikroskop med ett inkubationssystem på scenen. För att undersöka vävnadsmekanik samlas ett förkultiverat embryo in och överförs till en inkubator på scenen för ex ovo-odling . Samtidigt samlas de mekaniska bilderna av neuralplattans vävnad in av Brillouin-mikroskopet vid olika tidpunkter under utvecklingen. Detta protokoll innehåller detaljerade beskrivningar av provberedning, implementering av Brillouin-mikroskopiexperiment och efterbehandling och analys av data. Genom att följa detta protokoll kan forskare studera den mekaniska utvecklingen av embryonal vävnad under utvecklingen longitudinellt.

Introduction

Neuralrörsdefekter (NTD) är allvarliga fosterskador i det centrala nervsystemet som orsakas av fel i neuralrörsstängningen (NTC) under embryonal utveckling1. Etiologin för NTD är komplex. Studier har visat att NTC involverar en sekvens av morfogenetiska processer, inklusive konvergent förlängning, böjning av neuralplattan (t.ex. apikal sammandragning), höjning av neuralvecket och slutligen vidhäftning av neuralvecket. Dessa processer regleras av flera molekylära och genetiska mekanismer 2,3, och eventuella fel i dessa processer kan resultera i NTD 4,5,6. Eftersom allt fler bevis tyder på att mekaniska signaler också spelar avgörande roller under NTC 3,7,8,9,10,11, och relationer har hittats mellan gener och mekaniska signaler 12,13,14, blir det absolut nödvändigt att undersöka vävnadens biomekanik under neurulation.

Flera tekniker har utvecklats för att mäta de mekaniska egenskaperna hos embryonala vävnader, inklusive laserablation (LA)15, vävnadsdissektion och relaxation (TDR)16,17, mikropipettaspiration (MA)18, atomkraftsmikroskopi (AFM)-baserad nanoindentation19, mikroindenters (MI) och mikroplattor (MP)20, mikroreologi (MR) med optisk/magnetisk pincett 21,22,23 och droppbaserade sensorer24. Befintliga metoder kan mäta mekaniska egenskaper vid rumsliga upplösningar som sträcker sig från subcellulära till vävnadsskalor. De flesta av dessa metoder är dock invasiva eftersom de kräver kontakt med provet (t.ex. MA, AFM, MI och MP), injektion av externt material (t.ex. MR och droppbaserade sensorer) eller vävnadsdissektion (t.ex. LA och TDR). Som ett resultat är det utmanande för befintliga metoder att övervaka den mekaniska utvecklingen av neuralplattevävnad in situ25. Nyligen har efterklangselastografi med optisk koherens visat sig lovande för beröringsfri mekanisk kartläggning med hög rumslig upplösning26.

Konfokal Brillouin-mikroskopi är en framväxande optisk modalitet som möjliggör beröringsfri kvantifiering av vävnadsbiomekanik med subcellulär upplösning 27,28,29,30. Brillouinmikroskopi bygger på principen om spontan Brillouin-ljusspridning, vilket är interaktionen mellan det infallande laserljuset och den akustiska vågen som induceras av termiska fluktuationer i materialet. Följaktligen upplever det spridda ljuset ett frekvensskifte, känt som Brillouin-skiftet ωR, enligt ekvation31:

Equation 1 (1)

Här är materialets Equation 2 brytningsindex, λ är våglängden för det infallande ljuset, M’ är den längsgående modulen, ρ är massdensiteten och θ är vinkeln mellan det infallande ljuset och det spridda ljuset. För samma typ av biologiska material är förhållandet mellan brytningsindex och densitet Equation 3 ungefär konstant 28,32,33,34,35,36. Således kan Brillouin-skiftet direkt användas för att uppskatta relativa mekaniska förändringar i fysiologiska processer. Genomförbarheten av Brillouin-mikroskopi har validerats i olika biologiska prover 29,37,38. Nyligen demonstrerades time-lapse mekanisk avbildning av ett levande kycklingembryo genom att kombinera ett Brillouin-mikroskop med ett inkubationssystempå scenen 39. Detta protokoll innehåller detaljerade beskrivningar av provberedning, experimentimplementering och efterbearbetning och analys av data. Vi hoppas att denna insats kommer att underlätta en utbredd användning av beröringsfri Brillouin-teknik för att studera biomekanisk reglering i embryoutveckling och fosterskador.

Protocol

Protokollet har godkänts av Institutional Animal Care and Use Committee vid Wayne State University. 1. Experimentell förberedelse Använd en 70 % etanollösning för att rengöra och sterilisera saxen och pincetten. Förbered också engångspipetter och en spruta. Förbered ett tvättmedium genom att tillsätta 3.595 g NaCl till 495 ml avjoniserat vatten. Tillsätt sedan 5 ml penicillin-streptomycin (5 E/ml) till mediet. Fyll en 100 mm petriskål med disk…

Representative Results

Figur 6 visar schemat för Brillouin-mikroskopet. Systemet använder en 660 nm laser som ljuskälla. En isolator placeras direkt efter laserhuvudet för att avvisa eventuellt bakåtreflekterat ljus, och ett filter med neutral densitet (ND) används för att justera lasereffekten. Ett par linser, L1 och L2, med brännvidder på f1 = 16 mm respektive f2 = 100 mm, används för att expandera laserstrålen. En halvvågsplatta (HWP) och en linjär polarisator (polarisator 1) används för att jus…

Discussion

Embryots tidiga utveckling kan lätt påverkas av yttre störningar. Därför krävs största försiktighet under extraktionen och överföringen av provet. Ett potentiellt problem är att embryot lossnar från filterpapperet, vilket kan leda till att vitellinmembranet krymper och resulterar i en lutande artefakt av neuralplattan vid Brillouin-avbildning. Dessutom kan denna krympning stoppa embryots utveckling. Uppmärksamhet bör ägnas åt flera kritiska steg för att förhindra lossning. För det första, i steg 2.4, …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöds av Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development, National Institutes of Health (K25HD097288, R21HD112663).

Materials

100 mm Petri dish  Fisherbrand FB0875713
2D motorized stage  Prior Scientific H117E2
35 mm Petri dish World Precision Instruments FD35-100
Brillouin Microscope with on-stage incubator N/A N/A This is a custom-built Brillouin Microscope system based on Ref. 30
Chicken eggs University of Connecticut N/A
CMOS camera Thorlabs CS2100M-USB
EMCCD camera Andor iXon
Ethanol Decon Laboratories, Inc. #2701
Filter paper Whatman 1004-070
Incubator for in ovo culture GQF Manufacturing Company Inc.  GQF 1502 
Ring Thorlabs SM1RR
Microscope body Olympus IX73
NaCl Sigma-Aldrich S9888
On-stage incubator Oko labs OKO-H301-PRIOR-H117
Parafilm Bemis PM-996
Penicillin-Streptomycin Gibco 15070-063
Pipettes Fisherbrand 13-711-6M
Scissors Artman instruments N/A 3pc Micro Scissors 5
Syringe BD 305482
Tissue paper Kimwipes N/A
Tube Corning 430052
Tweezers DR Instruments N/A Microdissection Forceps Set 

References

  1. Greene, N. D. E., Copp, A. J. Neural tube defects. Annual Review of Neuroscience. 37 (1), 221-242 (2014).
  2. Suzuki, M., Morita, H., Ueno, N. Molecular mechanisms of cell shape changes that contribute to vertebrate neural tube closure. Development, Growth & Differentiation. 54 (3), 266-276 (2012).
  3. Nikolopoulou, E., Galea, G. L., Rolo, A., Greene, N. D. E., Copp, A. J. Neural tube closure: Cellular, molecular and biomechanical mechanisms. Development. 144 (4), 552-566 (2017).
  4. Juriloff, D. M., Harris, M. J. Mouse models for neural tube closure defects. Human Molecular Genetics. 9 (6), 993-1000 (2000).
  5. Copp, A. J., Greene, N. D. E. Genetics and development of neural tube defects. The Journal of Pathology: A Journal of the Pathological Society of Great Britain and Ireland. 220 (2), 217-230 (2010).
  6. Wang, M., De Marco, P., Capra, V., Kibar, Z. Update on the role of the non-canonical wnt/planar cell polarity pathway in neural tube defects. Cells. 8 (10), 1198 (2019).
  7. Galea, G. L., et al. Biomechanical coupling facilitates spinal neural tube closure in mouse embryos. Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (26), E5177-E5186 (2017).
  8. Moon, L. D., Xiong, F. Mechanics of neural tube morphogenesis. Seminars in Cell & Developmental Biology. 130, 56-69 (2022).
  9. Christodoulou, N., Skourides, P. A. Distinct spatiotemporal contribution of morphogenetic events and mechanical tissue coupling during xenopus neural tube closure. Development. 149 (13), (2022).
  10. De Goederen, V., Vetter, R., Mcdole, K., Iber, D. Hinge point emergence in mammalian spinal neurulation. Proceedings of the National Academy of Sciences. 119 (20), 2117075119 (2022).
  11. Christodoulou, N., Skourides, P. A. Somitic mesoderm morphogenesis is necessary for neural tube closure during xenopus development. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 10, 1091629 (2023).
  12. Nikolopoulou, E., et al. Spinal neural tube closure depends on regulation of surface ectoderm identity and biomechanics by grhl2. Nature Communications. 10 (1), 2487 (2019).
  13. Nychyk, O., et al. Vangl2-environment interaction causes severe neural tube defects, without abnormal neuroepithelial convergent extension. Disease Models & Mechanisms. 15 (1), 049194 (2022).
  14. Li, B., Brusman, L., Dahlka, J., Niswander, L. A. Tmem132a ensures mouse caudal neural tube closure and regulates integrin-based mesodermal migration. Development. 149 (17), (2022).
  15. Zulueta-Coarasa, T., Fernandez-Gonzalez, R. Laser ablation to investigate cell and tissue mechanics in vivo. Integrative Mechanobiology: Micro-and Nano Techniques in Cell Mechanobiology. , 128-147 (2015).
  16. Wiebe, C., Brodland, G. W. Tensile properties of embryonic epithelia measured using a novel instrument. Journal of Biomechanics. 38 (10), 2087-2094 (2005).
  17. Luu, O., David, R., Ninomiya, H., Winklbauer, R. Large-scale mechanical properties of xenopus embryonic epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108 (10), 4000-4005 (2011).
  18. Maître, J. L., Niwayama, R., Turlier, H., Nédélec, F., Hiiragi, T. Pulsatile cell-autonomous contractility drives compaction in the mouse embryo. Nature Cell Biology. 17 (7), 849-855 (2015).
  19. Krieg, M., et al. Tensile forces govern germ-layer organization in zebrafish. Nature Cell Biology. 10 (4), 429-436 (2008).
  20. Zamir, E. A., Srinivasan, V., Perucchio, R., Taber, L. A. Mechanical asymmetry in the embryonic chick heart during looping. Annals of Biomedical Engineering. 31, 1327-1336 (2003).
  21. Bambardekar, K., Clément, R., Blanc, O., Chardès, C., Lenne, P. F. Direct laser manipulation reveals the mechanics of cell contacts in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (5), 1416-1421 (2015).
  22. Savin, T., et al. On the growth and form of the gut. Nature. 476 (7358), 57-62 (2011).
  23. Almonacid, M., et al. Active diffusion positions the nucleus in mouse oocytes. Nature Cell Biology. 17 (4), 470-479 (2015).
  24. Campàs, O., et al. Quantifying cell-generated mechanical forces within living embryonic tissues. Nature Methods. 11 (2), 183-189 (2014).
  25. Campàs, O. A toolbox to explore the mechanics of living embryonic tissues. Seminars in Cell & Developmental Biology. 55, 119-130 (2016).
  26. Christian, Z. D., et al. High-resolution 3D biomechanical mapping of embryos with reverberant optical coherence elastography (Rev-OCE). Proceedings of SPIE. , 123670 (2023).
  27. Scarcelli, G., Yun, S. H. J. N. P. Confocal brillouin microscopy for three-dimensional mechanical imaging. Nature Photonics. 1 (1), 39-43 (2008).
  28. Scarcelli, G., et al. Noncontact three-dimensional mapping of intracellular hydromechanical properties by brillouin microscopy. Nature Methods. 12 (12), 1132-1134 (2015).
  29. Prevedel, R., Diz-Muñoz, A., Ruocco, G., Antonacci, G. Brillouin microscopy: An emerging tool for mechanobiology. Nature Methods. 16 (10), 969-977 (2019).
  30. Zhang, J., Scarcelli, G. Mapping mechanical properties of biological materials via an add-on brillouin module to confocal microscopes. Nature Protocols. 16 (2), 1251-1275 (2021).
  31. Boyd, R. W. . Nonlinear optics. , (2020).
  32. Scarcelli, G., Kim, P., Yun, S. H. In vivo measurement of age-related stiffening in the crystalline lens by brillouin optical microscopy. Biophysical Journal. 101 (6), 1539-1545 (2011).
  33. Scarcelli, G., Pineda, R., Yun, S. H. Brillouin optical microscopy for corneal biomechanics. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (1), 185-190 (2012).
  34. Antonacci, G., Braakman, S. Biomechanics of subcellular structures by non-invasive brillouin microscopy. Scientific Reports. 6 (1), 37217 (2016).
  35. Zhang, J., et al. Tissue biomechanics during cranial neural tube closure measured by brillouin microscopy and optical coherence tomography. Birth Defects Research. 111 (14), 991-998 (2019).
  36. Zhang, J., et al. Nuclear mechanics within intact cells is regulated by cytoskeletal network and internal nanostructures. Small. 16 (18), 1907688 (2020).
  37. Elsayad, K., Polakova, S., Gregan, J. Probing mechanical properties in biology using brillouin microscopy. Trends in Cell Biology. 29 (8), 608-611 (2019).
  38. Poon, C., Chou, J., Cortie, M., Kabakova, I. Brillouin imaging for studies of micromechanics in biology and biomedicine: From current state-of-the-art to future clinical translation. Journal of Physics: Photonics. 3 (1), 012002 (2020).
  39. Handler, C., Scarcelli, G., Zhang, J. Time-lapse mechanical imaging of neural tube closure in live embryo using brillouin microscopy. Scientific Reports. 13 (1), 263 (2023).
  40. Chapman, S. C., Collignon, J., Schoenwolf, G. C., Lumsden, A. Improved method for chick whole-embryo culture using a filter paper carrier. Developmental dynamics: an official publication of the American Association of Anatomists. 220 (3), 284-289 (2001).
  41. Schmitz, M., Nelemans, B. K. A., Smit, T. H. A submerged filter paper sandwich for long-term ex ovo time-lapse imaging of early chick embryos. Journal of Visualized Experiments. (118), e54636 (2016).
  42. Nys, Y., Guyot, N., Nys, Y., Bain, M., VanImmerseel, F. . Improving the safety and quality of eggs and egg products, vol 1: Egg chemistry, production and consumption. , 83-132 (2011).
  43. Berghaus, K. V., Yun, S. H., Scarcelli, G. High speed sub-ghz spectrometer for brillouin scattering analysis. Journal of Visualized Experiments. (106), e53468 (2015).
  44. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88 (1), 49-92 (1951).
  45. Schlüßler, R., et al. Mechanical mapping of spinal cord growth and repair in living zebrafish larvae by brillouin imaging. Biophysical Journal. 115 (5), 911-923 (2018).
  46. Williams, R. M., Sauka-Spengler, T. Ex ovo electroporation of early chicken embryos. STAR Protocols. 2 (2), 100424 (2021).
  47. Chapman, S. C., Collignon, J., Schoenwolf, G. C., Lumsden, A. Improved method for chick whole-embryo culture using a filter paper carrier. Developmental Dynamics. 220 (3), 284-289 (2001).
  48. Edrei, E., Scarcelli, G. Adaptive optics in spectroscopy and densely labeled-fluorescence applications. Optics Express. 26 (26), 33865-33877 (2018).

Play Video

Cite This Article
Shi, C., Handler, C., Florn, H., Zhang, J. Monitoring the Mechanical Evolution of Tissue During Neural Tube Closure of Chick Embryo. J. Vis. Exp. (201), e66117, doi:10.3791/66117 (2023).

View Video