概要

שיטת הנפקה צואה פשוטה לאבחון נמטודות זואונוטיות בתנאי שדה ומעבדה

Published: December 15, 2023
doi:

概要

עבודה זו מתארת את השימוש בשיטת ציפה לזיהוי Toxocara canis ו – Ancylostoma spp. שזוהו בדגימות צואה שנאספו מכלבים במקסיקו בין השנים 2017 ל -2021 בתנאי שדה.

Abstract

אבחון של טפילים כלבים בעלי פוטנציאל זואונוטי כגון Toxocara canis ו – Ancylostoma caninum בתנאי שדה הוא בדרך כלל קשה בשל גישה מוגבלת למעבדה באזורים כפריים ופרבריים במקסיקו. מחקר זה נועד לזהות T. canis ו – Ancylostoma spp. בדגימות צואה שנאספו מכלבים במקסיקו בין השנים 2017 ל -2021 בתנאי שדה. חישוב גודל המדגם הביא לגיוס יעד של 534 כלבים ברחבי הארץ.

הדגימות נאספו ישירות מפי הטבעת או מהקרקע לאחר עשיית צרכים. הדגימות אוחסנו בשקיות ניילון בודדות, אטומות היטב, בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס. תמיסה רוויה של נתרן כלורי (כוח משיכה סגולי [SpG] 1.20) הוכנה הן בתנאי שדה והן בתנאי מעבדה. בתוך 3 ימים של איסוף, 2-4 גרם של צואה נבדקו עבור טפילים באמצעות שיטת הנפקה על ידי השעיית כל דגימת צואה בתמיסת מלח. הצואה עורבבה עם תמיסת ההנפקה ונמחצה באמצעות כף מתכת.

לאחר שהושגה עקביות אחידה, דגימת הצואה נמזגה לכוס פלסטיק חדשה באמצעות מסננת והותרה לשבת במשך 10-15 דקות. שלוש טיפות מראש התערובת נאספו באמצעות לולאת חיסון מעוקרת. המגלשות הונחו על המיקרוסקופ וטפילים זוהו על ידי פרזיטולוגים מיומנים. דגימות צואה מ-1,055 כלבים נבדקו מיקרוסקופית. מספר הדגימות החיוביות עבור Ancylostoma spp. היה 833 (78.95% תדירות) ו 222 (21.04%) עבור T. canis. ממצאים אלה ממחישים את החשיבות של זיהוי הלמינת’ס זואונוטי בכלבים החיים באזורים עירוניים וכפריים במקסיקו באמצעות טכניקה קופופרזיטוסקופית במעבדה ובתנאי שדה.

Introduction

טפילים במערכת העיכול הם אחת הבעיות הבריאותיות הנפוצות ביותר המשפיעות על כלבים1. הערכות מצביעות על כך שישנם ~700 מיליון כלבים מבויתים ברחבי העולם, וכ -175 מיליון עשויים להיות מסווגים כמשוטטים חופשיים2. יותר מ-60 מיני טפילים משותפים לכלבים ולבני אדם, מה שמרמז על כך שכלבים יכולים להיות מקור להדבקה של בני אדם בטפילים אלה3. Toxocara canis ו– Ancylostoma caninum הם שני מינים טפיליים שמדביקים כלבים, ובטעות, פונדקאים אנושיים. נכון לעכשיו, ישנם מספר מחקרים על המקומות שבהם הלמינת’ס אלה מסוגלים לשרוד ולהתרבות במקסיקו. שכיחות הטוקסוקרה בכלבים נעה בין 0% ליותר מ-87% ברחבי ארצות הברית, מקסיקו, מרכז אמריקה והקריביים4. Toxocara canis ו– Ancylostoma spp., כמו גם מינים טפיליים אחרים בכלבים, דווחו בעבר במקסיקו 5,6,7,8,9,10,11,12,13 (טבלה 1 ).

מינים טפיליים אזור שכיחות (%) הפניה
Ancylostoma caninum קרטרו 42.90 5
טבסקו 15.90 6
קמפצ’ה 35.7 – 42.9 7
יוקטן 73.8 8
באבסיה מורלוס 13.60 9
וראקרוס 10.00
ביציות קוצידיאליות יוקטן 2.30 8
קטנוצפלידים מורלוס 30.3 10
דיפילידיום קנינום יוקטן 2.30 8
דירופילריה יוקטן 7.0 – 8.3 11
ג’יארדיה טבסקו 3.00 6
יוקטן 18.8 8
לישמניה צ’יאפס 19.00 12
תולעי סרט באחה קליפורניה 6.79 13
טוקסוקרה קאניס קרטרו 22.10 5
יוקטן 6.20 8
טריכוריס וולפיס יוקטן 25.40 8
טריפנוזומה חליסקו 8.10 9
קמפצ’ה 7.60
צ’יאפס 4.5 – 42.8
קינטנה רו 20.1 – 21.3
טולוקה 17.50
יוקטן 9.8 – 34

טבלה 1: שכיחות אזורית (%) של טפילי כלבים במקסיקו בין השנים 2001 ל-2020. ממצאים מחקירות קודמות שנערכו בין השנים 2001 ל-2020 אפשרו זיהוי של תפוצת טפילי כלבים במספר סביבות עירוניות וכפריות במקסיקו. מחקרים אלה מספקים הבנה מעמיקה של אלמנטים אפידמיולוגיים התורמים להתמדה של טפילי כלבים במערכות אקולוגיות שונות, ותורמים להערכה מקיפה של ההשפעה הזואונוטית של כמה מיני טפילים.

שלבי מחזור החיים של טפילי מעיים, כגון ביצים, ציסטות, ביציות או זחלים ניתן למצוא בדגימות צואה. לכן, בדיקה של חומר צואה מספק מידע רב ערך על טפילים של חיה. הצורך בשיטה לאיתור ביצי Ancylostomidae בצואת אדם הוביל לשימוש בכתם צואה פשוט בשנת 1878, ששימש במשך שנים רבות לאיתור טפילים במערכת העיכול אך נחשב לא רגיש במיוחד. לפיכך, התעורר הצורך לפתח שיטות קופרומיקרוסקופיות טובות יותר14. יותר מ-100 שנים חלפו מאז תוארה לראשונה טכניקת ההנפקה לשחזור וספירת ביצי טפילים בדגימות צואה15. מאז, מספר שיטות ווריאנטים של טכניקת ההנפקה נחשבו תקן לאיתור טפילים מסוימים אצל המארחים שלהם.

לדוגמה, ליין תיאר שיטה בשנת 1924 הכוללת את טכניקת ההנפקה הצנטריפוגלית הישירה, המשלבת צנטריפוגה ואחריה הצפת המשקעים בתמיסת נתרן כלורי רוויה עם SpG 1.2 ב 1 גרם (ליין) או 10 גרם (שינוי של סטול). טכניקת ההנפקה שונתה לאחר מכן על ידי שימוש בתמיסות עם SpG14 שונה. בשנת 1939 דיווחו גורדון וויטלוק על חסרונות הטכניקה של סטול עקב התערבות של דטריטוס בהדמיה של ביצי טפילים ופיתחו את השיטה הכמותית הידועה בשם מקמאסטר16. בשנת 1979 הראו או’גריידי וסלוקומב כי הכובד הסגולי של התמיסה, התזמון וגדלי הרשת של המסננות משפיעים על דיוק זיהוי הביצים באמצעות טכניקת ההנפקה17. במהלך העשורים האחרונים, מכיוון שנעשו מספר שינויים בטכניקת ההנפקה, יש צורך דחוף בסטנדרטיזציה של שיטות ההנפקה. כיום, זיהוי של זיהומי הלמינת’ס כלביים בהקשר של מניעת טפילים זואונוטיים נדרש ליישם טיפולים אנטלמינטיים מתאימים כדי להגביל זיהום סביבתי עם שלבים זיהומיים של נמטודות זואונוטיות18.

בין השיטות האיכותיות, טכניקת הנפקת הצואה נמצאת בשימוש נרחב ומקובל מכיוון שהיא אינה דורשת ציוד רב, היא פשוטה, זולה וניתנת לשחזור; עם זאת, יש לו חיסרון גדול בכך שהוא חסר רגישות כאשר עוצמת הזיהום נמוכה19. היכולת לחשוף את נוכחותם של מספר רב יותר של אלמנטים טפיליים כגון ביצים, ביציות, ציסטות או זחלי נמטודה נקבעת בדרך כלל על ידי צפיפות התמיסה20.

דיווחים קודמים השוו טכניקות קו-פרזיטולוגיות לזיהוי ביצי נמטודות כלבים. לגבי זיהוי של פרוטוזואה תנועתית, מריחות צואה ישירות משמשים; ואילו שיטות שיקוע שימושיות לאבחון ביצים כבדות של טפילים כגון טרמטודות21. אחת מבדיקות האבחון מבוססות השטח הנפוצות ביותר היא שיטת מריחת הצואה. עם זאת, ניתן לייחס את רמת הרגישות הנמוכה של טכניקה זו לעובדה שהיא מכילה פסולת המפריעה לאיתור ביצי טפילים. על ידי שילוב שלב מסננת יחד עם פתרונות המספקים את ה- SpG הנכון, שיטת ההנפקה מציעה התבוננות ברורה יותר ופחות עמוסה בביצי אסקרידים ותולעי קרס. זה מוביל לתהליך מדויק ויעיל יותר לסינון מיקרוסקופי22. כמו כן, טכניקות הנפקה פשוטות וצנטריפוגליות ישירות משמשות בדרך כלל לשחזור ביצי טפילים וביציות14. שיטות ההנפקה הקלאסיות יכולות להיחשב איכותיות או כמותיות בהתאם לשימוש בתא ספירה כגון שיטת מקמאסטר15. עם זאת, מכיוון שטכניקת ההנפקה היא בעלת רגישות נמוכה ומתמקדת באיתור טפילים בתקופת הפטנט, אין לראות בתוצאות שליליות חד משמעיות. עם זאת, הדיוק לא רק תלוי בהליך השימור של דגימות צואה או SpG של פתרונות ציפה, אלא גם תלוי במיומנות טכנית וניסיון בביצוע בדיקות צואה של המשתמש.

כתוצאה מכך, שיטות אחרות נחקרו לאיתור טפילים כלבים בצואה. ידוע כי אחת הגישות הנפוצות ביותר לאבחון זיהומי הלמינת’ס במעיים בכלבים היא טכניקת FLOTAC, שיטה רב-ערכית, רגישה ומדויקת המניבה תוצאות מדויקות ואמינות לאבחון A. caninum בכלבים בהשוואה לפרוטוקול הנפקה בצינור וטכניקת מקמאסטר19, 23. שיטות שיקוע שימושיות לשחזור ביצי פלוק, ביצי נמטודות עובריות ורוב ביצי תולעי הסרט, שלא ניתן לשחזר על פני תמיסת הנפקה מכיוון שמבנים אלה אינם צפים24. שיטה אחת שהוכחה כעדיפה על טכניקות הנפקה/שיקוע היא שיטת ההנפקה הצנטריפוגלית הכפולה המותאמת, שכן היא מאפשרת איתור ביצי צסטודה בצואה, גוזלת פחות זמן, מפרידה ביצי אנופלוצפלה מפסולת צואה ומפחיתה התגבשות25. יתר על כן, טכניקה זו שימשה בהצלחה כדי לזהות ביצים ascarid עם רגישות גבוהה26. עם זאת, חלק מהטכניקות והשיטות הצנטריפוגליות הנ”ל כגון Ovassay, בניגוד לפרוטוקול ההנפקה שאנו מציעים במחקר זה, דורשות שימור דגימות בריאגנטים כגון פורמלין, ערכות מסחריות, עיבוד דגימות בתנאי מעבדה, ושימוש בריאגנטים כגון אבץ גופרתי27 שהם יקרים ודורשים הליכי סילוק מיוחדים כדי למנוע רעילות סביבתית.

השימוש בטכניקות המגבירות את הרגישות של שיטת ההנפקה על ידי הוספת פתרונות עם SpG גבוה מועדף לאחרונה. עם זאת, יש לקחת בחשבון כי החיסרון של פתרונות אלה הוא הגידול בפסולת בהכנה הסופית ומכאן, גילוי לא מדויק של ביצים טפיל. בנוסף, הזמינות המסחרית של חומרים, ריאגנטים, עלות, בעיות השפעה על הסביבה וקושי בשימוש בשיטות צנטריפוגליות משפיעים על בחירת טכניקת הנפקה14, שיכולה להיות מאתגרת בתנאי שטח בניגוד לפרוטוקול שאנו מציגים בעבודה זו. להכנת תמיסות ההנפקה במלח שולחן יש יתרון על פני ניצול הסוכר מכיוון שבתנאי שדה סוכר מושך חרקים כמו צרעות ודבורים והתכשירים הופכים לדביקים. יתר על כן, פתרונות כגון פנול, אשר מתווסף לתמיסות סוכר כדי למנוע דביקות, או ZnSO4מורכבים להשלכה כראוי על פי הנחיות הגנת הסביבה ולא ניתן להיפטר מהם בשטח; בניגוד לתמיסת מלח שולחן.

מטרת כתב היד היא להדגים את השלבים לגילוי ביציות T. canis ו – Ancylostoma spp. בדגימות צואה תוך התאמה של טכניקת ההנפקה הפשוטה בתנאי שדה ומעבדה. בהתאם לפרוטוקול המתואר כאן ובאמצעות מיקרוסקופ עם סוללת גיבוי, אבחון של טפילים זואונוטיים כלביים אלה באזורים כפריים ופרבריים אפשרי כאשר אין ציוד מעבדה ותשתיות זמינים. שיטת ההנפקה הפשוטה המתוארת בעבודה זו יכולה לספק תוצאות מהירות והיא טכניקה לא פולשנית וחסכונית לבדיקות סקר שגרתיות.

Protocol

השימוש והטיפול בכלבים אושר על ידי האוניברסיטה הלאומית והאוטונומית של מקסיקו. 1. איסוף דגימות צואה הערה: יש לטפל בכלב בעזרת וטרינר או הבעלים של החיה. במקרה של כלבי פרא (איור 1A) או חיות עצבניות, אספו דגימות מהקרקע מיד לאחר עשיית הצר?…

Representative Results

בעבודה זו מתוארים הליכי איסוף וקופרופרסיטוסקופיים לזיהוי T. canis ו – Ancylostoma spp. הרציונל מאחורי ההתאמה של שיטת הציפה הצואה הפשוטה לגילוי ביצי הלמינת’ס של כלבים הוא שטכניקה זו חסכונית מכיוון שהפתרונות, הציוד והחומרים זולים. לפיכך, לשיטה יכולת טיפול גבוהה בדגימות מכיוון שניתן לעבד דגי?…

Discussion

נמטודות כגון T. canis ו – Ancylostoma spp. יכולות לאכלס את המעי הדק של כלבים ויש להן פוטנציאל להיות מועברות לבני אדם. סימנים קליניים הנגרמים על ידי T. canis הם חמורים אצל כלבים צעירים, ומתבטאים בגדילה לקויה, בעיות נשימה או נגעים במערכת העיכול28. אצל כלבים בוגרים, הזיהום נוטה בדרך…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים אסירי תודה ל-Dirección General de Asuntos del Personal Académico של האוניברסיטה הלאומית האוטונומית של מקסיקו על אספקת המשאבים הכספיים באמצעות מענק PAPIIT IN218720 ולד”ר קלאודיה מנדוזה על מתן ההארכה המבוקשת. עבודה זו מוקדשת לניקול המקסימה שלי, שנפטרה בשנת 2019. אתה תמיד תחיה בליבי.

Materials

3 x 1.2 V AA rechargeable batteries Energizer Sold in retail stores
Bunsen burner Viresa FER-M224
Disposable 12-oz glass cup Uline Mexico S-22275 Sold in retail stores
Glass slides Velab, Mexico VEP-P20
Inoculating loop VelaQuin, Mexico CRM-5010PH 
Light Microscope VelaQuin, Mexico VE-B2
Lighter Bic J25 Sold in retail stores
One plastic cup (12 oz) Amazon ASIN B08C2CRHSH Can be any kitchen plastic reuseable cup
Plastic cups  (size of a dice or urine sample cup) diameter 5.5 cm and height 8.5 cm, two cups Amazon Layhit-Containers-ZYHD192919 Can be any kitchen plastic reuseable cup
Plastic strainer 10 cm Ecko ASIN B00TUAAVWI Can be any kitchen plastic strainer
Soda bottle Coca-Cola 1-liter Sold in retail stores
Spoon Amazon Basics ASIN B00TUAAVWI Can be any kitchen spoon
Table salt La Fina Sold in retail stores

参考文献

  1. Duncan, K. T., Koons, N. R., Litherland, M. A., Little, S. E., Nagamori, Y. Prevalence of intestinal parasites in fecal samples and estimation of parasite contamination from dog parks in central Oklahoma. Veterinary Parasitology Regional Studies and Reports. 19, 100362 (2020).
  2. Kisiel, L. M., et al. Owned dog ecology and demography in Villa de Tezontepec, Hidalgo, Mexico. Preventive Veterinary Medicine. 135, 37-46 (2016).
  3. Lyons, M. A., Malhotra, R., Thompson, C. W. Investigating the free-roaming dog population and gastrointestinal parasite diversity in Tulúm, México. PLoS One. 17 (10), e0276880 (2022).
  4. Dantas-Torres, F., et al. TROCCAP recommendations for the diagnosis, prevention and treatment of parasitic infections in dogs and cats in the tropics. Veterinary Parasitology. 283, (2020).
  5. Cantó, G. J., García, M. P., García, A., Guerrero, M. J., Mosqueda, J. The prevalence and abundance of helminth parasites in stray dogs from the city of Querétaro in central Mexico. Journal Of Helminthology. 85 (3), 263-269 (2011).
  6. Torres-Chablé, O. M., et al. Prevalence of gastrointestinal parasites in domestic dogs in Tabasco, Southeastern Mexico. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária. 24 (4), 432-437 (2015).
  7. Cortez-Aguirre, G. R., Jiménez-Coello, M., Gutiérrez-Blanco, E., Ortega-Pacheco, A. Stray dog population in a city of Southern Mexico and its impact on the contamination of public areas. Veterinary Medicine International. 2018, 1-6 (2018).
  8. Rodríguez-Vivas, R. I., et al. An epidemiological study of intestinal parasites of dogs from Yucatán, Mexico, and their risk to public health. Vector Borne Zoonotic Diseases. 11 (8), 1141-1144 (2011).
  9. Maggi, R. G., Krämer, F. A review on the occurrence of companion vector-borne diseases in pet animals in Latin America. Parasites & Vectors. 12 (1), 145 (2019).
  10. Cruz-Vazquez, C., Castro, G., Parada, F., Ramos, P. Seasonal occurrence of Ctenocephalides felis and Ctenocephalides canis (siphonaptera:Pulicidae) infesting dogs and cats in an urban area in Cuernavaca, Mexico. Entomological Society of America. 38 (1), 111-113 (2001).
  11. Bolio-Gonzalez, M. E., et al. Prevalence of the Dirofilaria immitis infection in dogs from Mérida, Yucatán, Mexico. Veterinary Parasitology. 148 (2), 166-169 (2007).
  12. Pastor-Santiago, J. A., Flisser, A., Chávez-López, S., Guzmán-Bracho, C., Olivo-Díaz, A. American visceral leishmaniasis in Chiapas, Mexico. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 86 (1), 108-114 (2012).
  13. Trasviña-Muñoz, E., et al. Detection of intestinal parasites in stray dogs from a farming and cattle region of Northwestern Wexico. Pathogens. 9 (7), (2020).
  14. Ballweber, L. R., Beugnet, F., Marchiondo, A. A., Payne, P. A. American Association of Veterinary Parasitologists’ review of veterinary fecal flotation methods and factors influencing their accuracy and use–is there really one best technique. Veterinary Parasitology. 204 (1-2), 73-80 (2014).
  15. Nielsen, M. K. What makes a good fecal egg count technique. Veterinary Parasitology. 296, 109509 (2021).
  16. Gordon, H. M., Whitlock, H. V. A new technique for counting nematode eggs in sheep faeces. Journal of the Council for Scientific and Industrial Research. 12 (1), 50-52 (1939).
  17. O’grady, M. R., Slocombe, J. O. D. An investigation of variables in a fecal flotation technique. Canadian Journal of Comparative Medicine. 44 (2), 148 (1980).
  18. ESCCAP. Worm control in dogs and cats. Guideline 01. European Scientific Counsel Companion Animal Parasites. , (2017).
  19. Cringoli, G., et al. Ancylostoma caninum: Calibration and comparison of diagnostic accuracy of flotation in tube, McMaster and FLOTAC in faecal samples of dogs. Experimental Parasitology. 128 (1), 32-37 (2011).
  20. Figueroa, C. J. A. Examen coproparasitoscópico. In: Técnicas para el diagnóstico de parásitos con importancia en salud pública y veterinaria, Consejo Técnico Consultivo Nacional de Sanidad Animal. AMPAVE-CONASA. , 83-105 (2015).
  21. Dryden, M. W., Payne, P. A., Ridley, R., Smith, V. Comparison of common fecal flotation techniques for the recovery of parasite eggs and oocysts. Veterinary Therapeutics. 6 (1), 15-28 (2005).
  22. Adolph, C., et al. Diagnostic strategies to reveal covert infections with intestinal helminths in dogs. Veterinary Parasitology. 247, 108-112 (2017).
  23. Cringoli, G., Rinaldi, L., Maurelli, M. P., Utzinger, J. FLOTAC: New multivalent techniques for qualitative and quantitative copromicroscopic diagnosis of parasites in animals and humans. Nature Protocols. 5 (3), 503-515 (2010).
  24. Katagiri, S., Oliveira-Sequeira, T. C. Comparison of three concentration methods for the recovery of canine intestinal parasites from stool samples. Experimental Parasitology. 126 (2), 214-216 (2010).
  25. Rehbein, S., Lindner, T., Visser, M., Winter, R. Evaluation of a double centrifugation technique for the detection of Anoplocephala eggs in horse faeces. Journal of Helminthology. 85 (4), 409-414 (2011).
  26. Liccioli, S., et al. Sensitivity of double centrifugation sugar fecal flotation for detecting intestinal helminths in coyotes (Canis latrans). Journal of Wildlife Diseases. 48 (3), 717-723 (2012).
  27. Rishniw, M., Liotta, J., Bellosa, M., Bowman, D., Simpson, K. W. Comparison of 4 Giardia diagnostic tests in diagnosis of naturally acquired canine chronic subclinical giardiasis. Journal of Veterinary Internal Medicine. 24 (2), 293-297 (2010).
  28. Barutzki, D., Schaper, R. Endoparasites in dogs and cats in Germany 1999-2002. Parasitology Research. 90, S148-S150 (2003).
  29. Carlin, E. P., Tyungu, D. L. Toxocara: Protecting pets and improving the lives of people. Advances in Parasitology. 109, 3-16 (2020).
  30. Saari, S., NaReaho, A., Nikander, S. . Canine parasites and parasitic diseases. , (2019).
  31. Bowman, D. D., Montgomery, S. P., Zajac, A. M., Eberhard, M. L., Kazacos, K. R. Hookworms of dogs and cats as agents of cutaneous larva migrans. Trends in Parasitology. 26 (4), 162-167 (2010).
  32. Dryden, M. W., Payne, P. A., Ridley, R., Smith, V. Comparison of common fecal flotation techniques for the recovery of parasite eggs and oocysts. Veterinary Therapeutics. 6 (1), 15-28 (2005).
  33. Barutzki, D., Schaper, R. Results of parasitological examinations of faecal samples from cats and dogs in Germany between 2003 and 2010. Parasitology Research. 109, S45-S60 (2011).
  34. Novobilský, A., Novák, J., Björkman, C., Höglund, J. Impact of meteorological and environmental factors on the spatial distribution of Fasciola hepatica in beef cattle herds in Sweden. BMC Veterinary Research. 11, 128 (2015).
  35. Pickles, R. S., Thornton, D., Feldman, R., Marques, A., Murray, D. L. Predicting shifts in parasite distribution with climate change: A multitrophic level approach. Global Change Biology. 19 (9), 2645-2654 (2013).
  36. Pérez-Rodríguez, A., De La Hera, I., Fernández-González, S., Pérez-Tris, J. Global warming will reshuffle the areas of high prevalence and richness of three genera of avian blood parasites. Global Chaneg Biology. 20 (8), 2406-2416 (2014).
  37. Nava-Castro, K., Hernández-Bello, R., Muñiz-Hernández, S., Camacho-Arroyo, I., Morales-Montor, J. Sex steroids, immune system, and parasitic infections: Facts and hypotheses. Annals Of The New York Academy Of Sciences. 1262, 16-26 (2012).
  38. Morales-Montor, J., Escobedo, G., Vargas-Villavicencio, J. A., Larralde, C. The neuroimmunoendocrine network in the complex host-parasite relationship during murine cysticercosis. Current Topics in Medicinal Chemistry. 8 (5), 400-407 (2008).
  39. Olave-Leyva, J., et al. Prevalencia de helmintos gastrointestinales en perros procedentes del servicio de salud de Tulancingo, Hidalgo. Abanico Veterinario. 9 (1), 1-10 (2019).

Play Video

記事を引用
Segura, J., Alcala-Canto, Y., Figueroa, A., Del Rio, V., Salgado-Maldonado, G. A Simple Fecal Flotation Method for Diagnosing Zoonotic Nematodes Under Field and Laboratory Conditions. J. Vis. Exp. (202), e66110, doi:10.3791/66110 (2023).

View Video