Summary

Overvåking av mekanisk utvikling av vev under nevralrørslukning av kyllingembryo

Published: November 10, 2023
doi:

Summary

Denne protokollen ble utviklet for å overvåke de mekaniske egenskapene til nevrale platevev under kyllingembryoneurulasjon. Den er basert på integrering av et Brillouin-mikroskop og et inkubasjonssystem på scenen, som muliggjør levende mekanisk avbildning av nevrale platevev i ex ovo-dyrkede kyllingembryoer.

Abstract

Nevralrørslukning (NTC) er en kritisk prosess under embryonal utvikling. Feil i denne prosessen kan føre til nevralrørsdefekter, forårsaker medfødte misdannelser eller til og med dødelighet. NTC innebærer en rekke mekanismer på genetiske, molekylære og mekaniske nivåer. Mens mekanisk regulering har blitt et stadig mer attraktivt tema de siste årene, forblir det stort sett uutforsket på grunn av mangelen på egnet teknologi for å utføre mekanisk testing av 3D embryonalt vev in situ. Som svar har vi utviklet en protokoll for å kvantifisere de mekaniske egenskapene til kyllingembryonalt vev på en ikke-kontakt og ikke-invasiv måte. Dette oppnås ved å integrere et konfokal Brillouin-mikroskop med et inkubasjonssystem på scenen. For å undersøke vevsmekanikk samles et forhåndsdyrket embryo og overføres til en inkubator på scenen for ex ovo-kultur . Samtidig oppnås de mekaniske bildene av nevrale platevevet av Brillouin-mikroskopet på forskjellige tidspunkter under utviklingen. Denne protokollen inneholder detaljerte beskrivelser av prøvepreparering, implementering av Brillouin-mikroskopieksperimenter og etterbehandling og analyse av data. Ved å følge denne protokollen kan forskere studere den mekaniske utviklingen av embryonalt vev under utvikling i lengderetningen.

Introduction

Nevralrørsdefekter (NTD) er alvorlige fødselsskader i sentralnervesystemet forårsaket av svikt i nevralrørslukning (NTC) under embryonal utvikling1. Etiologien til NTD er kompleks. Studier har vist at NTC involverer en sekvens av morfogenetiske prosesser, inkludert konvergent forlengelse, bøyning av nevrale platen (f.eks. Apikal innsnevring), heving av nevrale fold og til slutt vedheft av nevrale fold. Disse prosessene reguleres av flere molekylære og genetiske mekanismer 2,3, og enhver funksjonsfeil i disse prosessene kan resultere i NTD 4,5,6. Som montering bevis tyder på at mekaniske signaler også spiller avgjørende roller under NTC 3,7,8,9,10,11, og forhold har blitt funnet mellom gener og mekaniske signaler 12,13,14, blir det viktig å undersøke vevsbiomekanikken under neurulasjon.

Flere teknikker er utviklet for å måle de mekaniske egenskapene til embryonale vev, inkludert laserablasjon (LA)15, vevsdisseksjon og relaksasjon (TDR)16,17, mikropipetteaspirasjon (MA)18, atomkraftmikroskopi (AFM)-basert nanoindentasjon19, mikroindenter (MI) og mikroplater (MP)20, mikroreologi (MR) med optisk/magnetisk pinsett21,22,23, og dråpebaserte sensorer24. Eksisterende metoder kan måle mekaniske egenskaper ved romlige oppløsninger som spenner fra subcellulære til vevsskalaer. Imidlertid er de fleste av disse metodene invasive fordi de krever kontakt med prøven (f.eks. MA, AFM, MI og MP), injeksjon av eksternt materiale (f.eks. MR og dråpebaserte sensorer) eller vevsdisseksjon (f.eks. LA og TDR). Som et resultat er det utfordrende for eksisterende metoder å overvåke den mekaniske utviklingen av nevrale platevev in situ25. Nylig har reverberant optisk koherens elastografi vist løfte om ikke-kontakt mekanisk kartlegging med høy romlig oppløsning26.

Konfokal Brillouin-mikroskopi er en fremvoksende optisk modalitet som muliggjør ikke-kontaktkvantifisering av vevsbiomekanikk med subcellulær oppløsning 27,28,29,30. Brillouin-mikroskopi er basert på prinsippet om spontan Brillouin-lysspredning, som er vekselvirkningen mellom det innfallende laserlyset og den akustiske bølgen indusert av termiske fluktuasjoner i materialet. Følgelig opplever det spredte lyset en frekvensforskyvning, kjent som Brillouin-skiftet ωR, etter ligningen31:

Equation 1 (1)

Equation 2 Her er brytningsindeksen til materialet, λ er bølgelengden til det innfallende lyset, M’ er lengdemodulen, ρ er massetettheten, og θ er vinkelen mellom det innfallende lyset og det spredte lyset. For samme type biologiske materialer er forholdet mellom brytningsindeks og tetthet Equation 3 omtrent konstant 28,32,33,34,35,36. Dermed kan Brillouin-skiftet brukes direkte til å estimere relative mekaniske endringer i fysiologiske prosesser. Gjennomførbarheten av Brillouin-mikroskopi er validert i forskjellige biologiske prøver 29,37,38. Nylig ble time-lapse mekanisk avbildning av et levende kyllingembryo demonstrert ved å kombinere et Brillouin-mikroskop med et inkubasjonssystem på scenen39. Denne protokollen gir detaljerte beskrivelser av prøvepreparering, eksperimentimplementering og etterbehandling og analyse av data. Vi håper denne innsatsen vil legge til rette for utbredt bruk av ikke-kontakt Brillouin-teknologi for å studere biomekanisk regulering i embryoutvikling og fødselsskader.

Protocol

Protokollen er godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee ved Wayne State University. 1. Eksperimentell forberedelse Bruk en 70% etanolløsning for å rengjøre og sterilisere saks og pinsett. Forbered også engangspipetter og en sprøyte. Forbered et vaskemedium ved å tilsette 3,595 g NaCl til 495 ml avionisert vann. Deretter tilsettes 5 ml penicillin-streptomycin (5 U / ml) til mediet. Fyll en 100 mm petriskål med vaskemediet og varm den ti…

Representative Results

Figur 6 viser skjematisk fremstilling av Brillouin-mikroskopet. Systemet benytter en 660 nm laser som lyskilde. En isolator plasseres rett etter laserhodet for å avvise tilbakereflektert lys, og et filter med nøytral tetthet (ND) brukes til å justere lasereffekten. Et par linser, L1 og L2, med brennvidder på henholdsvis f1 = 16 mm og f2 = 100 mm, brukes til å utvide laserstrålen. En halvbølgeplate (HWP) og en lineær polarisator (Polarisator 1) brukes til å justere kraften til strål…

Discussion

Den tidlige utviklingen av embryoet kan lett påvirkes av eksterne forstyrrelser. Derfor er det nødvendig med stor forsiktighet under prøveutvinning og overføring. Et potensielt problem er løsningen av embryoet fra filterpapiret, noe som kan føre til krymping av vitellinemembranen og resultere i en skråstilt artefakt av nevrale platen i Brillouin-avbildning. Videre kan denne krympingen stoppe utviklingen av embryoet. Det bør tas hensyn til flere kritiske trinn for å forhindre løsrivelse. For det første, i trinn…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet støttes av Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development, National Institutes of Health (K25HD097288, R21HD112663).

Materials

100 mm Petri dish  Fisherbrand FB0875713
2D motorized stage  Prior Scientific H117E2
35 mm Petri dish World Precision Instruments FD35-100
Brillouin Microscope with on-stage incubator N/A N/A This is a custom-built Brillouin Microscope system based on Ref. 30
Chicken eggs University of Connecticut N/A
CMOS camera Thorlabs CS2100M-USB
EMCCD camera Andor iXon
Ethanol Decon Laboratories, Inc. #2701
Filter paper Whatman 1004-070
Incubator for in ovo culture GQF Manufacturing Company Inc.  GQF 1502 
Ring Thorlabs SM1RR
Microscope body Olympus IX73
NaCl Sigma-Aldrich S9888
On-stage incubator Oko labs OKO-H301-PRIOR-H117
Parafilm Bemis PM-996
Penicillin-Streptomycin Gibco 15070-063
Pipettes Fisherbrand 13-711-6M
Scissors Artman instruments N/A 3pc Micro Scissors 5
Syringe BD 305482
Tissue paper Kimwipes N/A
Tube Corning 430052
Tweezers DR Instruments N/A Microdissection Forceps Set 

References

  1. Greene, N. D. E., Copp, A. J. Neural tube defects. Annual Review of Neuroscience. 37 (1), 221-242 (2014).
  2. Suzuki, M., Morita, H., Ueno, N. Molecular mechanisms of cell shape changes that contribute to vertebrate neural tube closure. Development, Growth & Differentiation. 54 (3), 266-276 (2012).
  3. Nikolopoulou, E., Galea, G. L., Rolo, A., Greene, N. D. E., Copp, A. J. Neural tube closure: Cellular, molecular and biomechanical mechanisms. Development. 144 (4), 552-566 (2017).
  4. Juriloff, D. M., Harris, M. J. Mouse models for neural tube closure defects. Human Molecular Genetics. 9 (6), 993-1000 (2000).
  5. Copp, A. J., Greene, N. D. E. Genetics and development of neural tube defects. The Journal of Pathology: A Journal of the Pathological Society of Great Britain and Ireland. 220 (2), 217-230 (2010).
  6. Wang, M., De Marco, P., Capra, V., Kibar, Z. Update on the role of the non-canonical wnt/planar cell polarity pathway in neural tube defects. Cells. 8 (10), 1198 (2019).
  7. Galea, G. L., et al. Biomechanical coupling facilitates spinal neural tube closure in mouse embryos. Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (26), E5177-E5186 (2017).
  8. Moon, L. D., Xiong, F. Mechanics of neural tube morphogenesis. Seminars in Cell & Developmental Biology. 130, 56-69 (2022).
  9. Christodoulou, N., Skourides, P. A. Distinct spatiotemporal contribution of morphogenetic events and mechanical tissue coupling during xenopus neural tube closure. Development. 149 (13), (2022).
  10. De Goederen, V., Vetter, R., Mcdole, K., Iber, D. Hinge point emergence in mammalian spinal neurulation. Proceedings of the National Academy of Sciences. 119 (20), 2117075119 (2022).
  11. Christodoulou, N., Skourides, P. A. Somitic mesoderm morphogenesis is necessary for neural tube closure during xenopus development. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 10, 1091629 (2023).
  12. Nikolopoulou, E., et al. Spinal neural tube closure depends on regulation of surface ectoderm identity and biomechanics by grhl2. Nature Communications. 10 (1), 2487 (2019).
  13. Nychyk, O., et al. Vangl2-environment interaction causes severe neural tube defects, without abnormal neuroepithelial convergent extension. Disease Models & Mechanisms. 15 (1), 049194 (2022).
  14. Li, B., Brusman, L., Dahlka, J., Niswander, L. A. Tmem132a ensures mouse caudal neural tube closure and regulates integrin-based mesodermal migration. Development. 149 (17), (2022).
  15. Zulueta-Coarasa, T., Fernandez-Gonzalez, R. Laser ablation to investigate cell and tissue mechanics in vivo. Integrative Mechanobiology: Micro-and Nano Techniques in Cell Mechanobiology. , 128-147 (2015).
  16. Wiebe, C., Brodland, G. W. Tensile properties of embryonic epithelia measured using a novel instrument. Journal of Biomechanics. 38 (10), 2087-2094 (2005).
  17. Luu, O., David, R., Ninomiya, H., Winklbauer, R. Large-scale mechanical properties of xenopus embryonic epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108 (10), 4000-4005 (2011).
  18. Maître, J. L., Niwayama, R., Turlier, H., Nédélec, F., Hiiragi, T. Pulsatile cell-autonomous contractility drives compaction in the mouse embryo. Nature Cell Biology. 17 (7), 849-855 (2015).
  19. Krieg, M., et al. Tensile forces govern germ-layer organization in zebrafish. Nature Cell Biology. 10 (4), 429-436 (2008).
  20. Zamir, E. A., Srinivasan, V., Perucchio, R., Taber, L. A. Mechanical asymmetry in the embryonic chick heart during looping. Annals of Biomedical Engineering. 31, 1327-1336 (2003).
  21. Bambardekar, K., Clément, R., Blanc, O., Chardès, C., Lenne, P. F. Direct laser manipulation reveals the mechanics of cell contacts in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (5), 1416-1421 (2015).
  22. Savin, T., et al. On the growth and form of the gut. Nature. 476 (7358), 57-62 (2011).
  23. Almonacid, M., et al. Active diffusion positions the nucleus in mouse oocytes. Nature Cell Biology. 17 (4), 470-479 (2015).
  24. Campàs, O., et al. Quantifying cell-generated mechanical forces within living embryonic tissues. Nature Methods. 11 (2), 183-189 (2014).
  25. Campàs, O. A toolbox to explore the mechanics of living embryonic tissues. Seminars in Cell & Developmental Biology. 55, 119-130 (2016).
  26. Christian, Z. D., et al. High-resolution 3D biomechanical mapping of embryos with reverberant optical coherence elastography (Rev-OCE). Proceedings of SPIE. , 123670 (2023).
  27. Scarcelli, G., Yun, S. H. J. N. P. Confocal brillouin microscopy for three-dimensional mechanical imaging. Nature Photonics. 1 (1), 39-43 (2008).
  28. Scarcelli, G., et al. Noncontact three-dimensional mapping of intracellular hydromechanical properties by brillouin microscopy. Nature Methods. 12 (12), 1132-1134 (2015).
  29. Prevedel, R., Diz-Muñoz, A., Ruocco, G., Antonacci, G. Brillouin microscopy: An emerging tool for mechanobiology. Nature Methods. 16 (10), 969-977 (2019).
  30. Zhang, J., Scarcelli, G. Mapping mechanical properties of biological materials via an add-on brillouin module to confocal microscopes. Nature Protocols. 16 (2), 1251-1275 (2021).
  31. Boyd, R. W. . Nonlinear optics. , (2020).
  32. Scarcelli, G., Kim, P., Yun, S. H. In vivo measurement of age-related stiffening in the crystalline lens by brillouin optical microscopy. Biophysical Journal. 101 (6), 1539-1545 (2011).
  33. Scarcelli, G., Pineda, R., Yun, S. H. Brillouin optical microscopy for corneal biomechanics. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (1), 185-190 (2012).
  34. Antonacci, G., Braakman, S. Biomechanics of subcellular structures by non-invasive brillouin microscopy. Scientific Reports. 6 (1), 37217 (2016).
  35. Zhang, J., et al. Tissue biomechanics during cranial neural tube closure measured by brillouin microscopy and optical coherence tomography. Birth Defects Research. 111 (14), 991-998 (2019).
  36. Zhang, J., et al. Nuclear mechanics within intact cells is regulated by cytoskeletal network and internal nanostructures. Small. 16 (18), 1907688 (2020).
  37. Elsayad, K., Polakova, S., Gregan, J. Probing mechanical properties in biology using brillouin microscopy. Trends in Cell Biology. 29 (8), 608-611 (2019).
  38. Poon, C., Chou, J., Cortie, M., Kabakova, I. Brillouin imaging for studies of micromechanics in biology and biomedicine: From current state-of-the-art to future clinical translation. Journal of Physics: Photonics. 3 (1), 012002 (2020).
  39. Handler, C., Scarcelli, G., Zhang, J. Time-lapse mechanical imaging of neural tube closure in live embryo using brillouin microscopy. Scientific Reports. 13 (1), 263 (2023).
  40. Chapman, S. C., Collignon, J., Schoenwolf, G. C., Lumsden, A. Improved method for chick whole-embryo culture using a filter paper carrier. Developmental dynamics: an official publication of the American Association of Anatomists. 220 (3), 284-289 (2001).
  41. Schmitz, M., Nelemans, B. K. A., Smit, T. H. A submerged filter paper sandwich for long-term ex ovo time-lapse imaging of early chick embryos. Journal of Visualized Experiments. (118), e54636 (2016).
  42. Nys, Y., Guyot, N., Nys, Y., Bain, M., VanImmerseel, F. . Improving the safety and quality of eggs and egg products, vol 1: Egg chemistry, production and consumption. , 83-132 (2011).
  43. Berghaus, K. V., Yun, S. H., Scarcelli, G. High speed sub-ghz spectrometer for brillouin scattering analysis. Journal of Visualized Experiments. (106), e53468 (2015).
  44. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88 (1), 49-92 (1951).
  45. Schlüßler, R., et al. Mechanical mapping of spinal cord growth and repair in living zebrafish larvae by brillouin imaging. Biophysical Journal. 115 (5), 911-923 (2018).
  46. Williams, R. M., Sauka-Spengler, T. Ex ovo electroporation of early chicken embryos. STAR Protocols. 2 (2), 100424 (2021).
  47. Chapman, S. C., Collignon, J., Schoenwolf, G. C., Lumsden, A. Improved method for chick whole-embryo culture using a filter paper carrier. Developmental Dynamics. 220 (3), 284-289 (2001).
  48. Edrei, E., Scarcelli, G. Adaptive optics in spectroscopy and densely labeled-fluorescence applications. Optics Express. 26 (26), 33865-33877 (2018).

Play Video

Cite This Article
Shi, C., Handler, C., Florn, H., Zhang, J. Monitoring the Mechanical Evolution of Tissue During Neural Tube Closure of Chick Embryo. J. Vis. Exp. (201), e66117, doi:10.3791/66117 (2023).

View Video