Summary

Трахею прививка Фишер 344 крыс с Francisella tularensis

Published: September 30, 2017
doi:

Summary

Этот протокол описывает трахею прививки Фишер 344 крыс с Francisella tularensis. Эта процедура повторяет легочной подверженности людей этого потенциального агента отражению и может использоваться для тестирования вакцин и терапевтической эффективности против легких туляремии.

Abstract

Легочные инфекции с бактерией Francisella tularensis может привести к серьезным и потенциально смертельным заболеванием, туляремии, в организме человека. Из-за отсутствия утвержденных туляремии вакцины для людей исследования сосредоточена на разработке вакцины, используя соответствующие Животные модели. Фишер 344 крыса стала модель, которая отражает человека восприимчивость к инфекции F. tularensis и таким образом является привлекательной моделью для разработки вакцины против туляремии. Прививка трахею крыс Фишер 344 с F. tularensis имитирует легочной экспозиции в организме человека. Успешной доставке в трахею крыс имеет решающее значение для легких доставки. Ларингоскоп с подсветкой используется для того, чтобы должным образом интубировать трахею наркотизированных крыс; правильное размещение внутри трахеи определяется простым устройством для обнаружения дыхание. После интубации F. tularensis культуры поставляется в измеренной дозы через шприц. Эта техника стандартизирует легочной доставки F. tularensis внутри трахеи крыс для оценки эффективности вакцины.

Introduction

F. tularensis (Ft) причины болезней человека, туляремии. Когда бактерии приобретаются через легочной маршрут, это приводит к легочной туляремии, которая имеет высокие показатели заболеваемости и смертности1. F. tularensis считается отражению агент из-за опасности, связанные с аэрозольных форм и в настоящее время вакцины не одобрен для использования человеком в США В настоящее время ведется интенсивные усилия для разработки вакцин и терапевтических мер против легочной туляремии, для защиты населения против незаконного использования этого бактериальных отражению.

Большая часть исследований туляремии была сосредоточена на модель мыши, из-за повышенной чувствительности мыши F. tularensis инфекции и распространенность реагентов. Однако мышей доказали быть сложной модели для разработки вакцины, из-за сложности продемонстрировать эффективность вакцины в этой модели2. Недавно Фишер 344 крыса была разработана как модель для разработки вакцины против туляремии3. Чувствительность Фишер 344 крысы различных подвидов F. tularensis имитирует человеческое чувствительность4, и крысы могут быть защищены от F. tularensis легочной вызов вакцинации с живой вакцинного штамма, известный для защиты люди5,6,7. Потому что Фишер 344 крыса модели некоторые функции F. tularensis инфекции людей, это может быть чрезвычайно полезной моделью для разработки вакцины, которая защищает от легких F. tularensis экспозиции.

Эффективной вакцины необходимо защитить людей против легких подверженности F. tularensis. Скорее всего легочной облучения от боеприпас F. tularensis бы аэрозольных бактерий, вдыхается в легкие8. Однако аэрозольные поколение F. tularensis опасных и громоздкой и требует специализированного оборудования и сдерживания. Альтернативный маршрут легочной воздействия в крысу, которая, возможно, более пригодных для нескольких лабораторий специализированное оборудование отсутствует через трахею прививка6. Этот метод использует Ларингоскоп для правильного размещения катетера в трахею наркотизированных крыс. Размещение в трахею, а не пищевода, проверяется простое устройство, которое отображает поток воздуха из легких. F. tularensis впоследствии доставлены в легкие через катетер администрацией с помощью шприца, с последующим введением воздуха в катетер для обеспечения легких доставки бактерий. В отличие от Jemski5 ранее сообщалось, что F. tularensis прививку в Фишер 344 крыс через интраназального маршрут может не культивировали от легких до 3 дней после прививки, указывающее, что интраназальной прививки в крыс делает не результат в прямой доставки бактерий в легкие.

Выберите агент формы F. tularensis (F. tularensis subsp. tularensis, F. tularensis subsp. holarctica) требуют биобезопасности уровня 3 (BSL3) включения процедур, которые бы предотвратить видеосъемка. Однако, F. novicida (Fn) освобождается от состояния выберите агента из-за его avirulence у здоровых людей и может безопасно использоваться под 2-го уровня биобезопасности (BSL2) условия9,10. Кроме того Fn служит основой для живых ослабленных вакцин, которые могут защитить от F. tularensis легочной экспозиции при доставке через трахею прививка11,12,13. Техника, представленная здесь позволяет для изучения инфекций, которые происходят через легочной маршрут, используя крыс как модель для людей. Этот метод может выполняться без необходимости специализированного оборудования генерации аэрозоля. FN использовался для методов снят здесь.

Protocol

Эта работа была выполнена в строгом соответствии с рекомендациями руководства для ухода и использования лабораторных животных национальных институтов здоровья. Животных с участием грызунов протоколы были одобрены Техасского университета в Сан-Антонио институциональный уход живот?…

Representative Results

Гуморальный ответ на вакцинацию F. tularensis трахею крыс может определяться энзим соединенный assay иммуносорбента (ELISA) против УФ инактивированных бактерий, как описано выше11. Общая иммуноглобулина G (IgG) ответ Фишер 344 крыс клеточных инактивированных бакте?…

Discussion

Крыса 344 Фишер становится важной моделью для разработки вакцины против туляремии3. Подверженности F. tularensis через легочной маршрут имеет решающее значение для демонстрации эффективности против вепонизации форм F. tularensis, потому что они поставляются в виде аэрозолей…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование было поддержано обороны агентства сокращения угрозы (DTRA) по контракту HDTRA1-14-C-0116 и центром передового опыта в области геномики (DOD #W911NF-11-1-0136) инфекции.

Materials

GreenLine fiber optic blade size 0 Carefusion 5-5231-00 Macintosh American profile
GreenLight system laryngoscope handle Carefusion 4559GSP
Exel International Safelet I.V. Catheter EXEL INTERNATIONAL 26743
Slip Tip Sterile Syringes 1ml BD 309659
Broad Point Dressing Thumb Forceps Thermo Scientific 76-302
200ul barrier tip GeneseeScientific 24-142
1000ul pipette tip Olympus Plastics 24-173
Dremel 3000-2/28 Rotary tool kit Dremel 3000228
Rodent Intubation Stand Braintree Scientific RIS 200
Isoflurane Butler Schein NDC 11695-6776-2
Rodent anesthesia machine Surgivet VTC302 Classic T3
Rodent Anesthesia chamber Braintree Scientific AB 1

References

  1. Ellis, J., Oyston, P. C. F., Green, M., Titball, R. Tularemia. Clin Microbiol Rev. 15 (4), 631-646 (2002).
  2. Lyons, C. R., Wu, T. H. Animal models of Francisella tularensis infection. Ann N Y Acad Sci. 1105, (2007).
  3. Hutt, J. A., Lovchik, J. A., Dekonenko, A., Hahn, A. C., Wu, T. H. The Natural History of Pneumonic Tularemia in Female Fischer 344 Rats after Inhalational Exposure to Aerosolized Francisella tularensis subspecies tularensis Strain Schu S4. Am J Pathol. 187 (2), 252-267 (2017).
  4. Ray, H. J., et al. The Fischer 344 rat reflects human susceptibility to Francisella pulmonary challenge and provides a new platform for virulence and protection studies. PloS one. 5, e9952 (2010).
  5. Jemski, J. V. Respiratory tularemia: comparison of selected routes of vaccination in Fischer 344 rats. Infect Immun. 34 (3), 766-772 (1981).
  6. Wu, T. H., et al. Vaccination of Fischer 344 rats against pulmonary infections by Francisella tularensis type A strains. Vaccine. 27 (34), 4684-4693 (2009).
  7. Mara-Koosham, G., Hutt, J. A., Lyons, C. R., Wu, T. H. Antibodies contribute to effective vaccination against respiratory infection by type A Francisella tularensis strains. Infect Immun. 79 (4), 1770-1778 (2011).
  8. Oyston, P. C., Sjostedt, A., Titball, R. W. Tularaemia: bioterrorism defence renews interest in Francisella tularensis. Nat Rev Microbiol. 2 (12), 967-978 (2004).
  9. Kingry, L. C., Petersen, J. M. Comparative review of Francisella tularensis and Francisella novicida. Front Cell Infect Microbiol. 4, 35 (2014).
  10. Rohmer, L., et al. Comparison of Francisella tularensis genomes reveals evolutionary events associated with the emergence of human pathogenic strains. Genome Biol. 8 (6), R102 (2007).
  11. Chu, P., et al. Live attenuated Francisella novicida vaccine protects against Francisella tularensis pulmonary challenge in rats and non-human primates. PLoS Pathog. 10 (10), e1004439 (2014).
  12. Signarovitz, A. L., et al. Mucosal Immunization with Live Attenuated Francisella novicida U112ΔiglB Protects against Pulmonary F. tularensis SCHU S4 in the Fischer 344 Rat Model. PloS one. 7 (10), e47639 (2012).
  13. Cunningham, A. L., et al. Enhancement of vaccine efficacy by expression of a TLR5 ligand in the defined live attenuated Francisella tularensis subsp. novicida strain U112DiglB::fljB. Vaccine. 32 (40), 5234-5240 (2014).

Play Video

Cite This Article
Nguyen, J. Q., Zogaj, X., Adelani, A. A., Chu, P., Yu, J., Arulanandam, B. P., Klose, K. E. Intratracheal Inoculation of Fischer 344 Rats with Francisella tularensis. J. Vis. Exp. (127), e56123, doi:10.3791/56123 (2017).

View Video