Aqui, descrevemos um protocolo detalhado para isolar o extrato nuclear ativo do estágio 4 C. elegans larval e visualizar a atividade de transcrição em um sistema in vitro .
Caenorhabditis elegans tem sido um importante sistema modelo de pesquisa biológica desde que foi introduzido em 1963. No entanto, C. elegans não foi totalmente utilizado no estudo bioquímico de reações biológicas usando seus extratos nucleares, como transcrição in vitro e replicação de DNA. Um obstáculo significativo para o uso de C. elegans em estudos bioquímicos é interromper a grossa cutícula externa do nematoide sem sacrificar a atividade do extrato nuclear. Embora vários métodos sejam usados para quebrar a cutícula, como homogeneização de Dounce ou sonicação, eles muitas vezes levam à instabilidade proteica. Não há protocolos estabelecidos para isolar proteínas nucleares ativas de larvas ou adultos C. elegans para reações in vitro . Aqui, o protocolo descreve detalhadamente a homogeneização do estágio larval 4 C. elegans utilizando um homogeneizador Balch. O homogeneizador Balch usa pressão para forçar lentamente os animais através de uma estreita abertura quebrando a cutícula no processo. O design uniforme e a usinagem precisa do homogeneizador Balch permitem uma moagem consistente de animais entre experimentos. Fracionar o homogeneizador obtido a partir do homogeneizador Balch produz extrato nuclear funcionalmente ativo que pode ser usado em um método in vitro para avaliar a atividade de transcrição de C. elegans.
O pequeno nematode caenorhabditis elegans é um organismo modelo simples, mas poderoso, para abordar uma ampla gama de questões biológicas. Desde sua introdução em 1963, os nematoides têm sido inestimáveis para responder perguntas em neurobiologia, metabolismo, envelhecimento, desenvolvimento, imunidade e genética1. Algumas das muitas características do animal que o tornam um organismo modelo ideal incluem o curto tempo de geração, a eficácia da interferência do RNA, o corpo transparente e os mapas completos de sua linhagem celular e sistema nervoso.
Embora as contribuições do nematode para a ciência sejam vastas, elas têm sido subutilizados para elucidar o sistema de transcrição eucariótica, com a maioria de nosso entendimento sobre esses mecanismos provenientes de estudos que usam extrato nuclear de levedura, mosca-das-frutas e cultura celular de mamíferos2. O maior obstáculo que dissuade os pesquisadores de extrair extrato nuclear funcional é a dura cutícula externa do nematode. Este exoesqueleto compreende collagens transversais, cuticlins, glicoproteínas e lipídios, tornando C. elegans do estágio larval à idade adulta resistente à extração de proteínas através de forças químicas ou mecânicas3. Um sistema de transcrição in vitro usando extrato nuclear C. elegans já foi desenvolvido, mas não amplamente adotado devido ao escopo limitado do sistema, e o uso de homogeneizador Dounce para a preparação do extrato poderia levar à instabilidade proteica4,5.
Ao contrário do protocolo anterior para isolamento de extrato nuclear que utilizava um homogeneizador do Dounce para quebrar C. elegans, este protocolo usa um homogeneizador Balch. O homogeneizador Balch consiste em dois componentes principais: uma bola de carboneto de tungstênio e um bloco de aço inoxidável com um canal entediado de uma extremidade para outra. O homogeneizador Balch é carregado com a bola de carboneto de tungstênio e tampado em ambos os lados para selar a câmara de moagem. As seringas podem ser carregadas nas duas portas verticais que levam à câmara de moagem. À medida que o material é passado de uma seringa para a outra através da câmara de moagem, a pressão das seringas força o material através de uma estreita distância entre a bola e a parede da câmara. Esta pressão lenta e constante quebra o material até atingir um tamanho consistente que é capaz de passar pela estreita lacuna facilmente. Forçando C. elegans através da estreita lacuna através de uma pressão constante, mas suave, quebra os animais abertos, liberando seu conteúdo no buffer circundante. A troca de tamanhos de esfera aperta ainda mais a lacuna, quebrando as células recém-liberadas e libera os núcleos para o buffer. Vários casos de centrifugação separam os núcleos do resto dos detritos celulares, permitindo a coleta de um extrato nuclear limpo. O homogeneizador Balch é preferido em vez do homogeneizador do Dounce por várias razões: o sistema pode lidar com um grande número de animais, possibilitando extrair uma alta quantidade de proteínas ativas em uma única tentativa; a usinagem precisa das bolas e do bloco de aço permite uma moagem consistente entre múltiplas amostras; o bloco de aço pesado age como um dissipador de calor, afastando uniformemente o calor da câmara de moagem, impedindo a desnaturação.
Após o isolamento, a atividade transcricional do extrato nuclear deve ser verificada antes de ser usada em qualquer experimento bioquímico. Tradicionalmente, a atividade de transcrição era medida usando nucleotídeos radiolabelados para rastrear e visualizar o RNA recém-sintetizado. No entanto, a rotulagem radioativa pode ser pesada, pois requer precaução durante o uso e descarte6. Os avanços tecnológicos permitem que os pesquisadores de hoje usem métodos muito menos prejudiciais ou problemáticos para medir até mesmo pequenas quantidades de RNA usando técnicas como PCR quantitativo em tempo real (qRT-PCR)7. Aqui, o protocolo descreve um método para isolar o extrato nuclear ativo do estágio larval 4 (L4) C. elegans e visualizar a atividade de transcrição em um sistema in vitro.
C. elegans é um organismo modelo atraente para estudar o sistema de transcrição eucariótica devido à sua manutenção de baixo custo e à facilidade de manipulação genética. Aqui é descrito um protocolo para o isolamento consistente do extrato nuclear funcionalmente ativo de L4 C. elegans . Embora este protocolo tenha se concentrado em visualizar a atividade de transcrição, o cDNA produzido após a transcrição pode ser quantificado usando o RT-qPCR para obter uma medição mais precisa da a…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado por uma bolsa NIH MIRA (R35GM124678 a J. S.).
Consumables and reagents | |||
0.2 mL 8-Strip Tubes & Flat Strip Caps, Clear | Genesee Scientific | 24-706 | |
0.2 mL Individual PCR tubes | Genesee Scientific | 24-153G | |
1.7 mL sterile microtubes | Genesee Scientific | 24-282S | |
100% absolute molecular grade ethanol | Fisher Scientific | BP2818 | |
100% ethanol, Koptec | Decon Labs | V1001 | |
10 mL serological pipet | VWR international | 89130-898 | |
150 mm petri plates | Tritech Research | T3325 | |
15 mL conical centrifuge tubes | Genesee Scientific | 28-103 | |
20 mL plastic syringes | Fisher Scientific | 14955460 | |
2 mL Norm-Ject syringes | Henke-Sass Wolf GmbH | 4020 | |
500 mL vacuum filter cup 0.22 µm PES, Stericup Millipore Express Plus | Millipore Sigma | SCGPU10RE | |
50 mL conical centrifuge tubes | ThermoFisher Scientific | 339652 | |
50 mL serological pipet | VWR international | 89130-902 | |
5 mL serological pipet | VWR international | 89130-896 | |
Agar, Criterion | VWR International | C7432 | |
Agarose | Denville Scientific | CA3510-6 | |
Alcohol proof marker | VWR International | 52877-310 | |
Bacto peptone | VWR International | 90000-264 | |
Caenorhabditis elegans | CGC | N2 | |
Calcium dichloride | Millipore Sigma | C4901 | |
Cholesterol | Millipore Sigma | C8667 | |
Control DNA temple cloning primers, Forward 5’- ctc atg ttt gac agc tta tcg atc cgg gc -3’ | |||
Control DNA temple cloning primers, Forward 5’- aca gga cgg gtg tgg tcg cca tga t -3’ | |||
Deionized water | |||
Dithiothreitol | Invitrogen | 15508-013 | |
DNA gel stain, SYBR safe | Invitrogen | S33102 | |
DNA ladder mix, O’gene ruler | Fisher Scientific | SM1173 | |
DNA Loading Dye, 6x TriTrack | Fisher Scientific | FERR1161 | |
DNase, Baseline-ZERO | Lucigen | DB0715K | |
Dry ice | |||
Escherichia coli OP50 strain | CGC | OP50 | |
Glacial acetic acid | Fisher Scientific | A38 | |
Glycerol | Millipore Sigma | G6279 | |
HeLa nuclear extract in vitro transcription system, HeLaScribe | Promega | E3110 | |
Hepes Solution, 1 M Gibco | Millipore Sigma | 15630080 | |
Hydrochloric acid 37% | Millipore Sigma | P0662 | |
Hypochlorite bleach | Clorox | ||
LB Broth | Millipore Sigma | L3022 | |
Magnesium dichloride | Millipore Sigma | M8266 | |
Magnesium Sulfate | Millipore Sigma | M7506 | |
Medium weigh dishes | Fisher Scientific | 02-202-101 | |
microscope slides, Vista vision | VWR International | 16004-368 | |
molecular grade water, Hypure | Hyclone Laboratories | SH30538 | |
Nystatin | Millipore Sigma | N1638 | |
PCR system, FailSafe with premix A | Lucigen | FS99100 | |
Potassium chloride | Millipore Sigma | P39111 | |
Potassium phosphate dibasic | Millipore Sigma | P3786 | |
Potassium phosphate monobasic | Millipore Sigma | P0662 | |
Protease inhibitor, Halt single use cocktail 100x | ThermoFisher Scientific | 78430 | |
protein assay kit, Qubit | ThermoFisher Scientific | Q33211 | |
reverse transcription kit, Sensiscript | Qiagen | 205211 | |
RNA extraction kit RNeasy micro kit | Qiagen | 74004 | |
RNase Inhibitor | Applied Biosystems | N8080119 | |
Sodium Chloride | VWR International | BDH9286-12KG | |
Sodium hydroxide | Millipore Sigma | 1-09137 | |
Sterile syringe filter with 0.2 µm Polyethersulfone membrane | VWR international | 28145-501 | |
Sucrose | VWR International | 200-334-9 | |
transcription primers, Forward 5’- gcc ggg cct ctt gcg gga tat -3’ | |||
transcription primers, Reverse 5’- cgg cca aag cgg tcg gac agt-3’ | |||
Tris-Base | Fisher Scientific | BP152 | |
Tween20 | Millipore Sigma | P2287 | |
Equipment | |||
-20 °C incubator | ThermoFisher Scientific | ||
20 °C incubator | ThermoFisher Scientific | ||
37 °C incubator | Forma Scientific | ||
4 °C refrigerator | ThermoFisher Scientific | ||
-80 °C freezer | Eppendorf | ||
Autoclave | Sanyo | ||
Balch homogenizer, isobiotec cell homogenizer | Isobiotec | ||
Benchtop Vortexer | Fisher Scientific | 2215365 | |
Centrifuge, Eppendorf 5418 R | Eppendorf | 5401000013 | |
Centrifuge, VWR Clinical 50 | VWR International | 82013-800 | |
Dissection microscope, Leica M80 | Leica Microsystems | ||
Fluorometer, Qubit 2.0 | Invitrogen | Q32866 | |
Gel imaging system, iBright FL1500 | ThermoFisher Scientific | A44241 | |
Gel system | ThermoFisher Scientific | ||
Heat block | VWR International | 12621-048 | |
Microcentrifuges, Eppendorf 5424 | Eppendorf | 22620401 | |
PIPETBOY acu 2 | Integra | 155017 | |
Pipette L-1000 XLS+, Pipet-Lite LTS | Rainin | 17014382 | |
Pipette L-10 XLS+, Pipet-Lite LTS | Rainin | 17014388 | |
Pipette L-200 XLS+, Pipet-Lite LTS | Rainin | 17014391 | |
Pipette L-20 XLS+, Pipet-Lite LTS | Rainin | 17014392 | |
Rocking platform | VWR International | ||
Thermocycler, Eppendorf Mastercycler Pro | Eppendorf | 950030010 |