Summary

Kuduz IgG ve IgM Antikorlarının Kuduz İndirekt Floresan Antikor Testi Kullanılarak Saptanması

Published: January 19, 2024
doi:

Summary

Bu makalenin amacı, kuduza özgü IgG ve IgM antikorlarının saptanmasında kuduz indirekt floresan antikor testinin kullanımını incelemektir.

Abstract

Kuduz dolaylı floresan antikoru (IFA) testi, serum veya beyin omurilik sıvısında kuduza özgü çeşitli antikor izotiplerini saptamak için geliştirilmiştir. Bu test hızlı sonuçlar sağlar ve birkaç farklı senaryoda kuduz antikorlarını tespit etmek için kullanılabilir. Kuduz IFA testi, kuduz gelişen bir hastada bağışıklık tepkisini değerlendirmek için antikorların hızlı ve erken tespiti için özellikle yararlıdır. Antemortem kuduz teşhisi için diğer yöntemler öncelikli olsa da, bu test antikor tespiti yoluyla yakın zamanda kuduz virüsü maruziyetini göstermek için kullanılabilir. IFA testi, virüs nötralize edici bir antikor (VNA) titresi sağlamaz, ancak maruziyet öncesi profilaksi (PrEP) yanıtı, pozitif veya negatif antikor varlığı ile değerlendirilebilir. Bu test çeşitli durumlarda kullanılabilir ve bir dizi farklı hedef için sonuç sağlayabilir. Bu çalışmada, PrEP alan bireylerden birkaç eşleştirilmiş serum örneği kullandık ve IFA testini kullanarak zaman içinde kuduz antikoru varlığını gösterdik.

Introduction

Kuduz dolaylı floresan antikoru (IFA) testi, serum veya beyin omurilik sıvısında kuduza özgü çeşitli antikor izotiplerini tespit etmek için kullanılır. Bir antemortem kuduz hastasını izlemek için mevcut olan bir dizi testten biridir. Bir hastanın kuduz enfeksiyonuna karşı bağışıklık tepkisini değerlendirmek için antikorların erken tespiti için özellikle yararlıdır. Diğer testler, vaka öyküsü ve hastanın aşı durumu ile birlikte kullanıldığında, IFA testi kuduz virüsüne veya bir aşıya maruz kalmanın belirlenmesine yardımcı olabilir1. IFA testi IgM ve/veya IgG’yi ölçtüğü için, spesifik antikorun değerleri, antijen1’e maruz kalmaktan yaklaşık bir zaman dilimini gösterebilir. Bu test, listelenen uygulamalarda veya henüz keşfedilmemiş diğer uygulamalarda yararlı olabilir.

Birkaç kuduz serolojik tahlili mevcuttur. Hızlı floresan odak inhibisyon testi (RFFIT), floresan antikor virüs nötralizasyonu (FAVN) testi veya bunların modifikasyonları, kuduz virüsü nötralize edici antikorları (RVNA’lar) ölçmek için birincil yöntemlerdir1. Ancak bu testler IgM ve IgG antikorlarını ayırt etmez. Kuduz immün yanıtının izlenmesinde antikor izotipinin ayırt edilmesi önemli olduğunda, kuduz IFA ve kuduz enzimine bağlı immünosorbent testi (ELISA) testleri kullanılır, ancak RVNA’ları ölçmezler. IFA ve ELISA testleri, bir numunede kuduza özgü antikorların varlığını belirlemek için kullanılabilse de, bunların nasıl yürütüldüğü konusunda bazı farklılıklar vardır. IFA testi, antijen substratı olarak hücre kültürü yapılmış bir canlı virüs kullanırken, kuduz tespiti için tipik bir ELISA, viral proteinlerden bir veya daha fazlasını kullanır. Kuduz virüsünün kültürlenebildiği bir laboratuvar ortamında, ELISA için bireysel viral proteinleri satın almak veya yetiştirmek yerine IFA testi daha kolay yapılabilir. Hangisinin seçileceği belirlenirken testin amacı ve herhangi bir kuduz serolojik testinin sonuçlarından elde edilen bilgiler dikkate alınmalıdır2.

IgM ilk yanıt veren kişidir, yaklaşık 28. günde sınıf geçişi gözlenene kadar artar, bu noktada IgG baskın dolaşımdaki antikorhaline gelir 3. Bu nedenle, IgM, kuduz virüsüne veya aşılamaya maruz kaldıktan sonra yalnızca sınırlı bir süre için beklenir. Hem serum hem de beyin omurilik sıvısının (BOS) test edilmesi, maruziyetin antikorların sadece serumlarda görüleceği aşılama yoluyla mı yoksa BOS1’de potansiyel olarak antikorları gösterecek viral bir enfeksiyondan mı olduğunu gösterebilir.

Kuduz antikorlarının maruziyet öncesi profilaksiden (PrEP) sonra birkaç yıl devam ettiği tespit edilmiştir4. IFA testi, aşılama veya maruziyeti takiben farklı zaman noktalarında bunu göstermek için yararlı bir araç olabilir.

Protocol

Aşağıdaki protokol, New York Eyaleti Sağlık Bakanlığı Wadsworth Tahlil Geliştirme Merkezi, protokol onay numarası #03-019 tarafından insan örneklerinin etik kullanımı için onaylanmıştır. 1. Güvenlik Kişisel koruyucu ekipman (KKD), minimum göz koruması (gözlük veya yüz siperi), cerrahi maske ve lateks olmayan eldivenler kullanın. Personelin kuduz aşısı olduğundan ve son 6 ay içinde ≥0,5 IU/mL’lik bir titre gösterildiğinden …

Representative Results

Tüm serum örnekleri PrEP’i takiben hastalardan yaklaşık olarak aynı zaman dilimlerinde toplandı. Numuneler aşağıdaki zaman noktalarında beş farklı hastadan test edildi: son kuduz aşısı aşılamasından 2 hafta sonra, kuduz aşısı serisinden 6 ay sonra ve kuduz aşısı serisinden 18 ay sonra. Her serum örneği seri olarak seyreltildi ve protokol adımları 5.2 ve 5.3’te tarif edildiği gibi hem IgM hem de IgG varlığı için derecelendirildi. Atanan antikor değeri, numunenin 1-2+ son nokta derecesine …

Discussion

IFA testi, bir etiketleme bölgesinin kuduza özgü antikorları görselleştirmesine izin veren bir antijen-antikor kompleksinden yararlanır. Nöroblastom veya BHK hücreleri, çok kuyulu PTFE kaplı mikroskop lamları üzerine ekilir ve kuduz virüsü laboratuvar suşu CVS-11 ile aşılanır. Tek tabaka birleştiğinde ve hücreler yaklaşık% 50’lik istenen enfektiviteye ulaştığında, slaytlar kullanıma hazır olana kadar saklanır6.

Hasta serumu veya BOS, enfek…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu projeyi desteklediği için New York Eyaleti Sağlık Bakanlığı Wadsworth Merkezi’ne minnettarız.

Materials

25x55mm glass cover slips Any
Acetone Any
Anti-Human IgG Labeled Conjugate Sigma-Aldrich F9512
Anti-Human IgM Labeled Conjugate SeraCare 5230-0286
Aspirating pipette tip Any
BHK-21 Cells ATCC CCL-10
BION IFA Diluent MBL BION DIL-9993
Cell Culture water Sigma-Aldrich W3500 EGM
Coplin Jars Any
Fetal Bovine Serum  Sigma-Aldrich F2442 EGM
Fluorescent microscope with FITC filter Any
Glycerol Sigma-Aldrich G7893 Mountant
Gullsorb IgM inactivation reagent Fisher Scientific 23-043-158 IgG Inactivation Reagent
L-Glutamine Sigma-Aldrich G-7513 EGM
Minimum Essential Media Eagle – w/Earle’s salts, L-glutamine, and non-essential amino acids, w/o sodium bicarbonate Sigma-Aldrich M0643 EGM
Mouse Neuroblastoma Cells ATCC CCL-131
Multi-well Teflon coating glass slides Any
PBS Any pH 7.6 
Penicillin Sigma P-3032 EGM
Rabies Direct Fluorescent Antibody Conjugate Millipore Sigma 5100, 5500 or 6500
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S-5761 EGM
Sodium Chloride crystals Sigma-Aldrich S5886 Mountant
Sterile dropper Any
Streptomycin sulfate salt Sigma S9137 EGM
Trizma pre-set crystals pH 9.0 Sigma-Aldrich S9693 Mountant
Tryptose Phosphate Broth BD 260300 EGM
Vitamin mix Sigma-Aldrich M6895 EGM

References

  1. Rupprecht, C. E., Fooks, A. R., Abela-Ridder, B. Laboratory Techniques in Rabies. Volume 1. World Health Organization. , 232-245 (2018).
  2. Moore, S. M. Challenges of rabies serology: defining context of interpretation. Viruses. 13 (8), 1516 (2021).
  3. Zajac, M. D. Development and evaluation of a rabies enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) targeting IgM and IgG in human sera. Viruses. , 40-49 (2019).
  4. Mills, D. J., Lau, C. L., Mills, C., Furuya-Kanamori, L. Long-term persistence of antibodies and boostability after rabies intradermal pre-exposure prophylaxis. Journal of Travel Medicine. 29 (2), (2022).
  5. Ramakrishnan, M. A. Determination of 50% endpoint titer using a simple formula. World Journal of Virology. 5 (2), 85-86 (2016).
  6. Rudd, R. J., Appler, K. A., Wong, S. J. Presence of cross-reactions with other viral encephalitides in the indirect fluorescent-antibody test for diagnosis of rabies. Journal of Clinical Microbiology. 51 (12), 4079-4082 (2013).
  7. Fooks, A. R., Jackson, A. C. . Rabies: scientific basis of the disease and its management. , (2020).
  8. Paldanius, M., Bloigu, A., Leinonen, M., Saikku, P. Measurement of Chlamydia pneumoniae-specific immunoglobulin A (IgA) antibodies by the microimmunofluorescence (MIF) method: comparison of seven fluorescein-labeled anti-human IgA conjugates in an in-house MIF test using one commercial MIF and one enzyme immunoassay kit. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 10 (1), 8-12 (2003).
  9. Rodriguez, M. C., Fontana, D., Garay, E., Prieto, C. Detection and quantification of anti-rabies glycoprotein antibodies: current state and perspectives. Applied Microbiology and Biotechnology. 105 (18), 6547-6557 (2021).
  10. Katz, I. S. S., Guedes, F., Fernandes, E. R., Dos Ramos Silva, S. Immunological aspects of rabies: a literature review. Archives of Virology. 162 (1), 3251-3268 (2017).
  11. Moore, S. M., Hanlon, C. A. Rabies-specific antibodies: measuring surrogates of protection against a fatal disease. PLoS Neglected Tropical Diseases. 4 (3), 595 (2010).

Play Video

Citer Cet Article
Jones, N. J., Jarvis, J. A., Appler, K. A., Davis, A. D. Detection of Rabies IgG and IgM Antibodies Using the Rabies Indirect Fluorescent Antibody Test. J. Vis. Exp. (203), e65459, doi:10.3791/65459 (2024).

View Video