Summary

В естественных условиях Двух фотонных изображений корковых нейронов в новорожденных мышей

Published: October 18, 2018
doi:

Summary

Мы представляем в естественных условиях двух фотонных изображений протокол для визуализации коры головного мозга у новорожденных мышей. Этот метод подходит для анализа динамики развития корковых нейронов, молекулярные механизмы, которые управляют нейрональных динамики и изменения в нейрональных динамика в модели заболеванием.

Abstract

Двух фотонных изображений является мощным инструментом для анализа нейронных цепей в мозге млекопитающих в естественных условиях . Однако ограниченное количество в vivo тепловизионные методы существуют для изучения мозговой ткани живых новорожденных млекопитающих. Здесь мы кратко протокол для визуализации отдельных корковых нейронов в живых новорожденных мышей. Этот протокол включает в себя следующие две методологии: (1) системе Сверхновая для разреженных и яркие маркировки корковых нейронов в развивающийся мозг и (2) хирургическая процедура для хрупких новорожденного череп. Этот протокол позволяет наблюдение временных изменений отдельных корковых невритов новорожденных этапах с высоким соотношением сигнал шум. Приклеенные этикетку клеток конкретных генов и нокаут также могут быть достигнуты путем объединения сверхновой РНК-интерференции и ТРИФОСФАТЫ/Cas9 гена систем редактирования. Этот протокол может таким образом, использоваться для анализа динамики развития корковых нейронов, молекулярные механизмы, которые управляют нейрональных динамики и изменения в динамике нейронов в модели заболеванием.

Introduction

Точное проводки нейронных цепей в коре имеет важное значение для высших мозговых функций, включая восприятие, познание и обучения и памяти. Корковых цепи динамически уточняются во время послеродового развития. Исследования изучали процесс корковых цепи формирования с использованием гистологических и в пробирке анализа культуры. Однако динамика формирования цепи в жизни млекопитающих оставалась главным образом неизученными.

Двух Фотон микроскопии широко используется для анализа в vivo нейронных цепей в1,мозг взрослой мыши2. Однако из-за технических проблем, только ограниченное количество исследований рассматривались нейронные цепи формирования у новорожденных мышей. К примеру Каррильо et al. исполнил покадровой съемки восхождения волокна мозжечка в втором послеродовой неделю3. Portera-Кайо et al. сообщили изображений аксоны в коркового слоя 1 в первом послеродовой неделю4. В настоящем исследовании мы суммируем протокол для наблюдения слой 4 корковых нейронов и их дендритов новорожденных мышей. Результаты, полученные путем применения настоящего Протокола, которая включает в себя две методологии, сообщается в нашей недавней публикации5. Во-первых мы используем сверхновой вектор системы5,6 для маркировки отдельных нейронов в головном мозге новорожденных. В системе сверхновой флуоресцентных белков, используется для маркировки нейронов нокдаун гена клеток конкретных сменные и помечены и редактирования/нокаут анализы также возможны. Во-вторых мы описываем хирургическая процедура подготовки черепной окно в хрупких новорожденных мышей. Вместе эти методологии позволяют наблюдения в естественных условиях отдельных нейронов в мозге новорожденных.

Protocol

Эксперименты следует проводить в соответствии с руководящими животных, установленном учреждением экспериментатора. 1. Подготовка щенков для изображений Примечание: Щенков с редкой помечены корковых нейронов может быть получено в утробе матери элект?…

Representative Results

2D фигуры – 2F представитель результаты двух Фотон покадровой изображений корковых нейронов слоя 4 с использованием настоящего Протокола. Для целей анализа выберите нейронов с четкой дендритных морфологии на протяжении периодов изображений. Мы проан?…

Discussion

Важнейшие шаги в протоколе и устранения неполадок:

Наиболее важным этапом протокола является удаление черепа (протокол шаг 3.2). После вставки лезвие бритвы часто придерживается Дура, вызывая дурального кровотечение и повреждение головного мозга. Этого можно избежать путе…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы благодарят т. Сато, м. Kanbayashi и S. Kouyama за их технической помощи. Эта работа была поддержана JSP-страницы KAKENHI Грант номера JP15K14322 и JP16H06143, научный фонд Такэда, Уэхара Мемориальный фонд и проект совместных исследований Ниигата университета мозга исследовательский институт 2017-2923 (H.M.) и по KAKENHI JP16K14559, JP15H01454 и JP15H04263 и Грант в научных исследований в области инноваций «Динамическое регулирование функции мозга на металлолом и построения системы» (JP16H06459) от МПКСНТ (T.I.).

Materials

pK031. TRE-Cre 저자 Available from RIKEN BRC and Addgene
pK029. CAG-loxP-STOP-loxP-RFP-ires-tTA-WPRE 저자 Available from RIKEN BRC and Addgene
pK273. CAG-loxP-STOP-loxP-CyRFP-ires-tTA-WPRE 저자 Available from authors
Isoflurane Wako 099-06571
410 Anaesthesia Unit (isoflurane gas machine) Univentor 8323101
Vetbond (tissue adhesive) 3M 084-1469SB
MµltiFlex Round (loading tip) Sorenson 13810
Gelfoam (gelatin sponge) Pfizer 09-0353-01
Agarose Sigma A9793 Low melting point
Round-shaped coverslip Matsunami Custom made
Unifast 2 (dental cement) GC
Titanium bar 저자 Custom made (see Figure 1G)
Rimadyl (carprofen) Zoetis Injectable
2-photon microscope Zeiss LSM7MP
Titanium-sapphire laser Spertra-Physics Mai-Tai eHPDS
Titanium plate 저자 Custom made (see Figure 2A)
IMARIS, FilamentTracer, MeasurementPro BITPLANE
Goniometer stage Thorlabs GN2/M

References

  1. Lendvai, B., Stern, E. A., Chen, B., Svoboda, K. Experience-dependent plasticity of dendritic spines in the developing rat barrel cortex in vivo. Nature. 404 (6780), 876-881 (2000).
  2. Grutzendler, J., Kasthuri, N., Gan, W. B. Long-term dendritic spine stability in the adult cortex. Nature. 420 (6917), 812-816 (2002).
  3. Carrillo, J., Nishiyama, N., Nishiyama, H. Dendritic translocation establishes the winner in cerebellar climbing fiber synapse elimination. The Journal of Neuroscience. 33 (18), 7641-7653 (2013).
  4. Portera-Cailliau, C., Weimer, R. M., De Paola, V., Caroni, P., Svoboda, K. Diverse modes of axon elaboration in the developing neocortex. PLoS Biology. , e272 (2005).
  5. Mizuno, H., et al. NMDAR-regulated dynamics of layer 4 neuronal dendrites during thalamocortical reorganization in neonates. Neuron. 82 (2), 365-379 (2014).
  6. Luo, W., et al. Supernova: A Versatile Vector System for Single-Cell Labeling and Gene Function Studies in vivo. Scientific Reports. 6, 35747 (2016).
  7. Mizuno, H., Hirano, T., Tagawa, Y. Evidence for activity-dependent cortical wiring: formation of interhemispheric connections in neonatal mouse visual cortex requires projection neuron activity. The Journal of Neuroscience. 27 (25), 6760-6770 (2007).
  8. Saito, T., Nakatsuji, N. Efficient gene transfer into the embryonic mouse brain using in vivo electroporation. 발생학. 240 (1), 237-246 (2001).
  9. Tabata, H., Nakajima, K. Efficient in utero gene transfer system to the developing mouse brain using electroporation: visualization of neuronal migration in the developing cortex. 신경과학. 103 (4), 865-872 (2001).
  10. Mizuno, H., Hirano, T., Tagawa, Y. Pre-synaptic and post-synaptic neuronal activity supports the axon development of callosal projection neurons during different post-natal periods in the mouse cerebral cortex. European Journal of Neuroscience. 31 (3), 410-424 (2010).
  11. Matsui, A., Yoshida, A. C., Kubota, M., Ogawa, M., Shimogori, T. Mouse in utero electroporation: controlled spatiotemporal gene transfection. Journal of Visualized Experiments. (54), e3024 (2011).
  12. Holtmaat, A., et al. Long-term, high-resolution imaging in the mouse neocortex through a chronic cranial window. Nature Protocols. 4 (8), 1128-1144 (2009).
  13. Nakai, J., Ohkura, M., Imoto, K. A high signal-to-noise Ca(2+) probe composed of a single green fluorescent protein. Nature Biotechnology. 19 (2), 137-141 (2001).
  14. Chen, T. W., et al. Ultrasensitive fluorescent proteins for imaging neuronal activity. Nature. 499 (7458), 295-300 (2013).
  15. Mizuno, H., et al. Patchwork-Type Spontaneous Activity in Neonatal Barrel Cortex Layer 4 Transmitted via Thalamocortical Projections. Cell Reports. 22 (1), 123-135 (2018).
  16. Zong, H., Espinosa, J. S., Su, H. H., Muzumdar, M. D., Luo, L. Mosaic analysis with double markers in mice. Cell. 121 (3), 479-492 (2005).
  17. Young, P., et al. Single-neuron labeling with inducible Cre-mediated knockout in transgenic mice. Nature Neuroscience. 11 (6), 721-728 (2008).
  18. Liu, J., et al. Neonatal Repeated Exposure to Isoflurane not Sevoflurane in Mice Reversibly Impaired Spatial Cognition at Juvenile-Age. Neurochemical Research. 42 (2), 595-605 (2017).
  19. Kondo, M., Kobayashi, K., Ohkura, M., Nakai, J., Matsuzaki, M. Two-photon calcium imaging of the medial prefrontal cortex and hippocampus without cortical invasion. eLIFE. 6, e26839 (2017).
  20. Nakazawa, S., Mizuno, H., Iwasato, T. Differential dynamics of cortical neuron dendritic trees revealed by long-term in vivo imaging in neonates. Nature Communications. 9 (1), 3106 (2018).

Play Video

Cite This Article
Mizuno, H., Nakazawa, S., Iwasato, T. In Vivo Two-photon Imaging of Cortical Neurons in Neonatal Mice. J. Vis. Exp. (140), e58340, doi:10.3791/58340 (2018).

View Video