概要

Modèle d’intestin sur puce immunocompétent pour l’analyse des réponses immunitaires de la muqueuse intestinale

Published: May 24, 2024
doi:

概要

Notre protocole détaillé décrit la création et l’utilisation du modèle avancé d’intestin sur puce, qui simule la muqueuse intestinale humaine avec des structures 3D et divers types de cellules, permettant une analyse approfondie des réponses immunitaires et des fonctions cellulaires en réponse à la colonisation microbienne.

Abstract

Un modèle avancé d’intestin sur puce recréant des structures épithéliales organotypiques 3D semblables à des villosités et à des cryptes a été développé. Le modèle immunocompétent comprend des cellules endothéliales de la veine ombilicale humaine (HUVEC), des cellules épithéliales intestinales Caco-2, des macrophages résidant dans les tissus et des cellules dendritiques, qui s’auto-organisent au sein du tissu, reflétant les caractéristiques de la muqueuse intestinale humaine. Un aspect unique de cette plateforme est sa capacité à intégrer les cellules immunitaires primaires humaines circulantes, améliorant ainsi la pertinence physiologique. Le modèle est conçu pour étudier la réponse du système immunitaire intestinal à la colonisation et à l’infection bactériennes et fongiques. En raison de la taille de sa cavité élargie, le modèle offre diverses lectures fonctionnelles telles que les tests de perméation, la libération de cytokines et l’infiltration des cellules immunitaires, et est compatible avec la mesure par immunofluorescence des structures 3D formées par la couche de cellules épithéliales. Il fournit ainsi des informations complètes sur la différenciation et la fonction cellulaires. La plateforme d’intestin sur puce a démontré son potentiel dans l’élucidation d’interactions complexes entre les substituts d’un microbiote vivant et le tissu de l’hôte humain au sein d’une plateforme de biopuce perfusée microphysiologique.

Introduction

Les systèmes d’organes sur puce (OoC) représentent une technique émergente de culture cellulaire 3D capable de combler le fossé entre la culture cellulaire 2D conventionnelle et les modèles animaux. Les plateformes OoC se composent généralement d’un ou plusieurs compartiments contenant des cellules spécifiques aux tissus cultivées sur une large gamme d’échafaudages tels que des membranes ou des hydrogels1. Les modèles sont capables d’imiter une ou plusieurs fonctions organotypiques définies. Les pompes permettent la perfusion microfluidique continue de milieux de culture cellulaire pour l’élimination des déchets cellulaires, l’alimentation en facteurs de nutrition et de croissance pour une meilleure différenciation cellulaire et la recréation de conditions in vivo essentielles. Grâce à l’intégration des cellules immunitaires, les systèmes OoC peuvent imiter la réponse immunitaire humaine in vitro2. À ce jour, un large éventail d’organes et d’unités fonctionnelles ont été présentés1. Ces systèmes comprennent des modèles du système vasculaire3, du poumon4, du foie 2,5 et de l’intestin6 qui peuvent être facilités pour les tests de dépistage de drogues 5,7 et les études d’infection 6,8.

Nous présentons ici un modèle d’intestin humain sur puce intégrant des cellules épithéliales humaines formant une topographie 3D organotypique de structures ressemblant à des villosités et à des cryptes combinées à une muqueuse endothéliale et à des macrophages résidant dans les tissus. Le modèle est cultivé dans une biopuce perfusée de manière microfluidique sous la forme d’une lame microscopique. Chaque biopuce se compose de deux cavités microfluidiques distinctes. Chaque cavité est divisée par une membrane poreuse en polyéthylène téréphtalate (PET) en une chambre supérieure et une chambre inférieure. La membrane elle-même sert également d’échafaudage pour que les cellules se développent de chaque côté. Les pores de la membrane permettent la diaphonie cellulaire et la migration cellulaire entre les couches cellulaires. Chaque chambre est accessible par deux orifices femelles de la taille d’un Luer Lock. En option, un orifice supplémentaire de la taille d’un mini-luer peut permettre d’accéder à la chambre supérieure ou inférieure (Figure 1).

La plate-forme OoC offre un certain nombre de lectures qui peuvent être obtenues à partir d’une seule expérience. L’intestin sur puce est conçu pour combiner la culture cellulaire 3D perfusée, l’analyse des effluents et la microscopie à fluorescence pour évaluer l’expression des marqueurs cellulaires, les taux de métabolisation, la réponse immunitaire, la colonisation et l’infection microbiennes, et la fonction barrière 3,6,8. Le modèle comprend des cellules immunitaires résidentes des tissus et un contact direct de micro-organismes vivants avec le tissu hôte, ce qui est un avantage par rapport aux autres modèles publiés9. De plus, les cellules épithéliales s’auto-organisent en structures tridimensionnelles qui fournissent une interface physiologiquement pertinente pour la colonisation avec un microbiote vivant6.

Protocol

Ce protocole exige l’accès à ~20 ml de sang frais par biopuce provenant de donneurs sains afin d’isoler les monocytes humains primaires. Tous les donateurs ont donné leur consentement écrit et éclairé pour participer à cette étude, qui a été approuvée par le comité d’éthique de l’hôpital universitaire d’Iéna (numéro d’autorisation 2018-1052-BO). Pour plus de détails sur les matériaux, reportez-vous à la Table des matériaux. Pour plus de détails sur la composition de toute…

Representative Results

Ces résultats représentatifs montrent les couches tissulaires distinctes du modèle d’intestin sur puce. Ils sont colorés par immunofluorescence comme décrit dans la section 11 du protocole. Les images ont été prises à l’aide d’un microscope à épifluorescence ou à fluorescence confocale sous forme d’empilements z et traitées selon une projection orthogonale. Voir la table des matériaux pour plus de détails sur la configuration microscopique et le logiciel. La fig…

Discussion

Le protocole présenté détaille les étapes nécessaires à la génération d’un modèle d’intestin sur puce immunocompétent. Nous avons décrit des techniques spécifiques et des méthodes de lecture possibles telles que la microscopie d’immunofluorescence, l’analyse des cytokines et des métabolites, la cytométrie en flux, l’analyse des protéines et de la génétique, et la mesure de la perméabilité.

Le modèle décrit se compose de HUVEC primaires, de macrophages dérivés …

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Le travail a été soutenu financièrement par le Centre de recherche collaborative PolyTarget 1278 (numéro de projet 316213987) à V.D.W. et A.S.M., A.F. et A.S.M. reconnaissent en outre le soutien financier du pôle d’excellence « Balance of the Microverse » dans le cadre de la stratégie d’excellence de l’Allemagne – EXC 2051 – Project-ID 690 390713860. Nous tenons à remercier Astrid Tannert et le Laboratoire de biophotonique et d’imagerie d’Iéna (JBIL) de nous avoir donné accès à leur microscope confocal à balayage laser ZEISS LSM980. Les figures 1C et 2 ont été créées avec Biorender.com.

Materials

96-well plate black, clear bottom Thermo Fisher 10000631 Consumables
Acetic acid Roth 3738.4 Chemicals
Alexa Fluor 488 AffiniPure, donkey, anti-mouse IgG (H+L) Jackson Immuno Research 715-545-150 Secondary Antibody Vascular Staining and Epithelial Staining
Alexa Fluor 647 AffiniPure, donkey, anti-rabbit IgG (H+L) Jackson Immuno Research 711-605-152 Secondary Antibody Epithelial Staining
Alexa Fluor 647, donkey, anti-rabbit IgG (H+L) Thermo Fisher Scientific, Invitrogen A31573 Secondary Antibody Vascular Staining
Axiocam ERc5s camera Zeiss 426540-9901-000 Technical equipment
Basal Medium MV, phenol red-free Promocell C-22225 Cell culture consumables
Biochip Dynamic 42 BC002 Microfluidic consumables
BSA fraction V Gibco 15260-037 Cell culture consumables
C2BBe1 (clone of Caco-2) ATCC CRL-2102 Epithelial Cell Source
Chloroform Sigma C2432 Chemicals
CO2 Incubator Heracell 150i Technical equipment
Collagen IV from human placenta Sigma-Aldrich C5533 Cell culture consumables
Coverslips (24 x 40 mm; #1.5) Menzel-Gläser 15747592 Consumables
Cy3 AffiniPure, donkey, anti-goat IgG (H+L) Jackson Immuno Research 705-165-147 Secondary Antibody Vascular Staining
Cy3 AffiniPure, donkey, anti-rat IgG (H+L) Jackson Immuno Research 712-165-150 Secondary Antibody Epithelial Staining
DAPI (4',6-Diamidin-2-phenylindol, Dilactate) Thermo Fisher Scientific, Invitrogen D3571 Vascular and Epithelial Staining
Descosept PUR Dr.Schuhmacher 00-323-100 Cell culture consumables
DMEM high glucose Gibco 41965-062 Cell culture consumables
DMEM high glucose w/o phenol red Gibco 31053028 Cell culture consumables
DPBS (-/-) Gibco 14190-169 Cell culture consumables
DPBS (+/+) Gibco 14040-133 Cell culture consumables
EDTA solution Invitrogen 15575-038 Cell culture consumables
Endothelial Cell Growth Medium Promocell C-22020 Cell culture consumables
Endothelial Cell Growth Medium supplement mix Promocell C-39225 Cell culture consumables
Ethanol 96%, undenatured Nordbrand-Nordhausen 410 Chemicals
Fetal bovine Serum invitrogen 10270106 Cell culture consumables
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran (3-5 kDa) Sigma Aldrich FD4-100MG Chemicals
Fluorescent Mounting Medium Dako S3023 Chemicals
Gentamycin (10mg/mL) Sigma Aldrich G1272 Cell culture consumables
GlutaMAX Supplement (100x) Gibco 35050061 Cell culture consumables
Histopaque Sigma-Aldrich 10771 Cell culture consumables
Hoechst (bisBenzimid) H33342 Sigma-Aldrich 14533 Epithelial Staining
Holotransferrin (5mg/mL) Transferrin, Holo, Human Plasma Millipore 616397 Cell culture consumables
Human recombinant GM-CSF Peprotech 300-30 Cell culture consumables
Human recombinant M-CSF Peprotech 300-25 Cell culture consumables
Illumination device Zeiss HXP 120 C Fluorescence Microscope Setup
Laser Scanning Microscope Zeiss CLSM980 Fluorescence Microscope Setup
Lidocain hydrochloride Sigma-Aldrich L5647 Cell culture consumables
Lipopolysaccharide (LPS) Sigma L2630 Cell culture consumables
Loftex Wipes Loftex 1250115 Consumables
Low attachment tubes (PS, 5 mL) Falcon 352052 Consumables
Luer adapter for the top cap (M) Mo Bi Tec M3003 Microfluidic consumables
Male mini luer plugs, row of four,PP, opaque Microfluidic chipshop 09-0556-0336-09 Microfluidic consumables
MEM Non-Essential Amino Acids Solution Gibco 11140 Cell culture consumables
Methanol Roth 8388.2 Chemicals
Microscope Zeiss Axio Observer 5 Fluorescence Microscope Setup
Microscope slides Menzel MZ-0002 Consumables
Monoclonal, mouse, anti-human CD68 Antibody (KP1) Thermo Fisher Scientific, Invitrogen 14-0688-82 Primary Antibody Vascular Staining
Monoclonal, rat, anti-human E-Cadherin antibody (DECMA-1) Sigma-Aldrich, Millipore MABT26 Primary Antibody Epithelial Staining
Multiskan Go plate reader Thermo Fisher 51119300 Technical equipment
Normal donkey serum Biozol LIN-END9010-10 Chemicals
Optical Sectioning Zeiss ApoTome Fluorescence Microscope Setup
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140-122 Cell culture consumables
Plugs Cole Parmer GZ-45555-56 Microfluidic consumables
Polyclonal, goat, anti-human VE-Cadherin Antibody R&D Systems AF938 Primary Antibody Vascular Staining
Polyclonal, rabbit, anti-human Von Willebrand Factor Antibody Dako A0082 Primary Antibody Vascular Staining
Polyclonal, rabbit, anti-human ZO-1 antibody Thermo Fisher Scientific, Invitrogen 61-7300 Primary Antibody Epithelial Staining
Power Supply Microscope Zeiss Eplax Vp232 Fluorescence Microscope Setup
Primovert microscope Zeiss 415510-1101-000 Technical equipment
Reglo ICC peristaltic pump Ismatec ISM4412 Technical equipment
SAHA (Vorinostat) Sigma Aldrich SML0061-25MG Chemicals
Saponin Fluka 47036 Chemicals
S-Monovette, 7.5 mL Z-Gel Sarstedt 01.1602 Consumables
S-Monovette, 9.0 mL K3E Sarstedt 02.1066.001 Consumables
Sodium Pyruvate Gibco 11360-088 Cell culture consumables
Tank 4.5 mL ChipShop 10000079 Microfluidic consumables
Trypane blue stain 0.4% Invitrogen T10282 Cell culture consumables
Trypsin Gibco 11538876 Cell culture consumables
Tubing Dynamic 42 ST001 Microfluidic consumables
Tweezers (Präzisionspinzette DUMONT abgewinkelt Inox08, 5/45, 0,06 mm) Roth K343.1 Consumables
Wheat Germ Agglutinin (WGA) Thermo Fisher Scientific, Invitrogen W32464 Epithelial Staining
X-VIVO 15 Lonza BE02-060F Cell culture consumables, Hematopoietic cell medium
Zellkultur Multiwell Platten, 24 Well, sterile Greiner Bio-One 662 160 Consumables
Zellkultur Multiwell Platten, 6 Well, sterile Greiner Bio-One 657 160 Consumables
Zen Blue Software Zeiss Version 3.7 Microscopy Software

参考文献

  1. Alonso-Roman, R., et al. Organ-on-chip models for infectious disease research. Nat Microbiol. 9 (4), 891-904 (2024).
  2. Fahrner, R., Groger, M., Settmacher, U., Mosig, A. S. Functional integration of natural killer cells in a microfluidically perfused liver on-a-chip model. BMC Res Notes. 16 (1), 285 (2023).
  3. Raasch, M., et al. Microfluidically supported biochip design for culture of endothelial cell layers with improved perfusion conditions. Biofabrication. 7 (1), 015013 (2015).
  4. Deinhardt-Emmer, S., et al. Co-infection with Staphylococcus aureus after primary influenza virus infection leads to damage of the endothelium in a human alveolus-on-a-chip model. Biofabrication. 12 (2), 025012 (2020).
  5. Kaden, T., et al. Generation & characterization of expandable human liver sinusoidal endothelial cells and their application to assess hepatotoxicity in an advanced in vitro liver model. Toxicology. 483, 153374 (2023).
  6. Maurer, M., et al. A three-dimensional immunocompetent intestine-on-chip model as in vitro platform for functional and microbial interaction studies. Biomaterials. 220, 119396 (2019).
  7. Hoang, T. N. M., et al. Invasive aspergillosis-on-chip: A quantitative treatment study of human aspergillus fumigatus infection. Biomaterials. 283, 121420 (2022).
  8. Kaden, T., et al. Modeling of intravenous caspofungin administration using an intestine-on-chip reveals altered Candida albicans microcolonies and pathogenicity. Biomaterials. 307, 122525 (2024).
  9. Shah, P., et al. A microfluidics-based in vitro model of the gastrointestinal human-microbe interface. Nat Commun. 7, 11535 (2016).
  10. Jaffe, E. A., Nachman, R. L., Becker, C. G., Minick, C. R. Culture of human endothelial cells derived from umbilical veins. Identification by morphologic and immunologic criteria. J Clin Invest. 52 (11), 2745-2756 (1973).
  11. Mosig, S., et al. Different functions of monocyte subsets in familial hypercholesterolemia: Potential function of cd14+ cd16+ monocytes in detoxification of oxidized ldl. FASEB J. 23 (3), 866-874 (2009).
  12. Peterson, M., Mooseker, M. Characterization of the enterocyte-like brush border cytoskeieton of the c2bbe clones of the human intestinal cell line, caco-2. J Cell Sci. 102, 581-600 (1992).
  13. Shin, W., Hinojosa, C. D., Ingber, D. E., Kim, H. J. Human intestinal morphogenesis controlled by transepithelial morphogen gradient and flow-dependent physical cues in a microengineered gut-on-a-chip. iScience. 15, 391-406 (2019).
  14. Kim, H. J., Ingber, D. E. Gut-on-a-chip microenvironment induces human intestinal cells to undergo villus differentiation. Integr Biol (Camb). 5 (9), 1130-1140 (2013).
  15. Kim, H. J., Huh, D., Hamilton, G., Ingber, D. E. Human gut-on-a-chip inhabited by microbial flora that experiences intestinal peristalsis-like motions and flow. Lab Chip. 12 (12), 2165-2174 (2012).
  16. Karra, N., Fernandes, J., James, J., Swindle, E. J., Morgan, H. The effect of membrane properties on cell growth in an ‘airway barrier on a chip’. Organs-on-a-Chip. 5, 10025 (2023).

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記事を引用
Feile, A., Wegner, V. D., Raasch, M., Mosig, A. S. Immunocompetent Intestine-on-Chip Model for Analyzing Gut Mucosal Immune Responses. J. Vis. Exp. (207), e66603, doi:10.3791/66603 (2024).

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