Summary

Eencellige RNA Sequencing van Fluorescently geëtiketteerde muis neuronen met behulp van handmatig sorteren en dubbele In Vitro transcriptie met Absolute aantallen Sequencing (DIVA-Seq)

Published: October 26, 2018
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft de procedure om te isoleren van één fluorescently geëtiketteerde neuronen gevolgd door in vitro transcriptie gebaseerde mRNA versterking voor hoge-diepte eencellige RNA sequencing sorteren handleiding.

Abstract

Eencellige RNA sequencing (RNA-seq) is nu een grote schaal uitgevoerde hulpmiddel voor het analyseren van genexpressie. Commercieel beschikbare eencellige RNA-sequencing platforms verwerken alle invoercellen lukraak. Fluorescentie-activated cell sorting (FACS) wordt soms stroomopwaarts gebruikt voor het isoleren van een specifiek gelabelde bevolking van belang. Een beperking van FACS is de noodzaak voor hoge aantallen invoercellen met aanzienlijk gelabelde breuken, onpraktisch voor het verzamelen en profilering van zeldzame of dunbevolkte gelabelde neuron populaties van de hersenen van de muis. Hier beschrijven we een methode voor het handmatig verzamelen van sparse fluorescently label één neuronen van vers losgekoppeld muis hersenweefsel. Dit proces zorgt voor het vastleggen van single-geëtiketteerden neuronen met hoge zuiverheid en verdere integratie met een in vitro transcriptie gebaseerde amplificatie protocol dat endogene transcript verhoudingen behouden. We beschrijven een dubbele lineaire versterking-methode die unieke molecuul-id’s (UMIs) gebruikt voor het genereren van afzonderlijke mRNA graven. Twee rondes van versterking resulteert in een hoge mate van gene detectie per eencellige.

Introduction

Eencellige RNA sequencing (RNA-seq) heeft transcriptomic studies getransformeerd. Terwijl de grootschalige eencellige RNAseq kan worden uitgevoerd met behulp van een verscheidenheid van technieken, zoals druppels1,2, microfluidics3, nanogrids4en5van het microwells, sorteren de meeste methoden gedefinieerd celtypes niet die genetisch gecodeerde fluorophores express. Isoleren van een select-celpopulatie, wordt fluorescentie-activated cell sorting (FACS) vaak gebruikt voor het sorteren van gelabelde cellen in de modus van een eencellige. Er zijn enkele beperkingen heeft echter FACS en vereist zorgvuldige monster verwerking stappen. Ten eerste, een groot aantal invoercellen zijn meestal nodig (vaak meerdere miljoen cellen per mL), met een belangrijke fractie (> 15-20%) met de gelabelde bevolking. Ten tweede, cel preparaten mogelijk meerdere rondes van dichtheid kleurovergang centrifugeren stappen voor het verwijderen van gliale breuk, puin en cel bosjes die anders de mondstuk of stroom cel verstoppen misschien. Ten derde, FACS werken meestal kleuring en destaining stappen voor live/dead kleuring (bijvoorbeeld 4 ‘, 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) propidium jodide (PI) en Cytotracker kleurstoffen), die extra tijd in beslag nemen. Ten vierde, als een vuistregel voor twee kleuren sorteren (zoals DAPI en groen/rood fluorescente proteïne (GFP/RFP)), meestal twee monsters en één besturingselement nodig zijn, vereisen een labelloze monster naast de gewenste muis stam worden verwerkt. Ten vijfde: filteren wordt vaak uitgevoerd meerdere malen vóór en tijdens het monster sorteren om proactief te voorkomen dat verstopte monster lijnen in een FACS machine. Ten zesde moet tijd worden toegewezen in de meest gebruikte FACS opstellingen te initialiseren en te stabiliseren van de vloeistof stroom druppel kalibratie uit te voeren. Zevende, controle monsters worden meestal uitgevoerd in volgorde vóór het verzamelen van feitelijke monster om compensatie matrices, doublet afwijzing instellen, instellen van poorten, etc. gebruikers ofwel stappen zes en zeven zich tevoren of vereisen de hulp van een technicus in parallel. Ten slotte, post-FACS, er zijn vaak stappen om ervoor te zorgen dat alleen het label enkele cellen aanwezig in elk putje; bijvoorbeeld door het controleren van monsters bij een instelling met hoog-content screening zoals een snelle plaat imager.

Omzeilen van de bovenstaande stappen te vergemakkelijken een relatief snelle, gerichte sequencing van een kleine populatie van één fluorescently geëtiketteerde neuronen, beschrijven we een handleiding sorteren procedure gevolgd door twee rondes van een hooggevoelige in vitro versterking protocol, dubbele in-vitro transcriptie met absolute aantallen sequencing (DIVA-Seq) genoemd. De RNA-versterking en cDNA Bibliotheek generatie zijn aangepast van Eberwine et al. 6 en Hashimshony et al. 7, met enkele wijzigingen aan de muis interneuronen hebben kleinere cellulaire volumes; Bovendien, we hebben ook geconstateerd dat er even nuttig voor excitatory piramidale neuronen.

Protocol

Alle procedures met inbegrip van dierlijke onderwerpen zijn goedgekeurd door de IACUC op de Cold Spring Harbor Laboratory, NY (IACUC #16-13-09-8). 1. hand sorteren van Fluorescently geëtiketteerde muis neuronen Trek glas microcapillaries (Zie Tabel van materialen) met 10 – 15 µm afrit diameter een capillaire trekker met de volgende instellingen opgegeven: warmte: 508, pull: leeg, vel: leeg, tijd: leeg. 120-150 cm flexibele silicone slangen (~0.8 mm binn…

Representative Results

Met behulp van het protocol zoals hierboven beschreven, GABAergic neuronen handmatig werden gesorteerd op (Figuur 1) en RNA versterkt, vervolgens werd verfilmd een cDNA Bibliotheek (Figuur 2) en sequenced op hoge diepte8. De versterkte RNA (aRNA) producten varieerde van 200-4000 bp in grootte, met een verdeling van de piek iets boven 500 bp (figuur 3A). De kraal-gezuiverd cDNA…

Discussion

De handleiding sorteren protocol is geschikt voor een gecontroleerde RNA sequencing van neuron populaties die dun met de label in de hersenen van muizen of vertegenwoordigen een zeldzame celpopulatie die anders niet haalbaar is om te studeren met behulp van de huidige high-throughput cel Sorteer- en versterking methoden. Cellen die zijn onderworpen aan FACS meestal ondergaan schede en monster lijn druk in het bereik van ~ 9-14 psi, afhankelijk van de grootte van het mondstuk en gewenste gebeurtenis tarieven. Daarnaast op…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gesteund door subsidies van de NIH (5R01MH094705-04 en R01MH109665-01 tot en met Z.J.H.), door het CSHL Robertson Neuroscience Fonds (Z.J.H.) en door een NARSAD Post-Doctoral Fellowship (naar A.P.).

Materials

ERCC RNA Spike-In Control Mixes Thermo Fisher Cat# 4456740
SuperScript III Thermo Fisher Cat# 18080093
RNaseOUT Recombinant Ribonuclease Inhibitor Thermo Fisher Cat# 10777019
RNA fragmentation buffer New England Biolabs Cat# E6105S
RNA MinElute kit Qiagen Cat# 74204
Antarctic phosphatase New England Biolabs Cat# M0289
Poly nucleotide kinase New England Biolabs Cat# M0201
T4 RNA ligase2, truncated New England Biolabs Cat# M0242
Ampure Xp magnetic  beads Beckman Coulter Cat# A63880
SPRIselect size selection magnetic beads Thermo Fisher Cat# B23317
DL-AP5 Tocris Cat# 0105
CNQX Tocris Cat# 1045
TTX Tocris Cat# 1078
Protease from Streptomyces griseus Sigma-Aldrich Cat# P5147
Message Amp II kit Thermo Fisher Cat# AM1751
Carbogen Airgas Cat# UN3156
Sylgard 184 Sigma-Aldrich Cat# 761036
Illumina TrueSeq smallRNA kit Illumina Cat# RS-200-0012
Bioanalyzer RNA Pico chip Agilent Cat# 5067-1513
Bioanalyzer High Sensitvity DNA chip Agilent Cat# 5067-4626
Bioanalyzer 2100 Agilent
Dissection microscope with fluorescence and bright field illumination with DIC optics.  (Leica model MZ-16F). Leica Model MZ-16F
Glass microcapillary: Borosilicate capillary tubes 500/pk. OD= 1 mm, ID=0.58 mm, wall= 0.21 mm, Length= 150 mm. Warner instruments Model GC100-15, Order# 30-0017
Capillary pipette puller Sutter Instruments Co P-97
Vibratome Thermo Microm HM 650V
Vibratome tissue cooling unit Thermo Microm CU 65

References

  1. Macosko, E. Z., et al. Highly Parallel Genome-wide Expression Profiling of Individual Cells Using Nanoliter Droplets. Cell. 161 (5), 1202-1214 (2015).
  2. Klein, A. M., et al. Droplet barcoding for single-cell transcriptomics applied to embryonic stem cells. Cell. 161 (5), 1187-1201 (2015).
  3. Xin, Y., et al. Use of the Fluidigm C1 platform for RNA sequencing of single mouse pancreatic islet cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (12), 3293-3298 (2016).
  4. Gao, R., et al. Nanogrid single-nucleus RNA sequencing reveals phenotypic diversity in breast cancer. Nature Communications. 8 (1), 228 (2017).
  5. Yuan, J., Sims, P. A. An Automated Microwell Platform for Large-Scale Single Cell RNA-Seq. Scientific Reports. 6, 33883 (2016).
  6. Eberwine, J., et al. Analysis of gene expression in single live neurons. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 89 (7), 3010-3014 (1992).
  7. Hashimshony, T., Wagner, F., Sher, N., Yanai, I. CEL-Seq: Single-Cell RNA-Seq by Multiplexed Linear Amplification. Cell Reports. 2 (3), 666-673 (2012).
  8. Paul, A., et al. Transcriptional Architecture of Synaptic Communication Delineates GABAergic Neuron Identity. Cell. 171 (3), 522-539 (2017).
  9. Zeisel, A., et al. Cell types in the mouse cortex and hippocampus revealed by single-cell RNA-seq. Science. 1934, (2015).
  10. Tasic, B., et al. Adult mouse cortical cell taxonomy revealed by single cell transcriptomics. Nature Neuroscience. 19, 335-346 (2016).
  11. Okaty, B. W., et al. Multi-Scale Molecular Deconstruction of the Serotonin Neuron System. Neuron. 88 (4), 774-791 (2015).
  12. Poulin, J. F., Tasic, B., Hjerling-Leffler, J., Trimarchi, J. M., Awatramani, R. Disentangling neural cell diversity using single-cell transcriptomics. Nature Neuroscience. 19 (9), 1131-1141 (2016).
  13. Crow, M., Paul, A., Ballouz, S., Huang, Z. J., Gillis, J. Exploiting single-cell expression to characterize co-expression replicability. Genome Biology. 17, 101 (2016).
  14. Crow, M., Paul, A., Ballouz, S., Huang, Z. J., Gillis, J. Characterizing the replicability of cell types defined by single cell RNA-sequencing data using MetaNeighbor. Nature Communications. 9 (1), (2018).
  15. Hrvatin, S., et al. Single-cell analysis of experience-dependent transcriptomic states in the mouse visual cortex. Nature Neuroscience. 21 (1), 120-129 (2018).

Play Video

Cite This Article
Paul, A., Huang, Z. J. Single-cell RNA Sequencing of Fluorescently Labeled Mouse Neurons Using Manual Sorting and Double In Vitro Transcription with Absolute Counts Sequencing (DIVA-Seq). J. Vis. Exp. (140), e58690, doi:10.3791/58690 (2018).

View Video