Summary

Génération de mutants nuls pour élucider le rôle des glycosyltransférases bactériennes dans la motilité bactérienne

Published: March 11, 2022
doi:

Summary

Ici, nous décrivons la construction de mutants nuls d’Aeromonas dans des glycosyltransférases spécifiques ou des régions contenant des glycosyltransférases, les tests de motilité et la purification des flagelles effectués pour établir l’implication et la fonction de leurs enzymes codées dans la biosynthèse d’un glycane, ainsi que le rôle de ce glycane dans la pathogenèse bactérienne.

Abstract

L’étude de la glycosylation chez les procaryotes est un domaine en croissance rapide. Les bactéries abritent différentes structures glycosylées à leur surface dont les glycanes constituent un code-barres spécifique à la souche. Les glycanes associés présentent une plus grande diversité dans la composition et la structure du sucre que ceux des eucaryotes et sont importants dans les processus de reconnaissance bactérie-hôte et l’interaction avec l’environnement. Chez les bactéries pathogènes, les glycoprotéines ont été impliquées à différentes étapes du processus infectieux, et les modifications du glycane peuvent interférer avec des fonctions spécifiques des glycoprotéines. Cependant, malgré les progrès réalisés dans la compréhension de la composition, de la structure et des voies de biosynthèse des glycanes, la compréhension du rôle des glycoprotéines dans la pathogénicité ou l’interaction avec l’environnement reste très limitée. En outre, chez certaines bactéries, les enzymes nécessaires à la glycosylation des protéines sont partagées avec d’autres voies biosynthétiques polysaccharidiques, telles que les voies biosynthétiques des lipopolysaccharides et des capsules. L’importance fonctionnelle de la glycosylation a été élucidée chez plusieurs bactéries par mutation de gènes spécifiques que l’on pense être impliqués dans le processus de glycosylation et l’étude de son impact sur l’expression de la glycoprotéine cible et du glycane modificateur. Les Aeromonas mésophiles ont un flagelle polaire unique et O-glycosylé. Les glycanes flagellaires présentent une diversité dans la composition glucidique et la longueur de la chaîne entre les souches d’Aeromonas . Cependant, toutes les souches analysées à ce jour montrent un dérivé de l’acide pseudaminique comme sucre de liaison qui modifie les résidus de sérine ou de thréonine. Le dérivé de l’acide pseudaminique est nécessaire pour l’assemblage des flagelles polaires, et sa perte a un impact sur l’adhésion, la formation de biofilm et la colonisation. Le protocole détaillé dans cet article décrit comment la construction de mutants nuls peut être utilisée pour comprendre l’implication de gènes ou de régions du génome contenant des glycosyltransférases putatives dans la biosynthèse d’un glycane flagellaire. Cela inclut le potentiel de comprendre la fonction des glycosyltransférases impliquées et le rôle du glycane. Ceci sera réalisé en comparant le mutant déficient en glycane à la souche de type sauvage.

Introduction

La glycosylation des protéines a été décrite chez les bactéries Gram positif et Gram négatif et consiste en la fixation covalente d’un glycane à une chaîne latérale d’acide aminé 1,2. Chez les procaryotes, ce processus se produit généralement via deux mécanismes enzymatiques majeurs: O- et N-glycosylation 3. Dans l’O-glycosylation, le glycane est attaché au groupe hydroxyle d’un résidu de sérine (Ser) ou de thréonine (Thr). Dans la N-glycosylation, le glycane est attaché à l’azote amide de la chaîne latérale d’un résidu d’asparagine (Asn) dans les séquences tripeptides Asn-X-Ser/Thr, où X pourrait être n’importe quel acide aminé à l’exception de la proline.

Les glycanes peuvent adopter des structures linéaires ou ramifiées et sont composés de monosaccharides ou de polysaccharides liés de manière covalente par des liaisons glycosidiques. Chez les procaryotes, les glycanes présentent généralement une diversité dans la composition et la structure du sucre par rapport aux glycanes eucaryotes4. En outre, deux voies de glycosylation bactériennes différentes qui diffèrent dans la façon dont le glycane est assemblé et transféré à la protéine acceptrice ont été décrites: glycosylation séquentielle et en bloc 5,6. Pour la glycosylation séquentielle, le glycane complexe est construit directement sur la protéine par addition successive de monosaccharides. Dans la glycosylation en bloc, un glycane pré-assemblé est transféré à la protéine à partir d’un oligosaccharide lié aux lipides par une oligosaccharyltransférase spécialisée (OTase). Il a été démontré que les deux voies sont impliquées dans les processus de glycosylation N et O 7.

La glycosylation des protéines joue un rôle dans la modulation des propriétés physico-chimiques et biologiques des protéines. La présence d’un glycane peut influencer la façon dont la protéine interagit avec son ligand, ce qui affecte l’activité biologique de la protéine, mais peut également affecter la stabilité des protéines, la solubilité, la susceptibilité à la protéolyse, l’immunogénicité et les interactions microbe-hôte 8,9. Cependant, plusieurs paramètres de glycosylation, tels que le nombre de glycanes, la composition du glycane, la position et le mécanisme d’attachement, pourraient également affecter la fonction et la structure des protéines.

Les glycosyltransférases (GT) sont les enzymes clés dans la biosynthèse des glycanes complexes et des glycoconjugués. Ces enzymes catalysent la formation de liaison glycosidique entre une fraction de sucre d’une molécule donneuse activée et un accepteur de substrat spécifique. Les GT peuvent utiliser à la fois des nucléotides et des non-nucléotides comme molécules donneuses et cibler différents accepteurs de substrat, tels que des protéines, des saccharides, des acides nucléiques et des lipides10. Par conséquent, la compréhension des GT au niveau moléculaire est importante pour identifier leurs mécanismes d’action et leur spécificité, et permet également de comprendre comment la composition en sucre des glycanes qui modifient les molécules pertinentes est liée à la pathogénicité. La base de données sur les enzymes glucidiques actives (CAZy)11 classe les GT en fonction de leur homologie de séquence, ce qui fournit un outil prédictif puisque, dans la plupart des familles GT, le pli structurel et les mécanismes d’action sont invariants. Cependant, quatre raisons rendent difficile la prédiction de la spécificité du substrat de nombreux GT : 1) aucun motif de séquence clair déterminant la spécificité du substrat n’a été déterminé chez les procaryotes12, 2) de nombreux GT et OTases montrent la promiscuité du substrat13,14, 3) les GT fonctionnels sont difficiles à produire à haut rendement sous forme recombinante et 4) l’identification des substrats donneurs et accepteurs est complexe. Malgré cela, des études récentes sur la mutagénèse ont permis d’obtenir des avancées significatives dans la compréhension des mécanismes catalytiques et de soustraire la liaison des GT.

Chez les bactéries, l’O-glycosylation semble être plus répandue que la N-glycosylation. Les sites d’O-glycosylation ne montrent pas de séquence consensuelle, et de nombreuses protéines O-glycosylées sont sécrétées ou des protéines de surface cellulaire, telles que les flagellines, les pili ou les autotransporteurs1. La glycosylation de la flagelle montre une variabilité dans le nombre de sites accepteurs, la composition du glycane et la structure. Par exemple, les flagellines de Burkholderia spp n’ont qu’un seul site d’acceptation, tandis que chez Campylobacter jejuni, les flagellènes ont jusqu’à 19 sites d’acceptation15,16. De plus, pour certaines bactéries, le glycane est un monosaccharide unique, tandis que d’autres bactéries possèdent des glycanes hétérogènes compromis de différents monosaccharides pour former des oligosaccharides. Cette hétérogénicité se produit même parmi les souches de la même espèce. Les flagellines Helicobacter ne sont modifiées que par l’acide pseudaminique (PseAc)17, et les flagellines campylobacter peuvent être modifiées par PseAc, la forme acétamidino de l’acide pseudaminique (PseAm) ou de l’acide légionaminique (LegAm), et les glycanes dérivés de ces sucres avec de l’acétyle, de la N-acétylglucosamine ou des substitutions propioniques 18,19. Chez Aeromonas, les flagellènes sont modifiées par des glycanes dont la composition va d’un seul dérivé de l’acide PseAc à un hétéropolysaccharide20, et la fixation des glycanes aux monomères de flagelline se fait toujours via un dérivé PseAc.

En général, la glycosylation des flagellènes est essentielle pour l’assemblage du filament flagellaire, la motilité, la virulence et la spécificité de l’hôte. Cependant, alors que les flagellènes de C. jejuni16, H. pylori17 et Aeromonas sp. 21 ne peut s’assembler en filament que si les monomères de protéines sont glycosylés, Pseudomonas spp. et Burkholderia spp. 15 ne nécessitent pas de glycosylation pour l’assemblage des flagelles. De plus, chez certaines souches de C. jejuni, les changements dans la composition en sucre du flagelle glycane affectent l’interaction bactérie-hôte et peuvent jouer un rôle dans l’évasion de certaines réponses immunitaires16. L’autoagglutination est une autre caractéristique phénotypique affectée par les modifications de la composition des glycanes associées aux flagellines. Une autoagglutination plus faible entraîne une réduction de la capacité à former des microcolonies et du biofilm22. Chez certaines bactéries, la capacité des flagelles à déclencher une réponse pro-inflammatoire était liée à la glycosylation de la flagelline. Ainsi, chez P. aeruginosa, la flagelline glycosylée induit une réponse pro-inflammatoire plus élevée que le23 non glycolycosylé.

Les Aeromonas sont des bactéries à Gram négatif omniprésentes dans l’environnement, ce qui leur permet d’être à l’interface de tous les composants one health 24. Les Aeromonas mésophiles ont un seul flagelle polaire, qui est produit de manière constitutive. Plus de la moitié des isolats cliniques expriment également la flagelline latérale, inductible dans des milieux ou des plaques à haute viscosité. Différentes études ont lié les deux types de flagelles aux premiers stades de la pathogenèse bactérienne25. Alors que les flagellules polaires rapportées à ce jour sont O-glycosylées à 5-8 résidus Ser ou Thr de ses domaines immunogènes centraux, les flagellines latérales ne sont pas O-glycosylées dans toutes les souches. Bien que les glycanes flagelles polaires de différentes souches présentent une diversité dans leur composition glucidique et leur longueur de chaîne20, il a été démontré que le sucre de liaison est un dérivé de l’acide pseudaminique.

Le but de ce manuscrit est de décrire une méthode permettant d’obtenir des mutants nuls dans des GT spécifiques ou des régions chromosomiques contenant des GT afin d’analyser leur implication dans la biosynthèse des polysaccharides pertinents et dans la pathogénicité bactérienne, ainsi que le rôle du glycane lui-même. À titre d’exemple, nous identifions et supprimons une région chromosomique contenant des GT d’Aeromonas pour établir son implication dans la glycosylation de la flagelline polaire et analyser le rôle du glycane de flagelline. Nous montrons comment supprimer un GT spécifique pour établir sa fonction dans la biosynthèse de ce glycane et le rôle du glycane modifié. Bien qu’en utilisant Aeromonas comme exemple, le principe peut être utilisé pour identifier et étudier les îlots de glycosylation flagelle d’autres bactéries à Gram négatif et analyser la fonction des GT impliqués dans la biosynthèse d’autres glycanes tels que le lipopolysaccharide O-antigène.

Protocol

La représentation schématique de la procédure est illustrée à la figure 1. 1. Identification bioinformatique de l’îlot de glycosylation flagelle (IFFI) à Aeromonas Pour identifier les grappes de biosynthétiques PseAc dans les génomes d’Aeromonas , utilisez l’outil tblastn de la base de données NCBI26. Tout d’abord, récupérez les protéines orthologues en PseC et PseI …

Representative Results

Cette méthodologie fournit un système efficace pour générer des mutants nuls dans les gènes ou les régions chromosomiques d’Aeromonas qui peuvent affecter la glycosylation des flagelles et le rôle du filament de flagelle (Figure 1). Le protocole commence par l’identification bioinformatique des FFI putatifs et des gènes codant pour les GT présents dans cette région. Chez Aeromonas, la localisation chromosomique des FFI est basée su…

Discussion

L’étape précoce critique de cette méthode est l’identification des régions impliquées dans la glycosylation des flagelles et des GT putatifs, car ces enzymes présentent une homologie élevée et sont impliquées dans de nombreux processus. L’analyse bioinformatique des génomes d’Aeromonas dans les bases de données publiques montre que cette région est adjacente à la région polaire flagellelle 2, qui contient les gènes de flagelline dans de nombreuses souches et contient des gènes impliqués …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par le Conseil national de recherches du Canada, pour le Plan Nacional de I + D (Ministerio de Economía y Competitividad, Espagne) et pour la Generalitat de Catalunya (Centre de Referència en Biotecnologia).

Materials

ABI PRISM Big Dye Terminator v. 3.1 Cycle Sequencing Ready Reaction Kit Applied Biosystems 4337455 Used for sequencing
AccuPrime Taq DNA Polymerase, high fidelity Invitrogen 12346-086 Used for amplification of AB, CD and AD fragments
Agarose Conda-Pronadise 8008 Used for DNA electrophoresis
Alkaline phosphatase, calf intestinal (CIAP) Promega M1821 Used to remove phosphate at the 5’ end
Bacto agar Becton Dickinson 214010 Use for motility analysis
BamHI Promega R6021 Used for endonuclease restriction
BglII Promega R6081 Used for endonuclease restriction
BioDoc-It Imagin System UVP Bio-imaging station used for DNA visualization
Biotaq polymerase Bioline BIO-21040 Used for colony screening
Cesium chloride Applichem A1126,0100 Used for flagella purification
Chloramphenicol Applichem A1806,0025 Used for triparental mating
Cytiva illustra GFX PCR DNA and Gel Band Purification Kit Cytivia 28-9034-71 Used for purification of PCR amplicons and DNA fragments.
EDTA Applichem 131026.1211 Used for DNA electrophoresis
Electroporation cuvettes 2 mm gap VWR 732-1133 Used for transformation
Ethidium bromide Applichem A1152,0025 Use for DNA visualization
HyperLadder 1 Kb marker Bioline BIO-33053 DNA marker
Invitrogen Easy-DNA gDNA Purification Kit Invitrogen 10750204 Used for bacterial chromosomal DNA purification
Luria-Bertani (LB) Miller agar Condalab 996 Used for Escherichia coli culture
Luria-Bertani (LB) Miller broth Condalab 1551 Used for Escherichia coli culture
Nanodrop ND-1000 NanoDrop Techonologies Inc Spectrophotometer used for DNA quantification
Rifampicin Applichem A2220,0005 Used for triparental mating
SOC Medium Invitrogen 15544034 Used for electroporation recovery
Spectinomycin Applichem A3834,0005 Used for triparental mating
SW 41 Ti Swinging-Bucket Rotor Beckman 331362 Used for flagella purification
T4 DNA ligase Invitrogen 15224017 Used for ligation reaction
Trypticasein soy agar Condalab 1068 Used for Aeromonas grown
Trypticasein soy broth Condalab 1224 Used for Aeromonas grown
Tryptone Condalab 1612 Use for motility analysis
Tris Applichem A2264,0500 Used for DNA electrophoresis and flagella purification
Triton X-100 Applichem A4975,0100 Used for bacterial lysis
Ultra Clear tubes (14 mm x 89 mm) Beckman 344059 Used for flagella purification
Veriti 96 well Thermal Cycler Applied Biosystems Used for PCR reactions
Zyppy Plasmid Miniprep II Kit Zymmo research D4020 Used for isolation of plasmid DNA

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Cite This Article
Tomás, J. M., Fulton, K. M., Twine, S. M., Merino, S. Generation of Null Mutants to Elucidate the Role of Bacterial Glycosyltransferases in Bacterial Motility. J. Vis. Exp. (181), e63231, doi:10.3791/63231 (2022).

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