Summary

Visualización de la muerte de células líticas de macrófagos durante la infección micobacteriana en embriones de pez cebra a través de la microscopía intravital

Published: January 09, 2019
doi:

Summary

Este protocolo describe una técnica para visualizar el comportamiento de los macrófagos y la muerte en peces cebra embrionarios durante la infección por Mycobacterium marinum. Se incluyen medidas para la preparación de bacterias, infección de embriones y microscopía intravital. Esta técnica se puede aplicar a la observación del comportamiento celular y la muerte en escenarios similares que implican infección o inflamación estéril.

Abstract

Zebrafish es un excelente organismo modelo para estudiar el comportamiento innato de las células inmunitarias debido a su naturaleza transparente y la dependencia únicamente de su sistema inmunológico innato durante el desarrollo temprano. El modelo de infección de Zebrafish Mycobacterium marinum (M. marinum) ha estado bien establecido en el estudio de la respuesta inmune del huésped contra la infección micobacteriana. Se ha sugerido que diferentes tipos de muerte de células macróforas conducirán a los diversos resultados de la infección micobacteriana. Aquí describimos un protocolo que utiliza la microscopía intravital para observar la muerte celular de los macrófagos en embriones de pez cebra después de la infección por M. marinum. Las líneas transgénicas de pez cebra que etiquetan específicamente macrófagos y neutrófilos se infectan mediante microinyección intramuscular de M. marinum etiquetado fluorescentemente en el cerebro medio o en el tronco. Los embriones de pez cebra infectados se montan posteriormente en agarosa de baja fusión y se observan mediante microscopía confocal en dimensiones X-Y-Z-T. Debido a que las imágenes en vivo a largo plazo requieren el uso de baja potencia láser para evitar el fotoblanqueo y la fototoxicidad, se recomienda encarecidamente un transgénico que exprese fuertemente. Este protocolo facilita la visualización de los procesos dinámicos in vivo, incluyendo la migración de células inmunitarias, la interacción con patógenos del huésped y la muerte celular.

Introduction

Se ha demostrado que la infección micobacteriana causa la muerte de células inmunitarias del huésped1. Por ejemplo, una tensión atenuada desencadenará apoptosis en los macrófagos y contendrá la infección. Sin embargo, una cepa virulenta desencadenará la muerte de células líticas, causando diseminación bacteriana1,2. Teniendo en cuenta el impacto que estos diferentes tipos de muerte celular tienen en la respuesta antimicobacteriana del huésped, se necesita una observación detallada de la muerte de las células de macrófagos durante la infección micobacteriana in vivo.

Los métodos convencionales para medir la muerte celular son utilizar manchas de células muertas, como Annnexin V, TUNEL o acridina naranja/yoduro propidium manchado3,4,5. Sin embargo, estos métodos son incapaces de arrojar luz sobre el proceso dinámico de muerte celular in vivo. La observación de la muerte celular in vitro ya ha sido facilitada por imágenes en vivo6. Sin embargo, si los resultados imitan con precisión las condiciones fisiológicas sigue sin estar claro.

El pez cebra ha sido un excelente modelo para estudiar las respuestas anti-mycobacterium del huésped. Tiene un sistema inmunológico altamente conservado similar al de los seres humanos, un genoma fácilmente manipulado, y los embriones tempranos son transparentes, lo que permite imágenes en vivo7,8,9. Después de la infección con M. marinum, peces cebra adultos forman estructuras típicas de granuloma maduro, y peces cebra embrionarios forman granuloma temprano como estructuras9,10. El proceso dinámico de interacción inmune innata de células-bacterias ha sido explorado previamente en el pez cebra M. marinum infección modelo11,12. Sin embargo, debido al alto requisito de resolución espacio-temporal, los detalles que rodean la muerte de las células inmunitarias innatas permanecen en gran medida indefinidos.

Aquí describimos cómo visualizar el proceso de muerte celular lítica de macrófagos desencadenada por la infección micobacteriana in vivo. Este protocolo también se puede aplicar a la visualización del comportamiento celular in vivo durante el desarrollo y la inflamación.

Protocol

El pez cebra se crió en condiciones estándar de acuerdo con las directrices de animales de laboratorio para la revisión ética del bienestar animal (GB/T 35823-2018). Todos los experimentos de pez cebra en este estudio fueron aprobados (2019-A016-01) y llevados a cabo en el Centro Clínico de Salud Pública de Shanghai, Universidad de Fudan. 1. Preparación del inóculo de célulaúnica M. marinum (Figura 1) Descongelar el material de Glicero…

Representative Results

La infección por Mycobacterium puede desencadenar diferentes respuestas del huésped en función de las vías de la infección. En este protocolo, los embriones de pez cebra se infectan por microinyección intramuscular de bacterias etiquetadas fluorescentes en el cerebro medio o el tronco(Figura 3)y se observan mediante imágenes en vivo confocales. La infección a través de estas dos vías restringirá localmente la infección que causa el reclutamiento innato de células inmunitarias y …

Discussion

Este protocolo describe la visualización de la muerte de macrófagos durante la infección micobacteriana. Basado en factores como la integridad de la membrana celular, la muerte celular impulsada por la infección se puede dividir en apoptosis y muerte celular lítica24,25. La muerte celular lítica es más estresante para el organismo que la apoptosis, porque desencadena una fuerte respuesta inflamatoria 24,

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos al Dr. Zilong Wen por compartir cepas de peces cebra, el Dr. Stefan Oehlers y el Dr. David Tobin por compartir los recursos relacionados con M. marinum, Yuepeng He por su asistencia en la preparación de figuras. Este trabajo fue apoyado por la National Natural Science Foundation of China (81801977) (B.Y.), el Programa de Formación Juvenil Sobresaliente de la Comisión Municipal de Salud de Shanghái (2018YQ54) (B.Y.), el Programa de Vela de Shanghái (18YF1420400) (B.Y.), y el Fondo Abierto de Shanghai Key Laboratory of Tuberculosis (2018KF02) (B.Y.).

Materials

0.05% Tween-80 Sigma P1379
10 mL syringe Solarbio YA0552
10% OADC BD 211886
3-aminobenzoic acid Sigma E10521
5 μm filter Mille X SLSV025LS
50 μl/ml hygromycin Sangon Biotech A600230
7H10 BD 262710
7H9 BD 262310
A glass bottom 35 mm dish In Vitro Scientific D35-10-0-N
Agarose Sangon Biotech A60015
Confocal microscope Leica TCS SP5 II
Enviromental Chamber Pecon temp control 37-2 digital
Eppendorf microloader Eppendorf No.5242956003
Glass microscope slide Bioland Scientific LLC 7105P
Glycerol Sangon Biotech A100854
Incubator Keelrein PH-140(A)
M.marinum ATCC BAA-535
Microinjection needle World Precision Instruments IB100F-4
Microinjector Eppendorf Femtojet
Micromanipulator NARISHIGE MN-151
msp12:cerulean Ref.: PMID 25470057; 27760340
Phenol red Sigma P3532
PTU Sigma P7629
Single concavity glass microscope slide Sail Brand 7103
Sonicator SCICNTZ JY92-IIDN
Spectrophotometer (OD600) Eppendorf AG 22331 Hamburg
Stereo Microscope OLYMPUS SZX10
Tg(mfap4:eGFP) Ref.: PMID 30742890
Tg(coro1a:eGFP;lyzDsRed2) Ref.: PMID 31278008
Tg(mpeg1:LRLG;lyz:eGFP) Ref.: PMID 27424497; 17477879

References

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Cite This Article
Niu, L., Wang, C., Zhang, K., Kang, M., Liang, R., Zhang, X., Yan, B. Visualization of Macrophage Lytic Cell Death During Mycobacterial Infection in Zebrafish Embryos via Intravital Microscopy. J. Vis. Exp. (143), e60698, doi:10.3791/60698 (2019).

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