Summary

使用声学纳米分配技术实现高通量DNA质粒多路复用和转染

Published: August 08, 2019
doi:

Summary

该协议使用声滴喷射技术描述了384孔板中哺乳动物细胞的高通量质粒转染。耗时、易出错的 DNA 点胶和复用,以及转染试剂点胶,由软件驱动,由纳米点胶设备执行。然后,这些细胞被播种在这些预填充的井中。

Abstract

细胞转染是许多生物学研究不可或缺的,需要控制许多参数,以实现准确和成功。通常在低吞吐量下执行,而且既耗时又容易出错,在多路复用多个质粒时更是如此。我们开发了一种简单、快速、准确的方法,利用声滴喷射 (ADE) 技术在 384 孔板布局中执行细胞转染。本研究中使用的纳米分配器装置基于该技术,允许从源井板高速向目标井板精确输送纳米体积。它可以根据预先设计的电子表格分配和复用DNA和转染试剂。在这里,我们提出了一个基于ADE的高通量质粒转染的最佳方案,这使得在共转染实验中达到高达90%的效率和近100%的共转染成为可能。我们扩展了初始工作,提出了一个基于用户友好的基于电子表格的宏,能够管理多达四个质粒/孔从包含多达1,536个不同的质粒的库,以及一个基于平板电脑的移液指南应用程序。宏设计了源板的必要模板,并为纳米分配器和基于平板电脑的应用生成即用型文件。四步转染协议涉及 i) 使用经典液体处理机的稀释剂,ii) 质粒分布和多路复用,iii) 纳米分配器的转染试剂点,以及 iv) 预填充孔上的细胞电镀。所述基于软件的ADE质粒多路复用和转染控制,即使是该领域的非专家也能快速、安全地执行可靠的细胞转染。此方法能够快速识别给定单元类型的最佳设置,并可转用到更大规模和手动的方法。该协议简化了非池化筛选策略中的人类ORFeome蛋白(基因组中开放阅读框架[ORF])表达或基于CRISPR-Cas9的基因功能验证等应用。

Introduction

这里介绍的方法详细介绍了如何在384孔板中使用声基液体纳米分配器在高通量的哺乳动物细胞中执行DNA质粒多路复用和转染,即使是对于该领域的非专家也是如此。最近公布的方法1允许在一个实验中执行多达384个独立的质粒DNA复用和转染条件,在不到1小时。转染细胞群中的共转染。此协议使转染更容易,因为大多数繁琐、耗时且容易出错的步骤现在都是软件驱动的(有关概述,请参阅图1)。已作出进一步努力,开发专用工具,以提高易用性,同时避免整个过程中的人为错误,并促进成功的转染,即使是外地的非专家。所述协议包括一个”用户友好”的宏电子表格,我们开发了该电子表格,以便管理 384 个独立的转染条件,每个孔中最多具有四个质粒的多路复用可能性。宏自动生成源板的模板,以从起始库存解决方案加载预期的 DNA 质粒体积,并在已输入的实验设计后启动纳米分配器软件所需的文件。由于在384孔源盘中手动分配DNA是繁琐且容易出错的,我们还开发了一个基于平板电脑的专用应用程序,在根据模板分配DNA溶液的同时指导用户。

Figure 1
图1:实验工作流。最佳自动化高通量反向转染协议(从实验设计到定制生物测定)的原理表示。手动步骤由手符号指示,每个步骤的大致时间写在红色框中。请点击此处查看此图的较大版本。

许多基于细胞的实验从质粒DNA转染开始,即使许多专用试剂已经和仍在开发中,以提高转染效率和/或简化程序,仍有许多工作要做2,3,4.DNA质粒细胞转染涉及几个步骤,以达到高效率,如初始复杂接受,内皮逃逸,和细胞质传输到细胞核5,6。除了钙沉淀或物理技术,如电穿孔或显微注射使用专用装置7,现代化学方法已侧重于加强DNA细胞交付,同时降低细胞细胞毒性8, 9.使用脂质或阳离子聚合物形成脂质体状复合物,以及最近的非脂体聚合物化学系统使转染更容易和更有效率10。尽管有这些发展,细胞转染仍然需要具体技能,以准确执行,因为大多数物理或化学转染协议要求科学家手动准备每个DNA转染反应条件,因此影响吞吐量。为了规避这个问题,利用化学转染试剂11、12、13开发了反向转染方案,使用户能够更快地测试或组合几个质粒。在这些协议中,在将细胞播种到复合物上之前,与转染试剂形成核酸复合物。然而,这些反向协议仍然受到DNA溶液的手动处理和每个独立条件的组合的限制。虽然以96孔板格式进行它们是可行的,但DNA的制备和分配将单调乏味,并且可能会有错误。当需要不同数量的DNA质粒并相互多路复用时,细胞转染就更难实现,而且更加耗时,人为错误也变得相当不可避免。尽管很少多路复用DNA转染条件,但以反向转染方法扩展到384孔板格式,由于以下原因,成为一个不可能的挑战。i) 要管理的DNA量、转染试剂或反应混合物体积低于每口井的1μL。ii) 384个独立条件下质粒的多用性变得极其复杂。384口井的输送也非常耗时,而且容易出错。事实上,在预期井中分配正确的解决方案是很难管理的,因为已经分配的低容量不允许在空井和已满井之间进行目视监控。v) 最后,由于执行必要点胶步骤所需的时间,在加入细胞之前,蒸发干燥混合物的风险很高。总之,建立高通量DNA质粒转染测定的限制因素似乎是检测的小型化,这意味着小批量多路复用和管理,不能再手动处理,但也很难在由传统的围静态液体处理机的可靠方式。

为了证明自动化(如测定和获得高通量)的难度,到目前为止,只发布了几次自动转染的尝试:使用商业液体处理装置和磷酸钙沉淀96 孔板格式最近,一个利波莱克斯试剂,和一个微流体芯片,使280个独立的转染15,但需要这方面的专业技能。另一种方法,去磷,允许液体悬浮,并导致流体操纵和混合,用于执行DNA转染在24至96孔板格式16。虽然可行,但这种方法的通量极低,因为细胞与DNA转染混合物的混合需要在播种前每一点孵育60s。这意味着整个 96 孔板的持续时间至少为 96 分钟。此外,由于这项工作是使用目前市场上没有的内部设计和制造设备完成的,因此该协议还远远不能让广大生物学家的观众满意。相反,在过去几年中,纳米体积分配器设备出现了一种易于使用的基于软件的声学点胶技术。利用聚焦声能,这些器件允许严格控制小液体体积从2.5 nL到500 nL从源板喷射到目的地17。这种技术称为声滴喷射 (ADE),具有许多优点:它是全自动的、非接触的、无提示的、准确、精确且高度可重复的,并且具有高通量18。首次致力于提供二甲基硫酸盐(DMSO)解决方案,设置已增强,以分配水缓冲液19。因此,声学纳米分配器似乎适用于反向细胞转染协议,并可以规避上述大多数手动限制。由于以前没有使用该技术描述过质粒转染尝试,我们最近评估了基于声学的点胶系统是否适合执行反向细胞转染。

利用纳米分给器的吞吐量和易用性,我们优化了HeLa细胞的反向转染方案,通过交叉测试几个参数,这些参数可以影响384孔单板的DNA转染,即总DNA量和源DNA起始浓度、稀释体积、转染试剂和扩散细胞数量。开发的协议规避了上述细胞转染的手动限制,与其他自动转染尝试具有若干优点。首先,它被小型化,从而允许通过节省DNA质粒制剂和转染试剂实现具有成本效益的转染试剂。其次,它比手动协议(即使是初学者)具有更高的吞吐量和可重现性,因为整个 384 孔板的转染可在 1 小时内实现。最后,它是软件驱动的,允许控制分配的DNA数量和多个质粒的多路复用。事实上,多亏了纳米分配器软件(材料表),用户可以制定一个研究计划来控制从定义的源井板到目的地的孔板的分配量。

此处提出的协议主要面向那些能够使用纳米分配器并希望在高通量下设置转染实验的用户,但也适用于那些希望通过以下形式快速优化特定细胞类型的转染参数的人。将该协议应用于在高吞吐量下交叉测试多个参数。事实上,我们已经表明,通过这种纳米尺度协议识别的优化参数可以转用于更大规模和手动转染实验。最后,由于本协议中使用的转染试剂允许根据制造商进行DNA或siRNA转染,该协议也对那些旨在执行基因过度表达或敲除的阵列方法的人感兴趣。预填充DNA的目的地板可在转染检测使用前7天保存,而不会失去功效,这是此类应用下协议的另一个优点。

Protocol

1. 提前准备 准备蠕动液体处理程序注:对于协议的稀释剂和单元分配步骤,必须准备专用程序,同时考虑到使用板的点胶头高度和步骤意图。 对于 1 μL 稀释剂点胶步骤,安装 1 μL 盒式磁带,并准备步骤 1.1.1.1 和 1.1.1.2 中所述的设置程序。 将流速参数调整为”高”,以获得最佳吞吐量,因为此步骤中预计不会造成生物材料损坏。将分配高度调整到 9.6 mm(根据所?…

Representative Results

f 为了确定ADE技术是否可用于自动反向转染协议,我们使用红色荧光tdTomato表达质粒,通过荧光显微镜监测细胞转染效率。首先,为了确定最佳转染参数,对不同的稀释量和总DNA进行了交叉测试。稀释体积用于允许DNA液滴,一旦分配,蔓延到整个井,以规避在初步实验中观察到的不均匀转染(即,仅在井的中心)。如图6A所示,使用脂聚聚物试剂20转…

Discussion

为给定细胞系建立和优化精确的高通量转染方法需要科学家遵循本节中描述的一些关键参数。我们强烈鼓励从整个协议中的建议值开始,因为这些针对 HeLa 细胞优化的设置也证明对 HEK 细胞有效。然而,由于最佳参数可能取决于细胞系和转染试剂,因此可以通过改变细胞数量、稀释体积、总DNA量和转染试剂的性质、浓度,甚至体积来定义最佳条件。在HeLa细胞1优化该协议期间。

<p cla…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

作者披露了对本文的研究、作者和/或出版物的下列财政支持:因塞姆、里尔大学、里尔巴斯德研究所、北方理事会以及PRIM-HCV1和2(Recherche)(联邦国际医药协会、国家重建局(ANR-10-EQPX-04-01)、Feder(12001407(D-AL)和欧洲共同体(ERC-STG INTRACELLTB n=260901)。作者要感谢S.Mouru博士、B.Villemagne博士、R.Ferru-Clément博士和H.Groult博士对手稿的批判性回顾和更正。

Materials

384LDV Microplate Labcyte LP-0200
384-well Microplate μClear Black Greiner 781906
Ampicilin Sigma A9393-5G Selection antibiotic for bacteria transformed with ampicilin expressing vector
Android Tablet Samsung Galaxy Note 8 used to guide the user while the source plate manual dispense
Aniospray Surf 29 Anios 2421073 disinfectant to clean the MicroFlo head
Columbus software Perkin Elmer image analysis software
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM), high glucose, GlutaMAX Supplement, pyruvate Thermo Fisher Scientific 10566032 cell culture medium
Echo Cherry Pick 1.5.3 software Labcyte Software enabling ADE-based dispenses by the Echo550 device from a *.csv file; nanodispenser software
Echo550 Labcyte ADE-based dispenser
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific 16000044 to add in cell culture medium
Formalin solution, neutral buffered, 10% Sigma-Aldrich HT501128-4L to fix cell
HeLa cells ATCC HeLa (ATCC® CCL-2™)
Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate Thermo Fisher Scientific H3570 10 mg/mL Solution in Water
INCell Analyzer 6000 GE Healthcare 29043323 automated laser-based confocal imaging platform
LB medium Thermoischer Scientific
LB Broth Base (Lennox L Broth Base)®, powder
12780052 culture medium for bacteria growth
Lysis Buffer (A2)  Macherey-Nagel 740912.1 Buffer from the NucleoSpin Plasmid kit used to prepare plasmid from bacterial culture
MicroFlo 10µL cassette Biotek Instruments Inc 7170013 to use with the Microflo Dispenser
MicroFlo 1μL cassette Biotek Instruments Inc 7170012 to use with the Microflo Dispenser
MicroFlo Dispenser Biotek Instruments Inc 7171000 peristaltic pump-based liquid handler device
Microvolume spectrophotometer Denovix DS-11 Spectrophotometer Measure the DNA concentration of samples
mVenus plasmid mVenus cDNA was cloned by enzymatic restriction digestion and ligation in Age1/BsrG1 sites of the tdTomato-N1 plasmid Vector type: Mammalian Expression, Fusion Protein: mVenus
Neutralization Buffer (A3)  Macherey-Nagel 740913.1 Buffer from the NucleoSpin Plasmid kit used to prepare plasmid from bacterial culture
NucleoSpin Plasmid kit Macherey-Nagel 740588.50 used to prepare plasmid from bacterial culture
Optimal-Modified Eagle Medium (Opti-MEM) Medium Thermo Fisher Scientific 31985070
optional Wash bufferWash Buffer (A4) Macherey-Nagel 740914.1 Buffer from the NucleoSpin Plasmid kit used to prepare plasmid from bacterial culture
orbital shaker  incubated large capacity shaker 444-7084 Used to grow bacteria under gentle agitation and 37°C
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122 10,000 U/mL
Phosphate-Buffered Saline Thermo Fisher Scientific 10010001
Plasmid mini-columns Macherey-Nagel 740499.250 Silica membrane mini-column to prepare plasmid from bacterial culture
Resuspension Buffer (A1)  Macherey-Nagel 740911.1 Buffer from the NucleoSpin Plasmid kit used to prepare plasmid from bacterial culture
RNAse A Macherey-Nagel 740505 Enzyme from the NucleoSpin Plasmid kit used to prepare plasmid from bacterial culture
tdTomato-N1 plasmid Addgene Plasmid #54642 Vector type: Mammalian Expression, Fusion Protein: tdTomato 
TransIT-X2 Dynamic Delivery System Mirus Bio MIR 6000
Wash Buffer (AW) Macherey-Nagel 740916.1 Buffer from the NucleoSpin Plasmid kit used to prepare plasmid from bacterial culture
3D printer Creality CR10S used to print the plate adapter
Blender Software   https://www.blender.org/
Free software under GNU General Public License (GPL).
version 2.79b used to design the plate adapter

References

  1. Colin, B., Deprez, B., Couturier, C. High-Throughput DNA Plasmid Transfection Using Acoustic Droplet Ejection Technology. SLAS Discovery: Advancing Life Sciences R & D. , 2472555218803064 (2018).
  2. Mirus Bio. . Optimising Transfection Performance. , (2019).
  3. Thermo Fisher Scientific. . Factors Influencing Transfection Efficiency | Thermo Fisher Scientific – FR. , (2019).
  4. Boussif, O., et al. A versatile vector for gene and oligonucleotide transfer into cells in culture and in vivo: polyethylenimine. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (16), 7297-7301 (1995).
  5. Figueroa, E., et al. A mechanistic investigation exploring the differential transfection efficiencies between the easy-to-transfect SK-BR3 and difficult-to-transfect CT26 cell lines. Journal of Nanobiotechnology. 15 (1), 36 (2017).
  6. Kirchenbuechler, I., Kirchenbuechler, D., Elbaum, M. Correlation between cationic lipid-based transfection and cell division. Experimental Cell Research. 345 (1), 1-5 (2016).
  7. Zhang, Z., Qiu, S., Zhang, X., Chen, W. Optimized DNA electroporation for primary human T cell engineering. BMC Biotechnology. 18 (1), 4 (2018).
  8. Cao, D., et al. Transfection activity and the mechanism of pDNA-complexes based on the hybrid of low-generation PAMAM and branched PEI-1.8k. Molecular bioSystems. 9 (12), 3175-3186 (2013).
  9. Bos, A. B., et al. Development of a semi-automated high throughput transient transfection system. Journal of Biotechnology. 180, 10-16 (2014).
  10. Colosimo, A., et al. Transfer and expression of foreign genes in mammalian cells. BioTechniques. 29 (2), 314-318 (2000).
  11. Villa-Diaz, L. G., Garcia-Perez, J. L., Krebsbach, P. H. Enhanced transfection efficiency of human embryonic stem cells by the incorporation of DNA liposomes in extracellular matrix. Stem Cells and Development. 19 (12), 1949-1957 (2010).
  12. Sabatini, D. M. . Reverse transfection method. , WO2001020015A1 (2001).
  13. Raymond, C., et al. A simplified polyethylenimine-mediated transfection process for large-scale and high-throughput applications. Methods (San Diego, CA). 55 (1), 44-51 (2011).
  14. Junquera, E., Aicart, E. Recent progress in gene therapy to deliver nucleic acids with multivalent cationic vectors. Advances in Colloid and Interface Science. 233, 161-175 (2016).
  15. Woodruff, K., Maerkl, S. J. A High-Throughput Microfluidic Platform for Mammalian Cell Transfection and Culturing. Scientific Reports. 6, 23937 (2016).
  16. Vasileiou, T., Foresti, D., Bayram, A., Poulikakos, D., Ferrari, A. Toward Contactless Biology: Acoustophoretic DNA Transfection. Scientific Reports. 6, 20023 (2016).
  17. Hadimioglu, B., Stearns, R., Ellson, R. Moving Liquids with Sound: The Physics of Acoustic Droplet Ejection for Robust Laboratory Automation in Life Sciences. Journal of Laboratory Automation. 21 (1), 4-18 (2016).
  18. Grant, R. J., et al. Achieving accurate compound concentration in cell-based screening: validation of acoustic droplet ejection technology. Journal of Biomolecular Screening. 14 (5), 452-459 (2009).
  19. Sackmann, E. K., et al. Technologies That Enable Accurate and Precise Nano- to Milliliter-Scale Liquid Dispensing of Aqueous Reagents Using Acoustic Droplet Ejection. Journal of Laboratory Automation. 21 (1), 166-177 (2016).
  20. Day, R. N., Davidson, M. W. The fluorescent protein palette: tools for cellular imaging. Chemical Society Reviews. 38 (10), 2887-2921 (2009).
  21. Zielinski, D., Gordon, A., Zaks, B. L., Erlich, Y. iPipet: sample handling using a tablet. Nature Methods. 11 (8), 784-785 (2014).
  22. Brunner, S., et al. Cell cycle dependence of gene transfer by lipoplex, polyplex and recombinant adenovirus. Gene Therapy. 7 (5), 401-407 (2000).
  23. Nii, T., et al. Single-Cell-State Culture of Human Pluripotent Stem Cells Increases Transfection Efficiency. BioResearch Open Access. 5 (1), 127-136 (2016).
  24. Noonan, D. J., Henry, K., Twaroski, M. L. A High-Throughput Mammalian Cell-Based Transient Transfection Assay. Signal Transduction Protocols. 284, 051-066 (2004).
  25. . . Transfection | TransIT Transfection Reagents | Mirus Bio. , (2015).
  26. American Type Culture Collection. . General protocol for transfection of stem cells, primary cells, and continuous cell lines with ATCC TransfeX Transfection Reagent. , (2017).
  27. American Type Culture Collection. . Transfection Reagents for Nucleic Acid Transfer into ATCC Cells. , (2017).
  28. de Los Milagros Bassani Molinas, M., Beer, C., Hesse, F., Wirth, M., Wagner, R. Optimizing the transient transfection process of HEK-293 suspension cells for protein production by nucleotide ratio monitoring. Cytotechnology. 66 (3), 493-514 (2014).
  29. Promega. . FuGENE® 6 Transfection Reagent. , (2019).
  30. Olden, B. R., Cheng, Y., Yu, J. L., Pun, S. H. Cationic polymers for non-viral gene delivery to human T cells. Journal of Controlled Release: Official Journal of the Controlled Release Society. 282, 140-147 (2018).
  31. Park, E., Cho, H. B., Takimoto, K. Effective gene delivery into adipose-derived stem cells: transfection of cells in suspension with the use of a nuclear localization signal peptide-conjugated polyethylenimine. Cytotherapy. 17 (5), 536-542 (2015).
  32. Wood, R. W., Loomis, A. L. The physical and biological effects of high-frequency sound-waves of great intensity. The London, Edinburgh, and Dublin Philosophical Magazine and Journal of Science. 4 (22), 417-436 (1927).
  33. Mamat, U., et al. Eliminating Endotoxin at the Source – A Novel Competent Cell Line with Modified Lipopolysaccharide for Low-Endotoxin Plasmid Production. , (2014).
  34. Ivanova, N. V., Kuzmina, M. L. Protocols for dry DNA storage and shipment at room temperature. Molecular Ecology Resources. 13 (5), 890-898 (2013).
  35. Lesnick, J., Lejeune-Dodge, A., Ruppert, N., Jarman, C. . High-Precision Cell Dispensing with the Labcyte Echo® Liquid Handler. , (2017).
  36. Yang, X., et al. A public genome-scale lentiviral expression library of human ORFs. Nature Methods. 8 (8), 659-661 (2011).
  37. Peng, J., Zhou, Y., Zhu, S., Wei, W. High-throughput screens in mammalian cells using the CRISPR-Cas9 system. The FEBS journal. 282 (11), 2089-2096 (2015).

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Citer Cet Article
Colin, B., Rocq, N., Deprez, B., Couturier, C. High-Throughput DNA Plasmid Multiplexing and Transfection Using Acoustic Nanodispensing Technology. J. Vis. Exp. (150), e59570, doi:10.3791/59570 (2019).

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