概要

Assemblaggio di organoidi retinici con microglia

Published: July 26, 2024
doi:

概要

Le microglia sono cellule immunitarie uniche residenti nella retina, che svolgono un ruolo cruciale in varie malattie degenerative della retina. La generazione di un modello di co-coltura di organoidi retinici con microglia può facilitare una migliore comprensione della patogenesi e del progresso dello sviluppo delle malattie retiniche.

Abstract

A causa della limitata accessibilità della retina umana, gli organoidi retinici (RO) sono il miglior modello per lo studio della malattia retinica umana, che potrebbe rivelare il meccanismo dello sviluppo retinico e l’insorgenza della malattia retinica. Le microglia (MG) sono macrofagi residenti unici nella retina e nel sistema nervoso centrale (SNC) e svolgono funzioni immunitarie cruciali. Tuttavia, gli organoidi retinici mancano di microglia poiché la loro origine di differenziazione è il sacco vitellino. La patogenesi specifica della microglia in queste malattie della retina rimane poco chiara; Pertanto, la creazione di un modello di organoide retinico incorporato nella microglia risulta essere necessaria. Qui, abbiamo costruito con successo un modello co-coltivato di organoidi retinici con microglia derivate da cellule staminali umane. In questo articolo, abbiamo differenziato le microglia e poi le abbiamo co-coltivate con organoidi retinici nella fase iniziale. Come incorporazione di cellule immunitarie, questo modello fornisce una piattaforma ottimizzata per la modellazione delle malattie retiniche e lo screening dei farmaci per facilitare la ricerca approfondita sulla patogenesi e il trattamento delle malattie retiniche e correlate al SNC.

Introduction

Essendo la fonte limitata della retina umana, la differenziazione delle cellule staminali umane in organoidi retinici tridimensionali (3D) rappresenta un promettente modello in vitro per la simulazione della retina1. Contiene diversi tipi di cellule nella retina, tra cui fotorecettori, cellule gangliari retiniche, cellule bipolari, cellule di Müller, cellule orizzontali e astrociti2. Questo modello consente l’emulazione e lo studio sia dei meccanismi di sviluppo retinico che della patogenesi delle malattie retiniche. Tuttavia, a causa del metodo di differenziazione direzionale, gli organoidi retinici sono stati derivati dal neuroectoderma3, mancando di molti altri tipi di cellule originate da diversi strati germinali, come le microglia dal sacco vitellino e le cellule perivascolari dal mesoderma 4,5,6.

Attualmente, molte malattie della retina, come la retinite pigmentosa7, il glaucoma8 e il retinoblastoma9, hanno dimostrato di essere strettamente correlate alla microglia all’interno della retina. Tuttavia, a causa della mancanza di adeguati modelli di ricerca, i meccanismi specifici che illustrano la relazione tra la microglia e queste malattie rimangono ancora poco chiari. Mentre i topi sono serviti come modello favorevole per lo studio delle malattie retiniche, studi recenti hanno evidenziato differenze significative tra microglia di topo e umane in termini di durata della vita, tasso di proliferazione e assenza di geni omologhi umani10,11. Questi risultati hanno suggerito che le conclusioni tratte dai modelli murini potrebbero non essere del tutto affidabili, sottolineando l’importanza di costruire organoidi retinici umani contenenti microglia.

Negli ultimi decenni, sono stati sviluppati vari metodi per la differenziazione 3D di organoidi retinici12,13. Per facilitare l’operazione di co-coltura delle microglia all’interno degli organoidi retinici, abbiamo selezionato un metodo di differenziazione che prevede una transizione dalla coltura aderente a quella in sospensione. Questo approccio consente con successo di incorporare le microglia negli organoidi retinici, mantenendoli per almeno 60 giorni14.

Protocol

Questo studio è stato approvato dal Comitato Etico Istituzionale del Beijing Tongren Hospital, Capital Medical University. La linea cellulare H9 di HESC proveniva dal WiCell Research Institute. Preriscaldare il terreno di coltura cellulare a temperatura ambiente (RT) per 30 minuti prima dell’esperimento. 1. Generazione di microglia umane Coltivare le hESC in terreno di coltura con cellule staminali fino a quando la densità cellulare raggiunge l’80%-90%. Seminare al…

Representative Results

La procedura per generare organoidi retinici è descritta nel nostro precedente studio15. Qui, mostriamo i risultati rappresentativi della microglia e della co-coltura di microglia e organoidi retinici. Qui, dimostriamo ogni fase della differenziazione della microglia (Figura 1A). Il giorno 0 rappresenta la fase della coltura delle cellule staminali. Quindi, le cellule staminali sono state digerite e coltivate per la formazione di EB. Nei p…

Discussion

A causa della limitata disponibilità della retina umana, la nostra attuale comprensione delle risposte infiammatorie retiniche proviene quasi da modelli animali. Per superare questa limitazione, gli organoidi retinici sono stati differenziati. Lo sviluppo di modelli di organoidi retinici è stata un’area di ricerca attiva, con l’obiettivo di ricapitolare la complessità della retina umana per la modellazione delle malattie e lo sviluppo terapeutico. Diversi studi hanno riportato la generazione di organoidi retinici da c…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo studio è supportato dalla National Natural Science Foundation of China (82101145) e dalla Beijing Natural Science Foundation (Z200014).

Materials

Acctuase Stemcell Technologies 07920
Advanced DMEM/F12 Thermo 12634-010
Anti-CRX(M02) abnova H00001406-M02 Antibody; dilution as per the manufacturer's instructions
Anti-IBA1 Abcam ab5076 Antibody; dilution as per the manufacturer's instructions
B27 Life Technologies 17105-041
Dispase (1U/mL) Stemcell Technologies 07923
DMEM basic Gibco 10566-016
DMEM/F12 Gibco 10565-042
DPBS Gibco C141905005BT
EDTA Thermo 15575020
F12 Gibco 11765-054
FBS Biological Industry 04-002-1A
Gelatin Sigma G7041-100G Solid
Glutamax Gibco 35050-061
H9 cell line WiCell Research Institute
IL-3 RD Systems  203-IL-050
IL-34 PeproTech 200-34-50UG
KSR Gibco 10828028
Matrix Corning 356231
M-CSF RD Systems  216-MC-500 
MEM Non-essential Amino Acid Solution Sigma M7145
N2 Life Technologies 17502-048
Neurobasal Gibco 21103-049
Pen/strep Gibco 15140-122
Stem cell medium  Stemcell Technologies 5990
Taurine Sigma T-8691-25G
X-ViVO LONZA 04-418Q
Y27632 Selleck S1049
β-mercaptoethanol Life Technologies 21985-023

参考文献

  1. Cowan, C. S., et al. Cell types of the human retina and its organoids at single-cell resolution. Cell. 182 (6), 1623-1640.e34 (2020).
  2. Zhang, X., Jin, Z. B. Directed induction of retinal organoids from human pluripotent stem cells. J Vis Exp. (170), e62298 (2021).
  3. Eiraku, M., et al. Self-organizing optic-cup morphogenesis in three-dimensional culture. Nature. 472 (7341), 51-56 (2011).
  4. Ginhoux, F., et al. Fate mapping analysis reveals that adult microglia derive from primitive macrophages. Science. 330 (6005), 841-845 (2010).
  5. Kierdorf, K., et al. Microglia emerge from erythromyeloid precursors via pu.1- and irf8-dependent pathways. Nat Neurosci. 16 (3), 273-280 (2013).
  6. Schulz, C., et al. A lineage of myeloid cells independent of myb and hematopoietic stem cells. Science. 336 (6077), 86-90 (2012).
  7. O’koren, E. G., et al. Microglial function is distinct in different anatomical locations during retinal homeostasis and degeneration. Immunity. 50 (3), 723-737.e7 (2019).
  8. Margeta, M. A., et al. Apolipoprotein E4 impairs the response of neurodegenerative retinal microglia and prevents neuronal loss in glaucoma. Immunity. 55 (9), 1627-1644.e7 (2022).
  9. Xu, J., et al. Enhanced innate responses in microglia derived from retinoblastoma patient-specific IPSCs. Glia. 72 (5), 872-884 (2024).
  10. Gosselin, D., et al. An environment-dependent transcriptional network specifies human microglia identity. Science. 356 (6344), eaal3222 (2017).
  11. Galatro, T. F., et al. Transcriptomic analysis of purified human cortical microglia reveals age-associated changes. Nat Neurosci. 20 (8), 1162-1171 (2017).
  12. Nakano, T., et al. Self-formation of optic cups and storable stratified neural retina from human ESCs. Cell Stem Cell. 10 (6), 771-785 (2012).
  13. Kim, S., et al. transcriptome profiling, and functional validation of cone-rich human retinal organoids. Proc Natl Acad Sci U S A. 116 (22), 10824-10833 (2019).
  14. Gao, M. L., et al. Functional microglia derived from human pluripotent stem cells empower retinal organ. Sci China Life Sci. 65 (6), 1057-1071 (2022).
  15. Zhang, X., Jin, Z. B. Reconstruct human retinoblastoma in vitro. J Vis Exp. (188), e62629 (2022).
  16. Park, D. S., et al. IPS-cell-derived microglia promote brain organoid maturation via cholesterol transfer. Nature. 623 (7986), 397-405 (2023).
  17. Usui-Ouchi, A., et al. Integrating human ipsc-derived macrophage progenitors into retinal organoids to generate a mature retinal microglial niche. Glia. 71 (10), 2372-2382 (2023).
  18. Chichagova, V., et al. Incorporating microglia-like cells in human induced pluripotent stem cell-derived retinal organoids. J Cell Mol Med. 27 (3), 435-445 (2023).

Play Video

記事を引用
Xu, J., Yu, S., Jin, Z. Assembling Retinal Organoids with Microglia. J. Vis. Exp. (209), e67016, doi:10.3791/67016 (2024).

View Video