Summary

Новые Метрики к характеризации эмбриональных Удлинение нематоды<em> Caenorhabditis Элеганс</em

Published: March 28, 2016
doi:

Summary

Here we detail protocols specifically designed to monitor morphogenic defects that occur during early and late phases of embryonic elongation of the nematode Caenorhabditis elegans. Ultimately, these protocols are designed to identify genes that regulate these phases and to characterize their differential requirements along the antero-posterior axis of the embryo.

Abstract

Dissecting the signaling pathways that control the alteration of morphogenic processes during embryonic development requires robust and sensitive metrics. Embryonic elongation of the nematode Caenorhabditis elegans is a late developmental stage consisting of the elongation of the embryo along its longitudinal axis. This developmental stage is controlled by intercellular communication between hypodermal cells and underlying body-wall muscles. These signaling mechanisms control the morphology of hypodermal cells by remodeling the cytoskeleton and the cell-cell junctions. Measurement of embryonic lethality and developmental arrest at larval stages as well as alteration of cytoskeleton and cell-cell adhesion structures in hypodermal and muscle cells are classical phenotypes that have been used for more than 25 years to dissect these signaling pathways. Recent studies required the development of novel metrics specifically targeting either early or late elongation and characterizing morphogenic defects along the antero-posterior axis of the embryo. Here, we provide detailed protocols enabling the accurate measurement of the length and the width of the elongating embryos as well as the length of synchronized larvae. These methods constitute useful tools to identify genes controlling elongation, to assess whether these genes control both early and late phases of this stage and are required evenly along the antero-posterior axis of the embryo.

Introduction

В течение почти 50 лет нематод Caenorhabditis Элеганс зарекомендовал себя как мощная модель для изучения важных вопросов в области развития, нейробиологии, эволюции, хозяин-патоген взаимодействий и т.д. 1 Сила этой модели в изучении развития заключается в: его короткого жизненного цикла от 3-х дней; легкость, с которой эти животные могут быть генетически изменены; его прозрачность, что позволяет наблюдать клетки перемещения и морфологии в живых животных и его развития, что в основном внематочная. Стадии развития нематоды включают эмбриогенеза и четыре личиночной стадии (L1 до L4), а затем во взрослую жизнь. Во время эмбрионального развития, эпидермальный морфогенез привлек значительное внимание на его способность дать возможность лучше понять, как эпителиальные клетки мигрируют в качестве группы, как они реорганизовать их соединений и изменять свою индивидуальную морфологию, а также их взаимное расположение в пределах функционального эпителия.Эпидермальный морфогенез делится на четыре этапа: спинной интеркаляции, состоящий в реорганизации спинные эпидермальных клеток, называют гиподермой; вентральной корпус, заключающийся в миграции брюшных гиподермальных клеток по направлению к вентральной срединной линии, таким образом, герметизирующей эмбриона в эпителиального клеточного монослоя; раннего и позднего Удлинение трансформации фасолевидных эмбриона в червеобразный личинок. Вслед за морфогенез, эмбрион люк и личинки начинают питаться L1 с использованием имеющихся бактерий в их непосредственном окружении.

Поэтому эмбриональных удлинение является поздней стадии эмбрионального развития. Она состоит из расширения зародыша вдоль его продольной оси, и уменьшение его поперечного диаметра. Это предполагает значительное изменение формы гиподермальных клеток. Удлинение делится на ранний и поздний фазы. Ранняя фаза начинается на стадии разделителями и заканчивается , когда стенки тела мышцы начинают договаривающиеся в 1,75 раза стадии шИСД типа (вес) эмбрионов – эмбрионов , соответствующие которые являются 1,75 раза в длине по сравнению с не-удлиненная эмбрионов. Морфогенетические процессы , происходящие на этой стадии, в основном за счет сокращения нитевидных актина пучков (FBS) , расположенных на апикальном полюсе гиподермальных клеток , которые управляют их удлинение вдоль передне-задней оси эмбриона 2. Сужение FBs является контроль с помощью фосфорилирования миозина свет цепи тремя киназ LET-502 / ROCK, MRCK-1 и ПАК-1 5. Поздняя стадия удлинения, начинается, когда стенки тела мышцы становятся функциональными и начинают сокращаться. Она включает в себя сигнализацию механотрансдукция от стенки тела мышц к спинному и брюшные гиподермальных клеток и заканчивается , когда животные люк 3.

Удлинение дефекты, как правило, характеризуются процент животных, умирающих эмбрионов (эмбриональной летальности; Emb) и те, арестовывая их развития как личинок L1 (фенотип личинок арест; Lvа) и быть значительно короче , чем вес. Определение стадии развития требует ареста микроскопического наблюдения мертвых эмбрионов и арестовал личинками 3-6.

Недавно было показано , что некоторые гены, такие как регулятор Cdc42 / Rac и эффекторной PIX-1 и пак-1, контролировать процессы морфогенные как во время раннего и позднего удлинения 3,7. Недавно мы также показали , что морфогенетические процессы отличаются вдоль передне-задней оси эмбрионов на ранних стадиях удлинения 3 7. Эти результаты побудили разработку новых показателей, конкретно ориентированных на ранних или поздних стадий удлинения и другие показатели, позволяющие характеристику морфологии эмбрионов вдоль их передне-задней оси во время раннего удлинения.

Эти новые методы состоят в измерении длины эмбрионов в начале и в конце раннего удлинения, а также ширины их онобъявления и хвосты. 7 Два протоколы были разработаны для измерения длины только что вылупившихся личинок, синхронизированный на L1 стадии 7.

В скорлупа из эмбрионов защищают их от щелочной обработки гипохлоритом в то время как личинки, взрослые и бактерии, присутствующие в культуральной среде растворены обработкой. Эта процедура затем используется для очистки эмбрионов из несинхронизированной населения , содержащей большинство сытых взрослых 8. Ограничение еды используется для синхронизации только что вылупившихся личинок. Измерение длины этих личинок затем используется для обнаружения дефектов удлинения. Это измерение предпочтительнее измерения задержанных в развитии личинок на культуральных планшетах, так как личинки, которые вылупляются из не полностью удлиненные эмбрионы могут восстановить до "нормальной длины" при кормлении, но будет поддерживать их уменьшенные размеры при задержании при отсутствии пищи.

Здесь мы приводим подробные протоколы, позволяющие измерение леngth из удлиняя эмбрионов, а также ширину их головы и хвоста, используя замедленную DIC микроскопии и анализа изображений (Протокол 1). Мы также предоставляем подробные протоколы для измерения длины синхронизированной личинок с использованием анализа изображений (Протокол 2) и проточной цитометрии (протокол 3).

Protocol

1. Характеристика раннего Дефекты Растяжимость в WT и мутантных животных Монтаж Эмбрионы для Normarski DIC микроскопии Подготовьте следующие питательные среды и материалы: М9 Буфер, растворить 12,8 г / л Na 2 HPO 4 • 7H 2 O, 3 г / л KH 2 PO 4, 5 г / л NaCl, …

Representative Results

Глава-, задка и Head / Хвост ширине прочны Метрики. Описанные здесь протоколы были успешно использованы для характеристики функции регуляторов и эффекторов Rho GTPa…

Discussion

Этот протокол описывает новые метрики, чтобы охарактеризовать ранние и поздние фазы эмбрионального удлинения.

В разделе 1, важным шагом является потенциальное присутствие бактерий на площадке. Эмбрионы герметично заключены между колодкой и покровного во время захвата…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by grants from the Natural Sciences and Engineering Research Council (NSERC) of Canada and The Canada Foundation for Innovation. Thanks to Dr Paul Mains (University of Calgary, Calgary, Canada) for let-502(sb118ts) strain. Some of the strains were provided by the Caenorhabditis Genetics Center, which is funded by NIH Office of Research Infrastructure Programs (P40 OD010440).

Materials

Agar  BioShop AGR001.500
Agarose Bioshop AGA001.500
CaCl2 (calcium chloride) Bio Basic Inc. CT1330
Cholesterol Sigma-aldrich C8667
cleaning solution  union Biometrica 300-5072-000
glass coverslips Fisherbrand 12-542B
glass slides Fisherbrand 12-552-3
high fluorescent control particles union Biometrica 310-5071-001
K2HPO4 (potassium phosphate, dibasic) Bio Basic Inc. PB0447
KH2PO4 (potassium phosphate, monobasic) Bio Basic Inc. PB0445
MgSO4 (magnesium sulfate) Sigma-aldrich 230391
Na2HPO4( sodium phosphate, dibasic) Bio Basic Inc. SDB0487
NaCl (sodium chloride) Bio Basic Inc. DB0483
Pebeo Drawing Gum 45ml pébéo PDG033000 any art/craft store
Peptone BioShop PEP403.500
Sheath buffer union Biometrica 300-5070-100
COPAS Biosort union Biometrica

References

  1. Corsi, A. K., Wightman, B., Chalfie, M. A Transparent Window into Biology: A Primer on Caenorhabditis elegans. Génétique. 200, 387-407 (2015).
  2. Priess, J. R., Hirsh, D. I. Caenorhabditis elegans morphogenesis: the role of the cytoskeleton in elongation of the embryo. Developmental biology. 117, 156-173 (1986).
  3. Zhang, H., et al. A tension-induced mechanotransduction pathway promotes epithelial morphogenesis. Nature. 471, 99-103 (2011).
  4. Diogon, M., et al. The RhoGAP RGA-2 and LET-502/ROCK achieve a balance of actomyosin-dependent forces in C. elegans epidermis to control morphogenesis. Development. 134, 2469-2479 (2007).
  5. Gally, C., et al. Myosin II regulation during C. elegans embryonic elongation: LET-502/ROCK, MRCK-1 and PAK-1, three kinases with different roles. Development. 136, 3109-3119 (2009).
  6. Piekny, A. J., Wissmann, A., Mains, P. E. Embryonic morphogenesis in Caenorhabditis elegans integrates the activity of LET-502 Rho-binding kinase, MEL-11 myosin phosphatase, DAF-2 insulin receptor and FEM-2 PP2c phosphatase. Génétique. 156, 1671-1689 (2000).
  7. Martin, E., et al. pix-1 controls early elongation in parallel with mel-11 and let-502 in Caenorhabditis elegans. PloS one. 9, e94684 (2014).
  8. Sulston, J., Hodgkin, J., Wood, W. B. . Methods. , 587-606 (1988).
  9. Andersen, E. C., et al. A Powerful New Quantitative Genetics Platform, Combining Caenorhabditis elegans High-Throughput Fitness Assays with a Large Collection of Recombinant Strains. G3 (Bethesda). 5, 911-920 (2015).
  10. Boulier, E. L., Jenna, S. Genetic dissection of Caenorhabditis elegans embryogenesis using RNA interference and flow cytometry. Methods Mol Biol. 550, 181-194 (2009).
  11. Verster, A. J., Ramani, A. K., McKay, S. J., Fraser, A. G. Comparative RNAi screens in C. elegans and C. briggsae reveal the impact of developmental system drift on gene function. PLoS genetics. 10, e1004077 (2014).
  12. Ramani, A. K., et al. The majority of animal genes are required for wild-type fitness. Cell. 148, 792-802 (2012).
  13. So, S., Miyahara, K., Ohshima, Y. Control of body size in C. elegans dependent on food and insulin/IGF-1 signal. Genes to cells : devoted to molecular & cellular mechanisms. 16, 639-651 (2011).
  14. Dineen, A., Gaudet, J. TGF-beta signaling can act from multiple tissues to regulate C. elegans body size. BMC developmental biology. 14, 43 (2014).
  15. Tan, L., Wang, S., Wang, Y., He, M., Liu, D. Bisphenol A exposure accelerated the aging process in the nematode Caenorhabditis elegans. Toxicology letters. 235, 75-83 (2015).
  16. Yu, Z., Yin, D., Deng, H. The combinational effects between sulfonamides and metals on nematode Caenorhabditis elegans. Ecotoxicology and environmental safety. 111, 66-71 (2015).

Play Video

Citer Cet Article
Martin, E., Rocheleau-Leclair, O., Jenna, S. Novel Metrics to Characterize Embryonic Elongation of the Nematode Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (109), e53712, doi:10.3791/53712 (2016).

View Video