Summary

Periferik mononükleer hücrelerden Indüklenen nöral kök hücrelerin üretimi ve transplantasyon çalışmaları için Dopaminergic neuron precursors doğru farklılaşma

Published: July 11, 2019
doi:

Summary

Protokol, çevresel kan mononükleer hücrelerin yeniden programlanması ile sinirsel kök hücrelerini Sendai virüs enfeksiyonu, dopaminerjik nöronlar içine inscs farklılaşma, tek taraflı-lesioned içine da öncüleri transplantasyon teşvik sunar Parkinson hastalığı fare modelleri ve PD tedavisi için iNSC-türetilen DA öncüleri güvenlik ve etkinliğini değerlendirilmesi.

Abstract

Parkinson hastalığı (PD), ventral mezensefalon (VM) içinde kanıtlanmış bir Nigra pars Compacta (snpc) dopaminerjik (da) nöronların dejenerasyonu nedeniyle oluşur. Hücre replasman tedavisi PD tedavisi için büyük söz tutar. son zamanlarda, indüklenen nöral kök hücreler (SCS) tümör oluşumu riski azalmış ve plastisite nedeniyle hücre değiştirme tedavisi için potansiyel bir aday olarak ortaya çıkmıştır bölgeye özgü nöronlar ve glia. ınscs, fibroblastlar, periferik kan mononükleer hücreler (PBMNCs) ve diğer çeşitli hücre türleri gibi otolog somatik hücresel kaynaklardan yeniden programlanabilmektedir. Diğer somatik hücreler ile karşılaştırıldığında, PBMNCs kültür erişim ve genişletme kolaylığı nedeniyle cazip bir başlangıç hücresi türüdür. , İnsan OCT3/4, SOX2, KLF4 ve c-myc dahil olmak üzere yeniden programlama faktörleri kodlama, bir RNA olmayan Integrative virüs Sendai virüs (sev), bir negatif duygusu vardır, tek-telli, olmayan segmentli genom içine entegre değildir Ana genom, ancak virüslü hücrelerin sitoplazmasında çoğaltır, yeniden programlama için verimli ve güvenli bir araç sunuyor. Bu çalışmada, PBMNCs ‘yi yeniden programlama ve iki aşamalı bir yöntemle özel VM DA nöronlara ayırt edilen ınscs ‘nin elde edildiği bir protokol açıklanmaktadır. Daha sonra DA öncüleri tek taraflı 6-hyrokydopamin (6-OHDA)-lesioned PD fare modellerini PD tedavisinde güvenlik ve etkinliğini değerlendirmek için nakledilir. Bu yöntem, hasta özel DA nöral hücrelerinin in vitro ve in vivo fonksiyonlarını ve terapötik etkilerini araştırmak için bir platform sağlar.

Introduction

Parkinson hastalığı (PD) ortak bir nörodejeneratif hastalıktır, dopaminerjik dejenerasyon neden olur (da) nöronlar üzerinde kanıtlanmış Nigra pars Compacta (snpc) ventral mezensefalon (VM), üzerinde prevalansı ile% 1 daha fazla nüfusu 60 yaş üzerinde 1 , 2. son on yıl içinde, hücre terapisi, ya dejeneratif veya hasarlı hücrelerin değiştirilmesi ya da dejenere nöronlar etrafında mikroçevre BESLEYICI, PD3tedavisinde potansiyel göstermiştir. Bu arada, yeniden programlama teknolojisi önemli ilerleme yaptı4, hangi yedek terapi için umut verici bir hücresel kaynak sağlar. İnsan kaynaklı pluripotent kök hücreleri (ıpscs) ve embriyonik kök hücreler (ESCs) DA nöral hücrelere ayırt edebilmek için kanıtlanmıştır, hangi hayatta olabilir, olgunlandırmak, ve sıçan ve non-insan primat PD modelleri içine grepte motor fonksiyonları geliştirmek5 ,6,7,8. ıpscs, hücresel yeniden programlama teknolojilerinde bir kilometre taşı temsil eder ve hücre nakli konusunda büyük bir potansiyele sahiptir; Ancak, hala tamamen farklılaşmış hücrelerden tümör oluşumu riski hakkında bir endişe vardır. Hücre transplantasyonu için alternatif bir hücresel kaynak olan, kararsız ara kaynaklarından elde edilebilir olan indüklenen nöral kök hücreler (ınscs) gibi, doğrudan yeniden programlama yoluyla elde edilen kökten işlenen yetişkin kök hücrelerdir. aşama9,10,11.

Hem ipscs hem de ınscs, fibroblastlar, periferik kan mononükleer hücreler (pbmncs) ve diğer çeşitli hücre türleri12,13,14gibi otolog hücresel kaynaklardan yeniden programlanabilmektedir, böylece büyük bir dereceye kadar nakledilen hücrelerin immünogenisite. Dahası, IPhone ‘lar ile karşılaştırıldığında, ınscs, tümör oluşumu ve sırtı işlenmiş plastisite riski azalmış, sadece nöronlar ve glia11farklılaştırmak mümkün. İlk çalışmalarda, invaziv bir prosedür olan cilt biyopsisinden elde edilen fibroblastlar arasında insan ya da fare ıpscs ve ınscs oluşturuldu14,15. Bu bağlamda, PBMNCs daha az invaziv örnekleme işlemi nedeniyle cazip bir başlangıç hücresi kaynağıdır ve genişleme süresi kısa bir süre içinde çok sayıda hücre elde etmek kolaylığı16. İlk yeniden programlama çalışmaları, lentiviral veya retroviral vektörler gibi İntegratif teslimat sistemlerini kullanan, birçok hücre türü içinde verimli ve kolay uygulanabilen17; Ancak bu teslimat sistemleri, klinik terapötik amaçlar için güvenlik sorunları mevcut olan kalan transgenler, mutasyonlar ve yeniden aktivasyonuna neden olabilir12. Sendai virüs (SeV) bir non-Integrative RNA virüsü bir negatif anlamda, ana genom içine entegre değildir tek telli genom, ancak virüslü hücrelerin sitoplazmasında çoğaltır, yeniden programlama için verimli ve güvenli bir araç sunan18 ,19. Rekombinant SeV vektörler, açık okuma çerçevelerinde insan OCT3/4, SOX2, KLF4 ve c-myc gibi yeniden programlama faktörleri içeren kullanılabilir. Buna ek olarak, SeV viral vektörler, sıcaklık duyarlı mutasyonlar sunarak daha da iyileştirilebilir, böylece kültür sıcaklığı 39 °C ‘ ye yükseltildiğinde hızla kaldırılabilirler.20. Bu yazıda, PBMNCs ‘i SeV sistemini kullanarak yeniden programlamak için bir protokol açıklanmaktadır.

Birçok çalışmalar insan ESCS veya ipscs çeşitli yöntemler6,8,21kullanarak da nöronların türetme bildirdi. Bununla birlikte, ınscs ‘deki DA nöronların farklılaşması ayrıntılarını açıklayan bir protokol sıkıntısı vardır. Bu protokolde, iki aşamalı bir yöntem kullanarak ınscs ‘deki DA nöronların verimli oluşumunu açıklayacağız. DA nöronal öncüleri güvenlik ve etkinlik değerlendirmeleri için PD fare modellerinin striatum içine nakledilebilir. Bu makalede, Sendai virüsü tarafından indüklenen nöral kök hücrelerin nesil çeşitli aşamaları kapsayan ayrıntılı bir protokol sunacak, DA nöronlar içine ınscs farklılaşma, fare PD modellerinin kurulması, striatum içine DA öncüleri nakli için , PD modellerinin. Bu protokol kullanılarak, hastalar ve sağlıklı bağışçıların ınscs oluşturabilir ve hücre transplantasyonu amacıyla güvenli, standartlanabilir, ölçeklenebilir ve homojen olan DA nöronlar türetebilirsiniz veya PD ‘yi bir tabak içinde modelleme ve mekanizmaların incelenmesi temel hastalık başlangıcı ve gelişimi.

Protocol

Tüm prosedürler, kurumsal insan araştırma etiği komitesinin yönergelerine uymalıdır. Kan toplama işleminden önce hastalara veya sağlıklı gönüllülerden bilgilendirilmiş onay alınmalıdır. Bu protokol, kurumun insan araştırma etiği Komitesi tarafından onaylanmıştır ve kurumun hayvanların bakımı ve kullanımı kurallarına göre gerçekleştirildi. 1. PBMNCs toplama, yalıtım ve genişleme PBMNCs koleksiyonu Sodyum Heparin koruyuc…

Representative Results

Burada, PD modellerini tedavi etmek için INsc-DA hücre tedavisinin farklı aşamalarını kapsayan bir protokol bildiriyoruz. Öncelikle, PBMNCs yalıtılmış ve genişletilmiş ve SeV enfeksiyonu tarafından ınscs içine yeniden programlanmıştır. Şekil 1′ de PBMNC genişleme ve insc indüksiyon prosedürlerinin şematik bir gösterimi gösterilir. -14 gün, PBMNCs yoğunluğu degrade Orta (malzeme tablosu) kullanılarak izole edildi. Santrifüjden önce, PBS ile sey…

Discussion

Burada PD modelleri için INsc-DA hücre tedavisinin farklı aşamaları kapsanan bir protokol sundu. Bu protokolün kritik yönleri şunlardır: (1) pbmncs izolasyonu ve genişlemesi ve pbmncs ‘nin ınscs ‘ye yeniden programlanması, (2) ınscs ‘nin da nöronlara farklılaşması, (3) tek taraflı 6-OHDA-lesioned PD fare modellerinin kurulması ve davranışsal ve (4) DA öncüleri ve davranışsal değerlendirmesinin hücre nakli.

Bu protokolde ilk bölüm, eritroblastları tercih eden ve le…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Çalışma aşağıdaki hibe tarafından desteklenmektedir: kök hücre ve çeviri ulusal anahtar projesi (2016YFA0101403), Çin Ulusal Doğal Bilim Vakfı (81661130160, 81422014, 81561138004), Pekin Belediye doğal Bilim Vakfı (5142005), Pekin yetenekleri Vakfı (2017000021223TD03), destek projesi yüksek düzey öğretmenler Pekin Belediye üniversitelerinde 13 beş yıl dönemi planı (CıT & TCD20180333), Pekin tıbbi sistem yüksek seviyeli Yetenek Ödülü (2015-3-063), Pekin Belediye Sağlık Komisyonu Fonu (PXM 2018_026283_000002), Pekin 100, Thousand, ve 10000 yetenekler Fonu (2018A03), Pekin Belediye Hastanesi özel finansman desteğinin klinik tıp gelişimi (ZYLX201706) ve Royal Society-Newton gelişmiş Bursu (NA150482).

Materials

15-ml conical tube Corning 430052
1-Thioglycerol Sigma-Aldrich M6145 Toxic for inhalation and skin contact
24-well plate Corning 3337
50-ml conical tube  Corning 430828
6-OHDA Sigma-Aldrich H4381
6-well plate Corning 3516
Accutase Invitrogen A11105-01 Cell dissociation reagent
Apomorphine Sigma-Aldrich A4393
Ascorbic acid Sigma-Aldrich A92902 Toxic with skin contact 
B27 supplement  Invitrogen 17504044
BDNF Peprotech 450-02 Brain derived neurotrophic factor
Blood collection tubes containing sodium heparin BD 367871
BSA yisheng 36106es60 Fetal bovine serum
cAMP Sigma-Aldrich D0627 Dibutyryladenosine cyclic monophosphate
CellBanker 2 ZENOAQ 100ml Used as freezing medium for PBMNCs
Chemically defined lipid concentrate Invitrogen 11905031
CHIR99021 Gene Operation 04-0004
Coverslip Fisher 25*25-2
DAPI Sigma-Aldrich D8417-10mg
DAPT Sigma-Aldrich D5942
Dexamethasone Sigma-Aldrich D2915-100MG
DMEM-F12 Gibco 11330
DMEM-F12 Gibco 11320
Donkey serum Jackson 017-000-121
EPO Peprotech 100-64-50UG Human Erythropoietin
FGF8b Peprotech 100-25
Ficoll-Paque Premium GE Healthcare 17-5442-02 P=1.077, density gradient medium
GDNF Peprotech 450-10 Glial derived neurotrophic factor
GlutaMAX Invitrogen 21051024 100 × Glutamine stock solution
Ham's-F12 Gibco 11765-054
HBSS Invitrogen 14175079 Balanced salt solution
Human leukemia inhibitory factor Millpore LIF1010
Human recombinant SCF Peprotech 300-07-100UG
IGF-1 Peprotech 100-11-100UG Human insulin-like growth factor 
IL-3 Peprotech 200-03-10UG Human interleukin 3
IMDM Gibco 215056-023 Iscove's modified Dulbecco's medium
Insulin Roche  12585014
ITS-X Invitrogen 51500-056 Insulin-transferrin-selenium-X supplement
Knockout serum replacement Gibco 10828028 Serum free basal medium
Laminin Roche  11243217001
Microsyringe Hamilton 7653-01
N2 supplement  Invitrogen 17502048
NEAA Invitrogen 11140050 Non-essential amino acid
Neurobasal Gibco 10888 Basic medium
PDL Sigma-Aldrich P7280 Poly-D-lysine
SAG1 Enzo ALX-270-426-M01
SB431542 Gene Operation 04-0010-10mg Store from light at -20℃
Sendai virus Life Technologies MAN0009378
Sucrose baiaoshengke
TGFβⅢ Peprotech 100-36E Transforming growth factor  βⅢ
Transferrin R&D Systems 2914-HT-100G
Triton X 100 baiaoshengke Nonionic surfactant
Trypan blue Gibco T10282
Xylazine Sigma-Aldrich X1126

References

  1. Williams-Gray, C. H., et al. The distinct cognitive syndromes of Parkinson’s disease: 5 year follow-up of the CamPaIGN cohort. Brain. 132, 2958-2969 (2009).
  2. Dexter, D. T., Jenner, P. Parkinson disease: from pathology to molecular disease mechanisms. Free Radical Biology and Medicine. 62, 132-144 (2013).
  3. Chen, Z. Cell Therapy for Parkinson’s Disease: New Hope from Reprogramming Technologies. Aging and Disease. 6 (6), 499-503 (2015).
  4. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of Pluripotent Stem Cells from Mouse Embryonic and Adult Fibroblast Cultures by Defined Factors. Cell. 126 (4), 663-676 (2006).
  5. Doi, D., et al. Isolation of human induced pluripotent stem cell-derived dopaminergic progenitors by cell sorting for successful transplantation. Stem Cell Reports. 2 (3), 337-350 (2014).
  6. Kriks, S., et al. Dopamine neurons derived from human ES cells efficiently engraft in animal models of Parkinson’s disease. Nature. 480 (7378), 547-551 (2011).
  7. Perrier, A. L., et al. Derivation of midbrain dopamine neurons from human embryonic stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (34), 12543-12548 (2004).
  8. Kikuchi, T., et al. Human iPS cell-derived dopaminergic neurons function in a primate Parkinson’s disease model. Nature. 548 (7669), 592-596 (2017).
  9. Ma, T., Xie, M., Laurent, T., Ding, S. Progress in the reprogramming of somatic cells. Circulation Research. 112 (3), 562-574 (2013).
  10. Tang, X., et al. Conversion of adult human peripheral blood mononuclear cells into induced neural stem cell by using episomal vectors. Stem Cell Research. 16 (2), 236-242 (2016).
  11. Yuan, Y., et al. Dopaminergic precursors differentiated from human blood-derived induced neural stem cells improve symptoms of a mouse Parkinson’s disease model. Theranostics. 8 (17), 4679-4694 (2018).
  12. Takahashi, K., et al. Induction of Pluripotent Stem Cells from Adult Human Fibroblasts by Defined Factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  13. Aasen, T., et al. Efficient and rapid generation of induced pluripotent stem cells from human keratinocytes. Nature Biotechnology. 26 (11), 1276-1284 (2008).
  14. Thier, M., et al. Direct conversion of fibroblasts into stably expandable neural stem cells. Cell Stem Cell. 10 (4), 473-479 (2012).
  15. Takahashi, K., Okita, K., Nakagawa, M., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from fibroblast cultures. Nature Protocols. 2 (12), 3081-3089 (2007).
  16. Seki, T., Yuasa, S., Fukuda, K. Generation of induced pluripotent stem cells from a small amount of human peripheral blood using a combination of activated T cells and Sendai virus. Nature Protocols. 7 (4), 718-728 (2012).
  17. Bazley, F. A., et al. Direct Reprogramming of Human Primordial Germ Cells into Induced Pluripotent Stem Cells: Efficient Generation of Genetically Engineered Germ Cells. Stem Cells and Development. 24 (22), 2634-2648 (2015).
  18. Li, H. O., et al. A cytoplasmic RNA vector derived from nontransmissible Sendai virus with efficient gene transfer and expression. Journal of Virology. 74 (14), 6564-6569 (2000).
  19. Sochacki, J., Devalle, S., Reis, M., Mattos, P., Rehen, S. Generation of urine iPS cell lines from patients with Attention Deficit Hyperactivity Disorder (ADHD) using a non-integrative method. Stem Cell Research. 17 (1), 102-106 (2016).
  20. Ban, H., et al. Efficient generation of transgene-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) by temperature-sensitive Sendai virus vectors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (34), 14234-14239 (2011).
  21. Cho, M. S., et al. Highly efficient and large-scale generation of functional dopamine neurons from human embryonic stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (9), 3392-3397 (2008).
  22. Dowey, S. N., Huang, X., Chou, B. -. K., Ye, Z., Cheng, L. Generation of integration-free human induced pluripotent stem cells from postnatal blood mononuclear cells by plasmid vector expression. Nature Protocols. 7 (11), 2013-2021 (2012).
  23. Zhu, S., et al. Reprogramming of human primary somatic cells by OCT4 and chemical compounds. Cell Stem Cell. 7 (6), 651-655 (2010).
  24. Ono, Y., et al. Differences in neurogenic potential in floor plate cells along an anteroposterior location: midbrain dopaminergic neurons originate from mesencephalic floor plate cells. Development. 134 (17), 3213-3225 (2007).
  25. Kirkeby, A., et al. Generation of regionally specified neural progenitors and functional neurons from human embryonic stem cells under defined conditions. Cell Reports. 1 (6), 703-714 (2012).
  26. Chambers, S. M., et al. Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling. Nature Biotechnology. 27 (3), 275-280 (2009).
  27. Fasano, C. A., Chambers, S. M., Lee, G., Tomishima, M. J., Studer, L. Efficient derivation of functional floor plate tissue from human embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 6 (4), 336-347 (2010).
  28. Harvey, B. K., Wang, Y., Hoffer, B. J. Transgenic rodent models of Parkinson’s disease. Acta Neurochirurgica Supplements. 101, 89-92 (2008).
  29. Sheng, C., et al. Generation of dopaminergic neurons directly from mouse fibroblasts and fibroblast-derived neural progenitors. Cell Research. 22 (4), 769-772 (2012).
  30. Prasad, A., et al. A review of induced pluripotent stem cell, direct conversion by trans-differentiation, direct reprogramming and oligodendrocyte differentiation. Regenerative Medicine. 11 (2), 181-191 (2016).

Play Video

Cite This Article
Zheng, W., Chen, Z. Generation of Induced Neural Stem Cells from Peripheral Mononuclear Cells and Differentiation Toward Dopaminergic Neuron Precursors for Transplantation Studies. J. Vis. Exp. (149), e59690, doi:10.3791/59690 (2019).

View Video