Summary

Benmargstransplantasjonsplattform for å undersøke rollen til dendrittiske celler i graft-versus vertssykdom

Published: March 17, 2020
doi:

Summary

Graft-versus-host sykdom er en stor komplikasjon etter allogen benmargstransplantasjon. Dendrittiske celler spiller en kritisk rolle i patogenesen av graft-versus-host sykdom. Den nåværende artikkelen beskriver en ny benmargstransplantasjonsplattform for å undersøke rollen som dendrittiske celler i utviklingen av graft-versus-host sykdom og graft-versus-leukemi effekt.

Abstract

Allogene benmargstransplantasjon (BMT) er en effektiv terapi for hematologiske maligniteter på grunn av graft-versus-leukemi (GVL) effekt for å utrydde svulster. Imidlertid er søknaden begrenset av utviklingen av graft-versus-host sykdom (GVHD), en stor komplikasjon av BMT. GVHD fremkalles når T-celler i donortransplantatene gjenkjenner alloantigen uttrykt av mottakerceller og monterer uønskede immunologiske angrep mot mottakerens friske vev. Dermed er tradisjonelle terapier designet for å undertrykke donor T-celle alloreactivity. Disse tilnærmingene svekker imidlertid GVL-effekten vesentlig slik at mottakerens overlevelse ikke forbedres. Å forstå effekten av terapeutiske tilnærminger på BMT, GVL og GVHD, er dermed viktig. På grunn av antigen-presentere og cytokin-utskillekapasitet for å stimulere donor T-celler, mottaker dendrittiske celler (DCs) spille en betydelig rolle i induksjon av GVHD. Målretting mottaker DCs blir derfor en potensiell tilnærming for å kontrollere GVHD. Dette arbeidet gir en beskrivelse av en ny BMT-plattform for å undersøke hvordan verts-DCer regulerer GVH- og GVL-svar etter transplantasjon. Også presentert er en effektiv BMT modell for å studere biologien til GVHD og GVL etter transplantasjon.

Introduction

Allogene hematopoietiske stamcelletransplantasjon (BMT) er en effektiv terapi for å behandle hematologiske maligniteter1,2 gjennom graft-versus-leukemi (GVL) effekt3. Donorlymfocytter monterer imidlertid alltid uønskede immunologiske angrep mot mottakervev, en prosess som kalles graft-versus-host sykdom (GVHD)4.

Murine modeller av GVHD er et effektivt verktøy for å studere biologien til GVHD og GVL respons5. Mus er en kostnadseffektiv forskningsdyrmodell. De er små og effektivt dosert med molekyler og biologer i tidlige faser av utvikling6. Mus er ideelle forskningsdyr for genetiske manipulasjonsstudier fordi de er genetisk godt definert, noe som er ideelt for å studere biologiske veier og mekanismer6. Flere mus store histokompatibilitet kompleks (MHC) MHC-mismatchet modeller av GVHD har blitt godt etablert, for eksempel C57BL/6 (H2b) til BALB/c (H2d) og FVB (H2q)→C57BL/6 (H2b)5,7. Dette er spesielt verdifulle modeller for å bestemme rollen til individuelle celletyper, gener og faktorer som påvirker GVHD. Transplantasjon fra C57/BL/6 (H2b) foreldregivere til mottakere med mutasjoner i MHC I (B6.C-H2bm1) og/eller MHC II (B6.C-H2bm12) viste at en mismatch i både MHC klasse I og klasse II er et viktig krav for utvikling av akutt GVHD. Dette tyder på at både CD4+ og CD8+ T-celler er nødvendig for sykdomsutvikling7,8. GVHD er også involvert i en inflammatorisk kaskade kjent som den “proinflammatoriske cytokinstormen”9. Den vanligste kondisjoneringsmetoden i murine-modeller er total kroppsbestråling (TBI) av røntgen eller 137Cs. Dette fører til mottakerens benmargsablasjon, og dermed tillater donor stamcelleengraftment og forhindrer avvisning av transplantatet. Dette gjøres ved å begrense spredningen av mottaker T-celler som svar på donorceller. I tillegg spiller genetiske forskjeller en viktig rolle i sykdomsinduksjon, som også avhenger av mindre MHC-mismatch10. Myeloablatisk bestrålingsdose varierer derfor i forskjellige musestammer (f.eks. BALB/c→C57BL/6).

Aktivering av donor T-celler ved vert antigen presentere celler (APCer) er avgjørende for GVHD utvikling. Blant APCene er dendrittceller (DCer) de mest potente. De er arvelig i stand til å indusere GVHD på grunn av deres overlegne antigenopptak, uttrykk for T-celle co-stimulerende molekyler, og produksjon av proinflammatoriske cytokiner som polariserer T-celler i patogene undergrupper. Mottaker DCer er avgjørende for å legge til rette for T-celle priming og GVHD induksjon etter transplantasjon11,12. Følgelig har DCs blitt interessante mål i behandlingen av GVHD12.

TBI er nødvendig for å forbedre donorcelleinnpode. På grunn av TBI-effekten aktiveres mottaker-DCer og overlever i kort tid etter transplantasjonen12. Til tross for store fremskritt i bruk av bioluminescens eller fluorescens, etablere en effektiv modell for å studere rollen som mottaker DCs i GVHD er fortsatt utfordrende.

Fordi donor T-celler er drivkraften for GVL aktivitet, behandling strategier ved hjelp av immunsuppressive legemidler som steroider for å undertrykke T-celle alloreaktivitet ofte føre til tumor tilbakefall eller infeksjon13. Målretting mottaker DCs kan derfor gi en alternativ tilnærming til å behandle GVHD samtidig bevare GVL-effekten og unngå infeksjon.

Kort sagt, den nåværende studien gir en plattform for å forstå hvordan ulike typer signalering i mottaker-DCer regulerer GVHD-utvikling og GVL-effekten etter BMT.

Protocol

De eksperimentelle prosedyrene ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee of University of Central Florida. 1. GVHD Induksjon MERK: Allogene benmarg (BM) celletransplantasjon (trinn 1.2) utføres innen 24 timer etter bestråling. Alle prosedyrer beskrevet nedenfor utføres i et sterilt miljø. Utfør prosedyren i en vevskulturhette og bruk filtrerte reagenser. Dag 0: Forbered mottakermusene. Bruk kvinnelige villtypemus (WT) på en …

Representative Results

Den store MHC-mismatched B6 (H2kb)-BALB/C (H2kd) modellen nært korresponderte med GVHD utvikling etter transplantasjon (Figur 2). Alle seks GVHD kliniske tegn etablert tidligere av Cooke et al.16 forekom hos mottakerne transplantert med WT-B6 T-celler, men ikke hos mottakerne transplantert med BM alene (trinn 1.5), som representerte GVHD-negativ gruppe. Det er to faser i GVHD utvikling i denne modellen. For det f…

Discussion

Bruken av stamceller som passer til en bestemt person er en effektiv tilnærming til å behandle avanserte og resistente kreftformer18. Små molekyllegemidler har imidlertid lenge vært et hovedfokus for personlig kreftbehandling. På den annen side, i cellulær terapi kan en rekke interaksjoner mellom donor og vert avgjørende påvirke behandlingsresultatene, for eksempel utviklingen av GVHD etter BMT1.

Store MHC-mismatched musemodeller av BMT e…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien støttes av University of Central Florida College of Medicine oppstartsstipend (til HN), University of Pittsburgh Medical Center Hillman Cancer Center oppstartsstipend (til HL), USA NIH Grant #1P20CA210300-01 og vietnamesiskhelsedepartementet Grant #4694 / QD-BYT (til PTH). Vi takker Dr. Xue-zhong Yu ved Medical University of South Carolina for å gi materialer til studien.

Materials

0.5 M EDTA pH 8.0 100ML Fisher Scientific BP2482100 MACS buffer
10X PBS Fisher Scientific BP3994 MACS buffer
A20 B-cell lymphoma University of Central Florida In house GVL experiment
ACC1 fl/fl Jackson Lab 30954 GVL experiment
ACC1 fl/fl CD4cre University of Central Florida GVL experiment
Anti-Biotin MicroBeads Miltenyi Biotec 130-090-485 T-cell enrichment
Anti-Human/Mouse CD45R (B220) Thermo Fisher Scientific 13-0452-85 T-cell enrichment
Anti-mouse B220 FITC Thermo Fisher Scientific 10452-85 Flow cytometry analysis
Anti-mouse CD11c- AF700 Thermo Fisher Scientific 117319 Flow cytometry analysis
Anti-Mouse CD25 PE Thermo Fisher Scientific 12-0251-82 Flow staining
Anti-Mouse CD4 Biotin Thermo Fisher Scientific 13-0041-86 T-cell enrichment
Anti-Mouse CD4 eFluor® 450 (Pacific Blue® replacement) Thermo Fisher Scientific 48-0042-82 Flow staining
Anti-mouse CD45.1 PE Thermo Fisher Scientific 12-0900-83 Flow cytometry analysis
Anti-Mouse CD8a APC Thermo Fisher Scientific 17-0081-83 Flow cytometry analysis
Anti-mouse H-2Kb PerCP-Fluor 710 Thermo Fisher Scientific 46-5958-82 Flow cytometry analysis
Anti-mouse MHC Class II-antibody APC Thermo Fisher Scientific 17-5320-82 Flow cytometry analysis
Anti-Mouse TER-119 Biotin Thermo Fisher Scientific 13-5921-85 T-cell enrichment
Anti-Thy1.2 Bio Excel BE0066 BM generation
B6 fB-/- mice University of Central Florida In house Recipients
B6.Ly5.1 (CD45.1+) mice Charles River 564 Donors
BALB/c mice Charles River 028 Transplant recipients
C57BL/6 mice Charles River 027 Donors/Recipients
CD11b Thermo Fisher Scientific 13-0112-85 T-cell enrichment
CD25-biotin Thermo Fisher Scientific 13-0251-82 T-cell enrichment
CD45R Thermo Fisher Scientific 13-0452-82 T-cell enrichment
CD49b Monoclonal Antibody (DX5)-biotin Thermo Fisher Scientific 13-5971-82 T-cell enrichment
Cell strainer 40 uM Thermo Fisher Scientific 22363547 Cell preparation
Cell strainer 70 uM Thermo Fisher Scientific 22363548 Cell preparation
D-Luciferin Goldbio LUCK-1G Live animal imaging
Fetal Bovine Serum (FBS) Atlanta Bilogicals R&D system D17051 Cell Culture
Flow cytometry tubes Fisher Scientific 352008 Flow cytometry analysis
FVB/NCrl Charles River 207 Donors
Lipopolysacharide (LPS) Millipore Sigma L4391-1MG DC mature
LS column Mitenyi Biotec 130-042-401 Cell preparation
MidiMACS Miltenyi Biotec 130-042-302 T-cell enrichment
New Brunswick Galaxy 170R incubator Eppendorf Galaxy 170 R Cell Culture
Penicilin+streptomycinPenicillin/Streptomycin (10,000 units penicillin / 10,000 mg/ml strep) GIBCO 15140 Media
RPMI 1640 Thermo Fisher Scienctific 11875-093 Media
TER119 Thermo Fisher Scientific 13-5921-82 T-cell enrichment
Xenogen IVIS-200 Perkin Elmer Xenogen IVIS-200 Live animal imaging
X-RAD 320 Biological Irradiator Precision X-RAY X-RAD 320 Total Body Irradiation

Referencias

  1. Shlomchik, W. D. Graft-versus-host disease. Nature Reviews Immunology. 7, 340-352 (2007).
  2. Appelbaum, F. R. Haematopoietic cell transplantation as immunotherapy. Nature. 411, 385-389 (2001).
  3. Blazar, B. R., Murphy, W. J., Abedi, M. Advances in graft-versus-host disease biology and therapy. Nature Reviews Immunology. 12, 443-458 (2012).
  4. Pasquini, M. C., Wang, Z., Horowitz, M. M., Gale, R. P. 2010 report from the Center for International Blood and Marrow Transplant Research (CIBMTR): current uses and outcomes of hematopoietic cell transplants for blood and bone marrow disorders. Clinical Transplantation. , 87-105 (2010).
  5. Schroeder, M. A., DiPersio, J. F. Mouse models of graft-versus-host disease: advances and limitations. Disease Model & Mechanism. 4, 318-333 (2011).
  6. Graves, S. S., Parker, M. H., Storb, R. Animal Models for Preclinical Development of Allogeneic Hematopoietic Cell Transplantation. ILAR Journal. , ily006 (2018).
  7. Sprent, J., Schaefer, M., Korngold, R. Role of T cell subsets in lethal graft-versus-host disease (GVHD) directed to class I versus class II H-2 differences. II. Protective effects of L3T4+ cells in anti-class II GVHD. Journal of Immunology. 144, 2946-2954 (1990).
  8. Rolink, A. G., Radaszkiewicz, T., Pals, S. T., van der Meer, W. G., Gleichmann, E. Allosuppressor and allohelper T cells in acute and chronic graft-vs-host disease. I. Alloreactive suppressor cells rather than killer T cells appear to be the decisive effector cells in lethal graft-vs.-host disease. The Journal of Experimental Medicine. 155, 1501-1522 (1982).
  9. Lu, Y., Waller, E. K. Dichotomous role of interferon-gamma in allogeneic bone marrow transplant. Biology of Blood and Marrow Transplantation. 15, 1347-1353 (2009).
  10. Abdollahi, A., et al. Inhibition of platelet-derived growth factor signaling attenuates pulmonary fibrosis. The Journal of Experimental Medicine. 201, 925-935 (2005).
  11. Banchereau, J., Steinman, R. M. Dendritic cells and the control of immunity. Nature. 392, 245-252 (1998).
  12. Stenger, E. O., Turnquist, H. R., Mapara, M. Y., Thomson, A. W. Dendritic cells and regulation of graft-versus-host disease and graft-versus-leukemia. Blood. 119, 5088-5103 (2012).
  13. Ullmann, A. J., et al. Posaconazole or fluconazole for prophylaxis in severe graft-versus-host disease. New England Journal of Medicine. 356, 335-347 (2007).
  14. Dittel, B. N. Depletion of specific cell populations by complement depletion. Journal of Visualized Experiments. , (2010).
  15. Nguyen, H. D., et al. Metabolic reprogramming of alloantigen-activated T cells after hematopoietic cell transplantation. Journal of Clinical Investigation. 126, 1337-1352 (2016).
  16. Cooke, K. R., et al. An experimental model of idiopathic pneumonia syndrome after bone marrow transplantation: I. The roles of minor H antigens and endotoxin. Blood. 88, 3230-3239 (1996).
  17. Nguyen, H., et al. Complement C3a and C5a receptors promote GVHD by suppressing mitophagy in recipient dendritic cells. Journal of Clinical Investigation Insight. 3, (2018).
  18. McNutt, M. Cancer immunotherapy. Science. 342, 1417 (2013).
  19. Negrin, R. S., Contag, C. H. In vivo imaging using bioluminescence: a tool for probing graft-versus-host disease. Nature Reviews in Immunology. 6, 484-490 (2006).
  20. Roy, D. C., Perreault, C. Major vs minor histocompatibility antigens. Blood. 129, 664-666 (2017).
  21. Gendelman, M., et al. Host conditioning is a primary determinant in modulating the effect of IL-7 on murine graft-versus-host disease. Journal of Immunology. 172, 3328-3336 (2004).
  22. Li, J., et al. HY-Specific Induced Regulatory T Cells Display High Specificity and Efficacy in the Prevention of Acute Graft-versus-Host Disease. Journal of Immunology. 195, 717-725 (2015).
  23. Zeiser, R., et al. Early CD30 signaling is critical for adoptively transferred CD4+CD25+ regulatory T cells in prevention of acute graft-versus-host disease. Blood. 109, 2225-2233 (2007).
  24. Sadeghi, B., et al. GVHD after chemotherapy conditioning in allogeneic transplanted mice. Bone Marrow Transplant. 42, 807-818 (2008).

Play Video

Citar este artículo
Nguyen, H. D., Huong, P. T., Hossack, K., Gurshaney, S., Ezhakunnel, K., Huynh, T., Alvarez, A. M., Le, N., Luu, H. N. Bone Marrow Transplantation Platform to Investigate the Role of Dendritic Cells in Graft-versus-Host Disease. J. Vis. Exp. (157), e60083, doi:10.3791/60083 (2020).

View Video