Summary

قياس كمية الاستجابة المناعية والنوم في<em> ذبابة الفاكهة</em

Published: December 04, 2012
doi:

Summary

لفهم العلاقة بين الاستجابة المناعية والسلوك، ونحن تصف طريقة لقياس السلوك الحركي في<em> ذبابة الفاكهة</em> خلال العدوى البكتيرية وكذلك قدرة الذباب على شن استجابة مناعية من البقاء على قيد الحياة الرصد والحمل البكتيري، في الوقت الحقيقي ونشاط منظم الرئيسية المناعة الفطرية، NFκB.

Abstract

وقد وصفت تفاعل معقد بين الاستجابة المناعية والسلوك المضيفة في مجموعة واسعة من الأنواع. النوم الزائد، على وجه الخصوص، ومن المعروف أن تحدث كاستجابة للإصابة في الثدييات (1) وأيضا في الآونة الأخيرة تم وصفها في ذبابة الفاكهة الدروسوفيلا 2. ومن المسلم به عموما أن النوم هو مفيد إلى المضيف خلال وجود عدوى، وأنه من المهم للحفاظ على جهاز المناعة قويا 3،4. ومع ذلك، فإن الأدلة التجريبية التي تدعم هذه الفرضية هو محدود ووظيفة النوم الزائد خلال استجابة مناعية لا تزال غير واضحة. وقد استخدمنا نهج متعدد التخصصات لمعالجة هذه المشكلة المعقدة، ولقد أجريت دراسات في النظام النموذجي الجينية البسيطة، وذبابة الفاكهة ذبابة الدروسوفيلا. نستخدم الفحص القياسية لقياس السلوك الحركي والنوم في الذباب، وتبين كيفية استخدام هذا الاختبار لقياس السلوك في بالعدوى الذبابد مع سلالة من البكتيريا. هذا الفحص مفيد أيضا لرصد مدة بقاء الفرد في الذباب أثناء العدوى. تدابير إضافية من وظائف المناعة تشمل القدرة من الذباب لمسح وجود عدوى وتفعيل NFκB، وهو عامل النسخ المفتاح الذي تم المركزي للاستجابة المناعية الفطرية في ذبابة الفاكهة. كل نتيجة بقاء وإزالة البكتيريا خلال العدوى معا مؤشرات المقاومة والتسامح للإصابة. المقاومة يشير إلى قدرة الذباب لمسح وجود عدوى، بينما يتم تعريف التسامح وقدرة المضيف للحد من الأضرار الناجمة عن وجود عدوى، وبالتالي البقاء على قيد الحياة على الرغم من مستويات عالية من الممرض داخل النظام 5. في الوقت الحقيقي رصد النشاط NFκB خلال العدوى رؤية ثاقبة آلية الجزيئية للبقاء على قيد الحياة خلال العدوى. استخدام ذبابة الفاكهة في هذه المقايسات مباشرة يسهل التحليل الجيني والجزيئي من النوموتتأثر بالتبادل الاستجابة المناعية وكيفية هذين النظامين المعقدة.

Protocol

هذا البروتوكول يستخدم اثنين من الاجهزة (الشكل 1) لشراء اربع قراءات مختلفة تم جمعها من الذباب التعرض للعدوى البكتيرية. وتشمل هذه المخرجات 1) النوم / اعقاب السلوك، 2) نتيجة بقاء؛ 3) الحمل البكتيري في الطيران، و4) في الوقت الحقيقي قياس النشاط مراسل NFκB في الجسم ال?…

Representative Results

Infection promotes sleep. In this example, Canton-S (CS) wild type flies and mutant flies lacking an NFκB gene, Relish (RelE20) 14, were loaded into two DAM2 activity monitors (n=32 for each genotype) and infected as described above. Flies were maintained in constant light to eliminate the influence of the circadian clock on behavior and infection2,7,8. The RelE20 mutants were isogenized to CS as described previously11. Both sets of flies were infe…

Discussion

هذا البروتوكول يحدد هذا النهج للتحقيق في كيفية السلوك، ولا سيما النوم، يرتبط المعلمات الاستجابة المناعية. وتشمل هذه المعايير الحمل البكتيري، نتيجة بقاء، والنشاط كما تقاس NFκB مراسل وسيفيراز في الجسم الحي. معا هذه المعلمات توفير المعلومات حول مدى ذبابة يمكن محار…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من قبل مؤسسة العلوم الوطنية في إطار منحة # IOS-1025627 وقبل المعاهد الوطنية للصحة في إطار منحة # 1R21NS078582-01 إلى JAW

Materials

Material Name Company Catalogue number Comments
Equipment
Incubators Percival Scientific, Inc. I30BLLC8
I36VLC8
Any incubator capable of running programmed light/temperature schedules is appropriate.
Drosophila Activitiy Monitors Trikinetics Inc., Waltham, MA DAM2 As described elsewhere6, this system requires a computer interface, software, and other accessories.
Pyrex Glass Tubes Trikinetics Inc., Waltham, MA PGT-5×65
Microplate scintillation and luminescence counter Perkin Elmer TopCount NXT
12 detector
Any microplate reader capable of detecting luminescence can be used for this type of reporter assay. TopCount contains multiple detectors and an automated stacker; it is capable of being programmed to read continuously from multiple plates.
FluorChem 8900 Alpha Innotech Imaging of bacterial cultures is optional; any digital imaging system with visual light capability is sufficient.
Micropipette Puller Tritech Research, Inc. Narishige PC-10
Supplies
Borosilicate Glass Capillaries World Precision Instrument Inc. 1B100F-4
3 ml Syringe Fisher Scientific BD 305482
Syringe Needles Fisher Scientific BD 305196 18 G – cut off the tip of the needle to prevent damage to the tubing.
Silicone Tubing, i.d. (0.030″) o.d. (0.065″) Wall Thickness (0.018″) VWR 60985-706 Used for attaching glass capillary needles to a syringe
3 Way Stopcock American Pharmaseal Company K75
Kontes Pellet Pestle Cordless Motor Fisher Scientific K749540-0000
Kontes Pellet Pestle Fisher Scientific K749521-1590
Glass balls 3mm VWR 26396-630
Microplate Microlite 1+ Thermo Scientific 7571 Select 96-well plates that are appropriate for luminescence – they must be opaque.
TopSeal-A:96-well Microplates PerkinElmer 6005185 Microplate Press-On Adhesive Sealing Film
D-Luciferin, Potassium Salt Gold BioTechnology, Inc. LUCNA
Software
Insomniac2 Available upon request to the authors custom; written by Lesley Ashmore, Ph.D. (Westminster College) Matlab based software that has been used routinely for analysis of sleep2,6,11
Drosonex Available upon request to the authors custom; written by Thomas Coradetti (Sidewalk Software) A PC MSVC6 program used for survival analysis from raw data files collected with the Trikinetics system
Photoshop CS3 Adobe Useful for obtaining numbers of cfu/plate from digital images (optional)

Riferimenti

  1. Majde, J. A., Krueger, J. M. Links between the innate immune system and sleep. J. Allergy Clin. Immunol. 116, 1188-1198 (2005).
  2. Kuo, T. H., Pike, D. H., Beizaeipour, Z., Williams, J. A. Sleep triggered by an immune response in Drosophila is regulated by the circadian clock and requires the NFkappaB Relish. BMC Neurosci. 11, 1471-2202 (2010).
  3. Preston, B. T., Capellini, I., McNamara, P., Barton, R. A., Nunn, C. L. Parasite resistance and the adaptive significance of sleep. BMC Evol Biol. 9, 7 (2009).
  4. Imeri, L., Opp, M. R. How (and why) the immune system makes us sleep. Nat. Rev. Neurosci. 10, 199-210 (2009).
  5. Ayres, J. S., Schneider, D. S. A Signaling Protease Required for Melanization in Drosophila Affects Resistance and Tolerance of Infections. PLoS Biol. 6, e305 (2008).
  6. Chiu, J. C., Low, K. H., Pike, D. H., Yildirim, E., Edery, I. Assaying Locomotor Activity to Study Circadian Rhythms and Sleep Parameters in Drosophila. J. Vis. Exp. (43), e2157 (2010).
  7. Lee, J. E., Edery, I. Circadian Regulation in the Ability of Drosophila to Combat Pathogenic Infections. Curr. Biol. 18, 195-199 (2008).
  8. Stone, E. F., et al. The circadian clock protein timeless regulates phagocytosis of bacteria in Drosophila. PLoS Pathog. 8, e1002445 (2012).
  9. Hill-Burns, E. M., Clark, A. G. X-linked variation in immune response in Drosophila melanogaster. Genetica. 183, 1477-1491 (2009).
  10. Short, S. M., Lazzaro, B. P. Female and male genetic contributions to post-mating immune defence in female Drosophila melanogaster. Proc. Biol. Sci. 277, 3649-3657 (2010).
  11. Williams, J. A., Sathyanarayanan, S., Hendricks, J. C., Sehgal, A. Interaction between sleep and the immune response in Drosophila: a role for the NFkappaB relish. Sleep. 30, 389-400 (2007).
  12. Ramsden, S., Cheung, Y. Y., Seroude, L. Functional analysis of the Drosophila immune response during aging. Aging Cell. 7, 225-236 (2008).
  13. Williams, J. A., Su, H. S., Bernards, A., Field, J., Sehgal, A. A circadian output in Drosophila mediated by neurofibromatosis-1 and Ras/MAPK. Science. 293, 2251-2256 (2001).
  14. Hedengren, M., et al. Relish, a central factor in the control of humoral but not cellular immunity in Drosophila. Mol. Cell. 4, 827-837 (1999).
  15. Leulier, F., Rodriguez, A., Khush, R. S., Abrams, J. M., Lemaitre, B. The Drosophila caspase Dredd is required to resist gram-negative bacterial infection. EMBO Rep. 1, 353-358 (2000).
  16. Wu, L. P., Choe, K. -. M., Lu, Y., Anderson, K. V. Drosophila Immunity: Genes on the Third Chromosome Required for the Response to Bacterial Infection. Genetica. 159, 189-199 (2001).
  17. Dionne, M. S., Ghori, N., Schneider, D. S. Drosophila melanogaster is a genetically tractable model host for Mycobacterium marinum. Infect. Immun. 71, 3540-3550 (2003).
  18. Romeo, Y., Lemaitre, B. Drosophila immunity: methods for monitoring the activity of Toll and Imd signaling pathways. Methods Mol. Biol. 415, 379-394 (2008).
  19. Lu, Y., Wu, L. P., Anderson, K. V. The antibacterial arm of the Drosophila innate immune response requires an I{kappa}B kinase. Genes Dev. 15, 104-110 (2001).
  20. Koh, K., Evans, J. M., Hendricks, J. C., Sehgal, A. A Drosophila model for age-associated changes in sleep:wake cycles. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 103, 13843-13847 (2006).
  21. Bushey, D., Hughes, K. A., Tononi, G., Cirelli, C. Sleep, aging, and lifespan in Drosophila. BMC Neurosci. 11, 1471-2202 (2010).
  22. Allee, W. C. . The social life of animals. , (1938).
  23. Stanewsky, R., Jamison, C. F., Plautz, J. D., Kay, S. A., Hall, J. C. Multiple circadian-regulated elements contribute to cycling period gene expression in Drosophila. Embo. J. 16, 5006-5018 (1997).
  24. Levine, J. D., Funes, P., Dowse, H. B., Hall, J. C. Signal analysis of behavioral and molecular cycles. BMC Neurosci. 3, 1 (2002).
  25. Ayres, J. S., Schneider, D. S. The role of anorexia in resistance and tolerance to infections in Drosophila. PLoS Biol. 7, e1000150 (2009).
  26. Plautz, J. D., Kaneko, M., Hall, J. C., Kay, S. A. Independent photoreceptive circadian clocks throughout Drosophila. Science. 278, 1632-1635 (1997).
  27. Huber, R., et al. Sleep homeostasis in Drosophila melanogaster. Sleep. 27, 628-639 (2004).
  28. Zimmerman, J. E., Raizen, D. M., Maycock, M. H., Maislin, G., Pack, A. I. A video method to study Drosophila sleep. Sleep. 31, 1587-1598 (2008).
  29. Toth, L. A., Rehg, J. E., Webster, R. G. Strain differences in sleep and other pathophysiological sequelae of influenza virus infection in naive and immunized mice. J. Neuroimmunol. 58, 89-99 (1995).
  30. Hendricks, J. C., et al. Rest in Drosophila is a sleep-like state. Neuron. 25, 129-138 (2000).
  31. Wu, M. N., Koh, K., Yue, Z., Joiner, W. J., Sehgal, A. A genetic screen for sleep and circadian mutants reveals mechanisms underlying regulation of sleep in Drosophila. Sleep. 31, 465-472 (2008).

Play Video

Citazione di questo articolo
Kuo, T., Handa, A., Williams, J. A. Quantitative Measurement of the Immune Response and Sleep in Drosophila. J. Vis. Exp. (70), e4355, doi:10.3791/4355 (2012).

View Video