Summary

Vivo에서 신생아 쥐에 있는 대뇌 피 질의 뉴런의 두 광자 영상

Published: October 18, 2018
doi:

Summary

우리는 현재 vivo에서 2 광자 영상 이미징 신생아 쥐의 대뇌 피 질에 대 한 프로토콜. 이 메서드는 대뇌 피 질의 뉴런, 신경 역학 및 질병 모델에서 신경 역학에 변화를 제어 하는 분자 메커니즘의 발달 역학 분석에 적합 합니다.

Abstract

두 광자 영상 포유류 두뇌에 있는 신경 회로의 비보에 분석을 위한 강력한 도구입니다. 그러나, vivo에서 화상 진 찰 방법의 제한 된 수 라이브 신생아 포유류의 뇌 조직 검사에 대 한 존재 합니다. 여기 우리 생활 신생아 쥐에 있는 개별 대뇌 피 질의 신경 세포 이미징에 대 한 프로토콜을 요약 합니다. 이 프로토콜 다음 두 가지 방법론을 포함 한다: (1) 초신성 시스템 스파스 하 고 밝은 개발 두뇌에 연약한 신생아 두개골에 대 한 수술 (2)는 대뇌 피 질의 뉴런의 라벨에 대 한. 이 프로토콜에는 높은 신호 대 잡음 비율 신생아 단계 개별 외피 neurites의 시간적 변화 관찰 수 있습니다. 레이블이 지정 된 셀 특정 유전자 침묵 및 녹아웃 RNA 간섭 및 편집 시스템 CRISPR/Cas9 유전자는 초신성을 결합 하 여 얻을 수 있습니다. 이 프로토콜 수 있습니다, 따라서, 대뇌 피 질의 뉴런, 신경 역학 및 질병 모델에서 신경 역학에 변화를 제어 하는 분자 메커니즘의 개발 역학을 분석 하는 데 사용할 수 있습니다.

Introduction

대뇌 피 질에 있는 신경 회로의 정확한 배선 지 각, 인식, 그리고 학습 및 메모리를 포함 하 여 더 높은 두뇌 기능을 위해 필수적 이다. 대뇌 피 질의 회로 출생 후 개발 하는 동안 동적으로 정제 된 있다입니다. 조직학 대뇌 피 질의 회로 형성을 사용 하 여 프로세스와 문화 분석 생체 외에서 연구 조사 했습니다. 그러나, 생활 포유류에 회로 형성의 역학 미개척 주로 남아 있다.

두 광자 현미경은 성인 마우스 뇌1,2에 있는 신경 회로의 분석 vivo에서 널리 사용 되었습니다. 그러나, 때문에 기술 과제, 연구의 제한 된 수만 언급 신생아 쥐에 있는 신경 회로 형성. 예를 들어 Carrillo 외. 두 번째 출생 후 주3에서 소 뇌에 섬유를 등반의 시간 경과 영상 수행. Portera-리아우 외. 첫 번째 출생 후 주4에서 대뇌 피 질의 레이어 1에에서 축 삭의 영상 보고. 현재 연구에서 우리는 계층 4 대뇌 피 질의 뉴런을 신생아 쥐에 있는 그들의 dendrites의 관찰에 대 한 프로토콜 요약. 두 가지 방법론을 포함,이 프로토콜을 적용 하 여 얻은 결과 우리의 최근 게시5에 보고 됩니다. 첫째, 초신성 벡터 시스템5,6 사용 하 여 개별 신경 신생아 두뇌의 라벨에 대 한. 초신성 시스템에서 신경 라벨에 사용 되는 형광 단백질 교환 및 레이블이 셀 특정 유전자 최저 이며 편집/녹아웃 분석은 또한 가능. 둘째, 우리는 연약한 신생아 쥐에 있는 두개골 창 준비에 대 한 수술을 설명합니다. 함께, 이러한 방법론 신생아 두뇌에 개별 뉴런의 vivo에서 관찰 하실 수 있습니다.

Protocol

실험은 실험의 기관에 의해 규정 된 동물 복지 지침에 따라 수행 되어야 한다. 1입니다. 영상에 대 한 강아지의 준비 참고: 새끼 띄엄띄엄 레이블이 대뇌 피 질의 뉴런으로 얻어질 수 있다 electroporation (IUE) utero에 의해 초신성 벡터5,6. 다음 두 벡터의 초신성 시스템 구성: 트 레-Cre, CAG-loxP-정지-loxP-유전자 X-ire…

Representative Results

그림 2D – 2 층 현재 프로토콜을 사용 하 여 레이어 4 대뇌 피 질의 뉴런의 두 광자 시간 경과 화상의 대표적인 결과. 분석을 위해 신경 세포 이미징 기간 내내 분명 수지상 형태와 선택 합니다. 우리는 형태소 분석 소프트웨어를 사용 하 여 이미지 신경 세포의 수지상 형태 분석. 대표 수지상 형태 재구성 그림 2 층에 표시 됩니?…

Discussion

프로토콜의 중요 한 단계 문제 해결:

프로토콜의 가장 중요 한 단계는 두개골 (프로토콜 단계 3.2)의 제거 이다. 삽입 시 면도날 종종 경 막 출혈과 뇌 손상을 일으키는 경질을 준수 합니다. 이 두개골에 피 질 버퍼의 한 방울을 추가 하 고 피 질 버퍼에 두개골을 제거 하 여 방지할 수 있습니다.

윈도우의 폐색 이끌어 낸다 두개골 창 준비 후 경질, 피부에서 출?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 그들의 기술 지원에 대 한 T. 사토, M. Kanbayashi, S. Kouyama을 감사합니다. 이 작품 JSP KAKENHI 보조금 번호 JP15K14322 및 JP16H06143, 다케다 과학 재단, 우에하라 기념 재단, 그리고는 공동 연구 프로젝트의 니이가타 대학 뇌 연구 연구소 2017-2923 (흠)와 의해 지원 되었다 KAKENHI JP16K14559, JP15H01454, 및 JP15H04263 및 그랜트에 과학에 대 한 연구 혁신 분야 “스크랩 및 빌드 시스템에 의해 뇌 기능의 동적 규칙” (JP16H06459)에서 문 부 과학성 (릭).

Materials

pK031. TRE-Cre 저자 Available from RIKEN BRC and Addgene
pK029. CAG-loxP-STOP-loxP-RFP-ires-tTA-WPRE 저자 Available from RIKEN BRC and Addgene
pK273. CAG-loxP-STOP-loxP-CyRFP-ires-tTA-WPRE 저자 Available from authors
Isoflurane Wako 099-06571
410 Anaesthesia Unit (isoflurane gas machine) Univentor 8323101
Vetbond (tissue adhesive) 3M 084-1469SB
MµltiFlex Round (loading tip) Sorenson 13810
Gelfoam (gelatin sponge) Pfizer 09-0353-01
Agarose Sigma A9793 Low melting point
Round-shaped coverslip Matsunami Custom made
Unifast 2 (dental cement) GC
Titanium bar 저자 Custom made (see Figure 1G)
Rimadyl (carprofen) Zoetis Injectable
2-photon microscope Zeiss LSM7MP
Titanium-sapphire laser Spertra-Physics Mai-Tai eHPDS
Titanium plate 저자 Custom made (see Figure 2A)
IMARIS, FilamentTracer, MeasurementPro BITPLANE
Goniometer stage Thorlabs GN2/M

References

  1. Lendvai, B., Stern, E. A., Chen, B., Svoboda, K. Experience-dependent plasticity of dendritic spines in the developing rat barrel cortex in vivo. Nature. 404 (6780), 876-881 (2000).
  2. Grutzendler, J., Kasthuri, N., Gan, W. B. Long-term dendritic spine stability in the adult cortex. Nature. 420 (6917), 812-816 (2002).
  3. Carrillo, J., Nishiyama, N., Nishiyama, H. Dendritic translocation establishes the winner in cerebellar climbing fiber synapse elimination. The Journal of Neuroscience. 33 (18), 7641-7653 (2013).
  4. Portera-Cailliau, C., Weimer, R. M., De Paola, V., Caroni, P., Svoboda, K. Diverse modes of axon elaboration in the developing neocortex. PLoS Biology. , e272 (2005).
  5. Mizuno, H., et al. NMDAR-regulated dynamics of layer 4 neuronal dendrites during thalamocortical reorganization in neonates. Neuron. 82 (2), 365-379 (2014).
  6. Luo, W., et al. Supernova: A Versatile Vector System for Single-Cell Labeling and Gene Function Studies in vivo. Scientific Reports. 6, 35747 (2016).
  7. Mizuno, H., Hirano, T., Tagawa, Y. Evidence for activity-dependent cortical wiring: formation of interhemispheric connections in neonatal mouse visual cortex requires projection neuron activity. The Journal of Neuroscience. 27 (25), 6760-6770 (2007).
  8. Saito, T., Nakatsuji, N. Efficient gene transfer into the embryonic mouse brain using in vivo electroporation. 발생학. 240 (1), 237-246 (2001).
  9. Tabata, H., Nakajima, K. Efficient in utero gene transfer system to the developing mouse brain using electroporation: visualization of neuronal migration in the developing cortex. 신경과학. 103 (4), 865-872 (2001).
  10. Mizuno, H., Hirano, T., Tagawa, Y. Pre-synaptic and post-synaptic neuronal activity supports the axon development of callosal projection neurons during different post-natal periods in the mouse cerebral cortex. European Journal of Neuroscience. 31 (3), 410-424 (2010).
  11. Matsui, A., Yoshida, A. C., Kubota, M., Ogawa, M., Shimogori, T. Mouse in utero electroporation: controlled spatiotemporal gene transfection. Journal of Visualized Experiments. (54), e3024 (2011).
  12. Holtmaat, A., et al. Long-term, high-resolution imaging in the mouse neocortex through a chronic cranial window. Nature Protocols. 4 (8), 1128-1144 (2009).
  13. Nakai, J., Ohkura, M., Imoto, K. A high signal-to-noise Ca(2+) probe composed of a single green fluorescent protein. Nature Biotechnology. 19 (2), 137-141 (2001).
  14. Chen, T. W., et al. Ultrasensitive fluorescent proteins for imaging neuronal activity. Nature. 499 (7458), 295-300 (2013).
  15. Mizuno, H., et al. Patchwork-Type Spontaneous Activity in Neonatal Barrel Cortex Layer 4 Transmitted via Thalamocortical Projections. Cell Reports. 22 (1), 123-135 (2018).
  16. Zong, H., Espinosa, J. S., Su, H. H., Muzumdar, M. D., Luo, L. Mosaic analysis with double markers in mice. Cell. 121 (3), 479-492 (2005).
  17. Young, P., et al. Single-neuron labeling with inducible Cre-mediated knockout in transgenic mice. Nature Neuroscience. 11 (6), 721-728 (2008).
  18. Liu, J., et al. Neonatal Repeated Exposure to Isoflurane not Sevoflurane in Mice Reversibly Impaired Spatial Cognition at Juvenile-Age. Neurochemical Research. 42 (2), 595-605 (2017).
  19. Kondo, M., Kobayashi, K., Ohkura, M., Nakai, J., Matsuzaki, M. Two-photon calcium imaging of the medial prefrontal cortex and hippocampus without cortical invasion. eLIFE. 6, e26839 (2017).
  20. Nakazawa, S., Mizuno, H., Iwasato, T. Differential dynamics of cortical neuron dendritic trees revealed by long-term in vivo imaging in neonates. Nature Communications. 9 (1), 3106 (2018).

Play Video

Cite This Article
Mizuno, H., Nakazawa, S., Iwasato, T. In Vivo Two-photon Imaging of Cortical Neurons in Neonatal Mice. J. Vis. Exp. (140), e58340, doi:10.3791/58340 (2018).

View Video