Summary

Fange hjerteskaderesponsen til målrettede cellepopulasjoner via ryddet hjerte tredimensjonal avbildning

Published: March 17, 2020
doi:

Summary

Kardiomycyttspredning etter skade er en dynamisk prosess som krever en symfoni av ekstracellulære signaler fra ikke-myocyttercellepopulasjoner. Ved hjelp av avstamningssporing, passiv CLARITY og tredimensjonale helmonteringskonfokalmikroskopiteknikker kan vi analysere påvirkningen av en rekke celletyper på hjertereparasjon og regenerering.

Abstract

Kardiovaskulær sykdom overgår alle andre dødsårsaker og er ansvarlig for svimlende 31% av dødeligheten over hele verden. Denne sykdommen manifesterer seg i hjerteskade, hovedsakelig i form av akutt hjerteinfarkt. Med liten motstandskraft etter skade, vil det en gang friske hjertevevet bli erstattet av fibrøse, ikke-kontraktile arrvev og ofte være et forspill til hjertesvikt. For å identifisere nye behandlingsalternativer i regenerativ medisin, har forskning fokusert på virveldyr med medfødte regenerative evner. En slik modell organisme er neonatal mus, som reagerer på hjerteskade med robust hjerteinfarkt regenerering. For å indusere en skade i neonatal mus som er klinisk relevant, har vi utviklet en operasjon for å okkta venstre fremre synkende arterie (LAD), speiling en hjerteinfarkt utløst av aterosklerose i det menneskelige hjerte. Når matchet med teknologien for å spore endringer både innen kardiomyocytter og ikke-myocytter populasjoner, gir denne modellen oss en plattform for å identifisere mekanismene som styrer hjerteregenerering. Få innsikt i endringer i hjertecellepopulasjoner etter skade en gang var sterkt avhengig av metoder som vevssnitting og histologisk undersøkelse, som er begrenset til todimensjonal analyse og ofte skader vevet i prosessen. Videre mangler disse metodene muligheten til å spore endringer i cellelinjer, i stedet gir bare et øyeblikksbilde av skaderesponsen. Her beskriver vi hvordan teknologisk avanserte metoder i avstamningssporingsmodeller, hele organrydding og tredimensjonal (3D) helmontert mikroskopi kan brukes til å belyse mekanismer for hjertereparasjon. Med vår protokoll for neonatal mus hjerteinfarkt kirurgi, vev clearing, og 3D hele organ imaging, de komplekse veier som induserer kardiomyocyte spredning kan raknes, avsløre nye terapeutiske mål for hjerte regenerering.

Introduction

Hjertet har lenge vært ansett for å være et post-mitotisk organ, men nyere bevis viser at kardiomyocytter fornyelse forekommer i voksen menneskelig hjerte på ca 1% per år1. Imidlertid er disse lave frekvensene av kardiomycyttomsetning utilstrekkelig til å fylle det massive tapet av vev som oppstår etter skade. Et hjerte som har lidd en hjerteinfarkt vil miste rundt en milliard kardiomyocytter, ofte fungerer som et forspill til hjertesvikt og plutselig hjertedød2,3. Med over 26 millioner mennesker rammet av hjertesvikt over hele verden, er det et udekket behov for terapeutiske midler som kan reversere skadene påført av hjertesykdom4.

For å bygge bro over dette gapet i terapeutiske midler, har forskere begynt å undersøke evolusjonært bevarte mekanismer som ligger til grunn for endogen regenerering etter skade. En modell for å studere pattedyr hjerteregenerering er neonatal musen. I løpet av uken etter fødselen har nyfødte mus en robust regenerativ respons etter hjerteskade5. Vi har tidligere vist at neonatalmus kan regenerere sitt hjerte via kardiomycyttspredning etter en apikal reseksjon5. Selv om denne teknikken kan fremkalle hjerteregenerering i nyfødte, mangler operasjonen klinisk relevans for menneskelige hjerteskader. For å etterligne en menneskelig skade i neonatal musemodell, har vi utviklet en teknikk for å indusere et hjerteinfarkt gjennom en koronarokklusjon6. Denne teknikken krever kirurgisk ligation av venstre geerior synkende arterie (LAD), som er ansvarlig for å levere 40%-50% av blodet til venstre ventrikulær myokardiet6,7. Dermed resulterer operasjonen i en infarkt som påvirker en betydelig del av venstre ventrikulær vegg. Denne skaden på myokardiet vil stimulere kardiomycytt spredning og hjerte regenerering i nyfødte5.

Koronararterienokklusjonkirurgi gir en svært reproduserbar og direkte translasjonell metode for å avdekke den indre driften av hjerteregenerering. Neonatal kirurgi paralleller koronar aterosklerose i det menneskelige hjerte, hvor akkumulering av plakk innenfor de indre veggene i arteriene kan forårsake en okklusjon og påfølgende hjerteinfarkt8. På grunn av et tomrom i terapeutiske behandlinger for hjertesviktpasienter, er en okklusjon i LAD forbundet med dødelighet som når opp til 26% innen et år etter skade9, og følgelig har blitt kalt “enkemakeren”. Fremskritt i terapeutiske midler krever en modell som nøyaktig gjenspeiler de komplekse fysiologiske og patologiske effektene av hjerteskade. Vår kirurgiske protokoll for neonatal mus hjerteskade gir en plattform som gjør det mulig for forskere å undersøke molekylære og cellulære signaler som signaliserer pattedyr hjerteregenerering etter skade.

Nyere forskning fremhever det dynamiske forholdet mellom det ekstracellulære miljøet og prolifererende kardiomyocytter. For eksempel kan det postnatale regenerative vinduet forlenges ved å redusere stivheten til den ekstracellulære matrisen rundt hjertet10. Biomaterialer fra neonatal extracellulær matrise kan også fremme hjerteregenerering hos voksne pattedyrhjerter etter hjerteskade11. Også medkardiomyocytter proliferasjon er en angiogen respons12,13; sikkerhet arterie dannelse unik for regenererende hjertet av neonatal musen ble vist å være avgjørende for å stimulere hjerte regenerering12. Videre har vårt laboratorium vist at nervesignalering regulerer kardiomycyttspredning og hjerteregenerering via modulering av vekstfaktornivåer, samt den inflammatoriske responsen etter skade14. Disse funnene understreker behovet for å spore ikke-myocytter cellepopulasjoner som svar på hjerteskade. For å oppnå dette målet har vi benyttet oss av Cre-lox rekombinasjonssystemet i transgene muslinjer for å innlemme konstitutivt eller betinget uttrykk for fluorescerende reporterproteiner for avstamningssporing. Videre kan vi bruke avanserte metoder for å bestemme klonal ekspansjonsmønster med Rainbow-muselinjen, som er avhengig av stokastisk uttrykk for de Cre-avhengige, multifargede fluorescerende journalistene for å bestemme klonal utvidelse av målrettede cellepopulasjoner15. Å bruke avstamning sporing med neonatal koronar okklusjon kirurgi er et kraftig verktøy for dissekering intrikate cellulære mekanismer for hjerteregenerering.

Sporing av avstamning av fluorescerende merkede celler med tredimensjonale (3D) hele organavbildning er vanskelig å oppnå ved hjelp av tradisjonell snitting og rekonstruksjonsteknikk – spesielt når cellepopulasjoner er skjøre, for eksempel nervefibre eller blodkar. Mens direkte hele mount avbildning av orgelet ved optisk snitting kan fange overfladiske cellepopulasjoner, strukturer som bor dypt inne i vevet forblir utilgjengelig. For å omgå disse barrierene, vev clearing teknikker har blitt utviklet for å redusere opasitet av hele organvev. Nylig har det blitt gjort betydelige fremskritt for å fjerne lipid-utvekslet akrylamid-hybridisert Rigid Imaging kompatibel Tissue hYdrogel (CLARITY)-baserte metoder, som fjerner fast vev via lipid utvinning16. Det iverksettes også tiltak for å homogenisere brytningsindeksen og deretter redusere lysspredning mens bildebehandling17. En slik metode er aktiv CLARITY, som fremskynder lipidnedbrytning ved hjelp av elektroforese for å trenge inn i vaskemiddelet gjennom hele vevet18. Selv om effektiv, krever denne vevsfjerningsmetoden dyrt utstyr og kan forårsake vevsskade, noe som gjør tilnærmingen uforenlig med skjøre cellepopulasjoner som hjertenervene19. Dermed bruker vi den passive CLARITY-tilnærmingen, som er avhengig av varme for å forsiktig lette vaskemiddelpenetrasjon, og hjelper derfor til oppbevaring av intrikate cellestrukturer20,,21.

Passiv KLARHET er vanligvis antatt å være mindre effektiv enn aktiv CLARITY18, da teknikken ofte ledsages av to store hindringer: manglende evne til å fjerne hele organdybden og den omfattende tiden som kreves for å fjerne voksent vev. Vår passive CLARITY-tilnærming overvinner begge disse barrierene med en fremskyndet clearingprosess som er i stand til å fullstendig rydde neonatal og voksent hjertevev. Vår passive CLARITY vevingsteknikk har nådd en effektivitet som tillater visualisering av en rekke hjertecellepopulasjoner, inkludert sjeldne populasjoner distribuert over hele det voksne hjertet. Når det ryddet hjertet er avbildet med konfokal mikroskopi, kan arkitekturen av cellespesifikk mønster under utvikling, sykdom og regenerering belyses.

Protocol

Alle eksperimenter ble utført i samsvar med Guide for bruk og omsorg for laboratoriedyr og i samsvar med Institutional Animal Care and Use Committee i School of Medicine and Public Health ved University of Wisconsin-Madison. Alle metoder ble utført på vill type C57BL/6J (B6) og transgene muselinjer hentet fra Jackson Laboratories. 1. Koronararterie okklusjon (hjerteinfarkt) Indusert via Ligation av venstre anterior synkende arterie (LAD) i 1-dagers gamle neonatal mus6<…

Representative Results

Ofte styrer de to mest utfordrende trinnene hjertet ut av brysthulen og ligating LAD. For å feilsøke disse trinnene, kan justeringer gjøres i plassering av den første punkteringen mellom de fjerde interkostale musklene; hvis punktering og sløv disseksjon er for nær i nærheten av brystbenet, kan hjertet ikke være i stand til å gå ut av brysthulen (Figur 1A). I tillegg kan økt trykk på venstre underliv være nødvendig for å lette denne…

Discussion

Cellecelleinteraksjoner mellom kardiomyocytter og ikke-myocytter populasjoner er en avgjørende faktor for om hjertet vil gjennomgå fibrose eller reparere etter skade. Funn har blitt gjort som viser at en rekke celletyper, inkludert nerver14, epikardiale celler24, peritoneal makrofager25, arterioler12,13, og lymfatiske endotelceller26, alle spiller en viktig rolle i ?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Finansieringen av dette prosjektet ble gitt av UW School of Medicine and Public Health fra Wisconsin Partnership Program (A.I.M.), og en American Heart Association Career Development Award 19CDA34660169 (A.I.M.).

Materials

1-thioglycerol
6-0 Prolene Sutures Ethicon 8889H Polypropylene Sutures
Acrylamide
Boric acid
Curved Forceps Excelta 16-050-146 Half Curved, Serrated, 4 in
Dressing Forceps Fisherbrand 13-812-39 Dissecting, 4.5 in
Glass Vial Fisherbrand 03-339-26A 12 x 35 mm Vial with Cap
Histodenz Sigma-Aldrich Density gradient medium
Iridectomy Scissors Fine Science Tools 15000-03 2 mm Cutting Edge
Large Dissecting Scissors Fisherbrand 08-951-20 Straight, 6 in
Needle Holder Fisherbrand 08-966 Mayo-Hegar, 6 in
Paraformaldehyde
Phosphate Buffer
Sharp Forceps Sigma-Adrich Z168777 Fine Tip, Straight, 4.25 in
Small Dissecting Scissor Walter Stern Inc 25870-002 30 mm Cutting Edge
Sodium Azide
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS)
Tissue Forceps Excelta 16050133 Medium Tissue, 1X2 Teeth
VA-044 Wako Chemicals Water-soluble azo initiator

Referenzen

  1. Lazar, E., Sadek, H. A., Bergmann, O. Cardiomyocyte renewal in the human heart: insights from the fall-out. European Heart Journal. 38 (30), 2333-2342 (2017).
  2. Kikuchi, K., Poss, K. D. Cardiac regenerative capacity and mechanisms. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 28, 719-741 (2012).
  3. Habecker, B. A., et al. Molecular and cellular neurocardiology: development, and cellular and molecular adaptations to heart disease. The Journal of Physiology. 594 (14), 3853-3875 (2016).
  4. Savarese, G., Lund, L. H. Global Public Health Burden of Heart Failure. Cardiac Failure Review. 3 (1), 7-11 (2017).
  5. Porrello, E. R., et al. Transient regenerative potential of the neonatal mouse heart. Science. 331 (6020), 1078-1080 (2011).
  6. Mahmoud, A. I., Porrello, E. R., Kimura, W., Olson, E. N., Sadek, H. A. Surgical models for cardiac regeneration in neonatal mice. Nature Protocols. 9 (2), 305-311 (2014).
  7. Karwowski, J., et al. Relationship between infarct artery location, acute total coronary occlusion, and mortality in STEMI and NSTEMI patients. Polish Archives of Internal Medicine. 127 (6), 401-411 (2017).
  8. Lusis, A. J. Atherosclerosis. Nature. 407 (6801), 233-241 (2000).
  9. MAGGIC. The survival of patients with heart failure with preserved or reduced left ventricular ejection fraction: an individual patient data meta-analysis. European Heart Journal. 33 (14), 1750-1757 (2012).
  10. Notari, M., et al. The local microenvironment limits the regenerative potential of the mouse neonatal heart. Science Advances. 4 (5), 5553 (2018).
  11. Porrello, E. R., et al. Regulation of neonatal and adult mammalian heart regeneration by the miR-15 family. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (1), 187-192 (2013).
  12. Das, S., et al. A Unique Collateral Artery Development Program Promotes Neonatal Heart Regeneration. Cell. 176 (5), 1128-1142 (2019).
  13. Wang, Z., et al. Decellularized neonatal cardiac extracellular matrix prevents widespread ventricular remodeling in adult mammals after myocardial infarction. Acta Biomateria. 87, 140-151 (2019).
  14. Mahmoud, A. I., et al. Nerves Regulate Cardiomyocyte Proliferation and Heart Regeneration. Developmental Cell. 34 (4), 387-399 (2015).
  15. Yanai, H., Tanaka, T., Ueno, H. Multicolor lineage tracing methods and intestinal tumors. Journal of Gastroenterology. 48 (4), 423-433 (2013).
  16. Ariel, P. A beginner’s guide to tissue clearing. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 84, 35-39 (2017).
  17. Chung, K., et al. Structural and molecular interrogation of intact biological systems. Nature. 497 (7449), 332-337 (2013).
  18. Epp, J. R., et al. Optimization of CLARITY for Clearing Whole-Brain and Other Intact Organs. eNeuro. 2 (3), (2015).
  19. Lee, H., Park, J. H., Seo, I., Park, S. H., Kim, S. Improved application of the electrophoretic tissue clearing technology, CLARITY, to intact solid organs including brain, pancreas, liver, kidney, lung, and intestine. BMC Developmental Biol. 14, 48 (2014).
  20. Wan, P., et al. Evaluation of seven optical clearing methods in mouse brain. Neurophotonics. 5 (3), 035007 (2018).
  21. Phillips, J., et al. Development of passive CLARITY and immunofluorescent labelling of multiple proteins in human cerebellum: understanding mechanisms of neurodegeneration in mitochondrial disease. Scientific Reports. 6, 26013 (2016).
  22. Blom, J. N., Lu, X., Arnold, P., Feng, Q. Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration. Journal of Visualized Experiments. (111), e54100 (2016).
  23. Sereti, K. I., et al. Analysis of cardiomyocyte clonal expansion during mouse heart development and injury. Nature Communications. 9 (1), 754 (2018).
  24. Lepilina, A., et al. A dynamic epicardial injury response supports progenitor cell activity during zebrafish heart regeneration. Cell. 127 (3), 607-619 (2006).
  25. Wang, J., Kubes, P. A Reservoir of Mature Cavity Macrophages that Can Rapidly Invade Visceral Organs to Affect Tissue Repair. Cell. 165 (3), 668-678 (2016).
  26. Vieira, J. M., et al. The cardiac lymphatic system stimulates resolution of inflammation following myocardial infarction. Journal of Clinical Investigation. 128 (8), 3402-3412 (2018).
check_url/de/60482?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Salamon, R. J., Zhang, Z., Mahmoud, A. I. Capturing the Cardiac Injury Response of Targeted Cell Populations via Cleared Heart Three-Dimensional Imaging. J. Vis. Exp. (157), e60482, doi:10.3791/60482 (2020).

View Video