Summary

Прямая имплантация канюли в Cisterna Magna свиней

Published: June 09, 2021
doi:

Summary

В данной статье представлен пошаговый протокол прямой имплантации канюли в цистерну свиней.

Abstract

Глимфатическая система представляет собой систему очистки отходов в мозге, которая зависит от потока спинномозговой жидкости (CSF) в периваскулярных пространствах, связанных с астроцитами, и участвует в клиренсе нейротоксических пептидов, таких как бета-амилоид. Нарушение глимфатической функции усугубляет патологию заболевания на животных моделях нейродегенеративных заболеваний, таких как болезнь Альцгеймера, что подчеркивает важность понимания этой системы клиренса. Глимфатическая система часто изучается с помощью cisterna magna cannulations (CMc), где индикаторы доставляются непосредственно в спинномозговую жидкость (CSF). Большинство исследований, однако, были проведены на грызунах. Здесь мы демонстрируем адаптацию техники CMc у свиней. Используя CMc у свиней, глимфатическая система может быть изучена с высоким оптическим разрешением в гиренцефальном мозге и при этом преодолевает разрыв в знаниях между грызунами и человеческими глимфатиками.

Introduction

Спинномозговая жидкость (ликвор) представляет собой ультрафильтрат крови, который находится внутри и вокруг центральной нервной системы (ЦНС)1,2. Помимо придания плавучести мозгу или поглощения повреждающих механических сил, ликвор также играет ключевую роль в очистке метаболических отходов из ЦНС3. Очистка отходов облегчается недавно охарактеризованной глимфатической системой, которая позволяет конвективному потоку ликвора через паренхиму мозга через периваскулярные пространства (PVS), которые окружают проникающие артерии3,4,5. Было показано, что этот процесс зависит от аквапорина-4 (AQP4), водного канала, экспрессируемого главным образом на астроцитарном конце, связанном с PVS4,6. Исследование глимфатической системы достигается с помощью визуализации in vivo и ex vivo с использованием либо усовершенствованной световой микроскопии, либо магнитно-резонансной томографии (МРТ) после введения флуоресцентного/радиоактивного индикатора или контрастного вещества в CSF7,8,9,10,11.

Эффективным способом введения индикатора в ликвор без повреждения паренхимы головного мозга является канюляция cisterna magna (CMc)12,13. Подавляющее большинство всех глимфатических исследований до сих пор проводилось на грызунах и избегалось у высших млекопитающих из-за инвазивности CMc в сочетании с практической простотой работы с мелким млекопитающим. Кроме того, тонкие черепа мышей позволяют проводить визуализацию in vivo без необходимости в краниальном окне и впоследствии позволяют проводить неосложненную экстракцию мозга11,14. Эксперименты, проведенные на людях, дали ценные макроскопические данные in vivo о глимфатической функции, но опирались на инъекции интратекального индикатора в дистальный поясничный отдел позвоночника и, кроме того, использовали МРТ, которая не дает достаточного разрешения для захвата микроанатомии глимфатической системы7,15,16 . Понимание архитектуры и масштабов глимфатической системы у высших млекопитающих имеет важное значение для ее передачи людям. Чтобы облегчить глимфатическую трансляцию людям, важно применять методы, которые проводятся у грызунов, к высшим млекопитающим, чтобы можно было проводить прямые сравнения глимфатической системы между видами с возрастающим познанием и сложностью мозга17. Мозг свиньи и человека гиренцефален, обладая складчатой нейроархитектурой, в то время как мозг грызунов лиссенцефален, тем самым имея существенные различия между собой. С точки зрения общего размера, мозг свиньи также более сопоставим с человеческим, будучи в 10-15 раз меньше, чем человеческий мозг, в то время как мозг мыши в 3000 раз меньше18. Благодаря лучшему пониманию глимфатической системы у крупных млекопитающих, можно будет использовать глимфатическую систему человека для будущего терапевтического вмешательства в таких состояниях, как инсульт, черепно-мозговая травма и нейродегенерация. Прямой CMc у свиней in vivo – это метод, который позволяет проводить световую микроскопию с высоким разрешением глимфатической системы у более высокого млекопитающего. Кроме того, из-за размера используемых свиней можно применять системы мониторинга, аналогичные тем, которые используются в операциях на людях, что позволяет жестко документировать и регулировать жизненно важные функции, чтобы оценить, как они способствуют глимфатической функции.

Protocol

Все процедуры были проведены в соответствии с Европейской директивой 2010/63/EU и были одобрены Этическим комитетом Мальмё-Лунда по исследованиям на животных (Dnr 5.8.18-05527/2019) и проведены в соответствии с руководящими принципами CODEX Шведского исследовательского совета. 1. Подгот?…

Representative Results

Как только свинья теряет сознание, ее пальпируют, и ее поверхностная анатомия отмечается, начиная с затылочного гребня (OC) и работая в направлении грудных позвонков (TV) и каждого основания уха (EB). Именно по этим линиям делаются дермальные разрезы (рисунок 1А). Три мышечных …

Discussion

Здесь описан подробный протокол выполнения прямой канюляции cisterna magna у свиней, включающий необходимую подготовку, хирургическую процедуру, инфузию индикатора и извлечение из головного мозга. Для этого требуется кто-то с опытом и сертификацией для работы с крупными животными. При прави…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Фондом Кнута и Алисы Валленберг, Hjärnfonden, Wenner Gren Foundations и Фондом Crafoord.

Materials

0.01% azide in PBS Sigmaaldrich S2002
18G needle Mediq
1ml Syringe FischerSci 15849152
20G cannula Mediq NA
22G cannula Mediq NA
4% paraformaldehyde Sigmaaldrich P6148
Anatomical forceps NA NA
Bovine serum albumin Alexa-Fluor 647 Conjugate ThermoFischer A34785 2 vials (10mg)
CaCl2 Sigmaaldrich C1016
Chisel ClasOhlson 40-8870
Dental cement Agnthos 7508
compact saw ClasOhlson 40-9517
Glucose Sigmaaldrich G8270
Hammer ClasOhlson 40-7694
Insta-Set CA Accelerator BSI-Inc BSI-151
IV line TAP, 3-WAYS with 10cm extension Bbraun NA
KCl Sigmaaldrich P9333
Marker pen NA NA
MgCl2 Sigmaaldrich M8266
MilliQ water NA NA
NaCL Sigmaaldrich S7653
NaH2PO4 Sigmaaldrich S8282
NaHCO3 Sigmaaldrich S5761
No. 20 scalpel blade Agnthos BB520
No. 21 Scalpel blade Agnthos BB521
No. 4 Scalpel handle Agnthos 10004-13
Saline Mediq NA
Salmon knife Fiskers NA
Self-retaining retractors NA NA
Superglue NA NA
Surgical curved scissors NA NA
Surgical forceps NA NA
Surgical towel clamps NA NA

Riferimenti

  1. Redzic, Z. B., Segal, M. B. The structure of the choroid plexus and the physiology of the choroid plexus epithelium. Advanced Drug Delivery Reviews. 56 (12), 1695-1716 (2004).
  2. Sakka, L., Coll, G., Chazal, J. Anatomy and physiology of cerebrospinal fluid. European Annals of Otorhinolaryngology, Head and Neck Diseases. 128 (6), 309-316 (2011).
  3. Nedergaard, M. Garbage truck of the brain. Science. 340 (6140), 1529-1530 (2013).
  4. Iliff, J. J., et al. A Paravascular pathway facilitates csf flow through the brain parenchyma and the clearance of interstitial solutes, including amyloid B. Science Translational Medicine. 4 (147), (2012).
  5. Xie, L., et al. Sleep drives metabolite clearance from the Adult Brain. Science. 342 (6156), 373-378 (2013).
  6. Mestre, H., et al. Aquaporin-4-dependent glymphatic solute transport in the rodent brain. eLife. 7, 40070 (2018).
  7. Ringstad, G., et al. Brain-wide glymphatic enhancement and clearance in humans assessed with MRI. JCI Insight. 3 (13), 121537 (2018).
  8. Lundgaard, I., Wang, W., Eberhardt, A., Vinitsky, H. S., Cameron, B. Beneficial effects of low alcohol exposure, but adverse effects of high alcohol intake on glymphatic function. Scientific Reports. , 1-16 (2018).
  9. Munk, A. S., et al. PDGF-B is required for development of the glymphatic system. Cell Reports. 26 (11), 2955-2969 (2019).
  10. Plog, B. A., et al. Transcranial optical imaging reveals a pathway for optimizing the delivery of immunotherapeutics to the brain. JCI Insight. 3 (20), 1-15 (2018).
  11. Bechet, N. B., et al. Light sheet fluorescence micrscopy of optically cleared brains for studying the glymphatic system. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 40 (10), 1975-1986 (2020).
  12. Xavier, A. L. R., et al. Cannula implantation into the cisterna magna of rodents. Journal of Visualized Experiments. (135), e57378 (2018).
  13. Ramos, M., et al. Cisterna magna injection in rats to study glymphatic function. Methods in Molecular Biology. 1938, (2019).
  14. Sweeney, A. M., et al. in vivo imaging of cerebrospinal fluid transport through the intact mouse skull using fluorescence macroscopy. Journal of visualized experiments. (149), e59774 (2019).
  15. Eide, P. K., Ringstad, G. MRI with intrathecal MRI gadolinium contrast medium administration: A possible method to assess glymphatic function in human brain. Acta Radiologica Open. 4 (11), 205846011560963 (2015).
  16. Ringstad, G., Vatnehol, S. A. S., Eide, P. K. Glymphatic MRI in idiopathic normal pressure hydrocephalus. Brain. 140 (10), 2691-2705 (2017).
  17. Kornum, B. R., Knudsen, G. M. Cognitive testing of pigs (Sus scrofa) in translational biobehavioral research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 35 (3), 437-451 (2011).
  18. Bèchet, N. B., Shanbhag, N. C., Lundgaard, I. Glymphatic function in the gyrencephalic brain. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. , (2021).
  19. Raghunandan, A., et al. Bulk flow of cerebrospinal fluid observed in periarterial spaces is not an artifact of injection. bioRxiv. , (2020).
  20. D’Angelo, A., et al. Spinal fluid collection technique from the atlanto-occipital space in pigs. Acta Veterinaria Brno. 78 (2), 303-305 (2009).
  21. Ma, Q., et al. Rapid lymphatic efflux limits cerebrospinal fluid flow to the brain. Acta Neuropathologica. 137 (1), 151-165 (2019).
  22. Hablitz, L. M., et al. Increased glymphatic influx is correlated with high EEG delta power and low heart rate in mice under anesthesia. Science Advances. 5 (2), 5447 (2019).
  23. Mestre, H., et al. Flow of cerebrospinal fluid is driven by arterial pulsations and is reduced in hypertension. Nature Communications. 9 (1), 4878 (2018).
  24. Pleticha, J., et al. Pig lumbar spine anatomy and imaging-guided lateral lumbar puncture: A new large animal model for intrathecal drug delivery. Journal of Neuroscience Methods. 216 (1), 10-15 (2013).

Play Video

Citazione di questo articolo
Bèchet, N. B., Shanbhag, N. C., Lundgaard, I. Direct Cannula Implantation in the Cisterna Magna of Pigs. J. Vis. Exp. (172), e62641, doi:10.3791/62641 (2021).

View Video