Bu çalışma, pıhtı eritme, hücre boyama ve rutin kan muayenesi yoluyla serebral kan pıhtılarının hücre bileşen analizi için hızlı ve etkili bir yöntemi tanımlamaktadır.
Serebral arter veya damardaki bir kan pıhtısı olan serebral tromboz, en yaygın serebral enfarktüs türüdür. Serebral kan pıhtılarının hücre bileşenlerinin incelenmesi tanı, tedavi ve prognoz için önemlidir. Bununla birlikte, pıhtıların hücre bileşenlerini incelemeye yönelik mevcut yaklaşımlar, esas olarak, hücreler pıhtılara sıkıca sarıldığı için hücre bileşenlerinin kapsamlı çalışması için uygun olmayan in situ boyamaya dayanmaktadır. Önceki çalışmalar, çapraz bağlı fibrini doğrudan parçalayarak hücre bileşenlerini serbest bırakabilen bir fibrinolitik enzimi (sFE) Sipunculus nudus’tan başarıyla izole etmiştir. Bu çalışma, serebral trombüsün hücre bileşenlerini incelemek için sFE’ye dayalı kapsamlı bir yöntem oluşturmuştur. Bu protokol pıhtı eritme, hücre salma, hücre boyama ve rutin kan incelemesini içerir. Bu yönteme göre, hücre bileşenleri nicel ve nitel olarak incelenebilir. Bu yöntemi kullanan deneylerin temsili sonuçları gösterilmektedir.
Serebrovasküler hastalık, insan sağlığını tehdit edebilen üç ana hastalıktan biridir ve bunların arasında iskemik serebrovasküler hastalık% 80’den fazlasını oluşturur. Serebral tromboz ve serebral ven trombozu, günümüzde en çok endişe duyulan iskemik serebrovasküler hastalıklardırve esas olarak serebral kan pıhtılarının neden olduğu 1,2. Tedavi uygun şekilde yapılmazsa, yüksek sakatlık ve mortalite oranlarına ve taburculuk sonrası yüksek nüks oranına sahip olacaktır3.
Son zamanlarda, giderek artan sayıda çalışma, serebral kan pıhtılarının hücre bileşenlerinin serebral trombozun tanısı, tedavisi ve prognozu ile sıkı bir şekilde ilişkili olduğunu göstermiştir 4,5,6. Bu nedenle, trombüs bileşimi, özellikle hücre bileşenleri ile ilgili verilerin mevcudiyeti klinik tanı ve tedavi için önemlidir. Ne yazık ki, şu anda mevcut olan yöntemler, kan pıhtısı bileşenini nicel ve nitel olarak kapsamlı bir şekilde analiz edememektedir. Örneğin, Martius Scarlett Blue bazlı in-situ boyama, pıhtının yalnızca belirli dilimlerinin kırmızı/beyaz kan hücrelerini inceleyebilir7. İmmünohistokimya (IHC) tabanlı in-situ boyama, antikorlarını kullanarak pıhtının yalnızca belirli dilimlerinin sınırlı kan bileşenlerini inceleyebilir8. Mikroskobik görüntüye dayalı yöntemler sadece pıhtının spesifik yapısıyla ilgilidir9. Üstelik tüm bu yöntemler zahmetli ve zaman alıcıdır10. Bugüne kadar, serebral trombüs hücre bileşenlerini kantitatif ve kalitatif olarak incelemek için prosedürler bildirilmemiştir. Çapraz bağlı fibrinin pıhtılardaki kan hücrelerini sıkıca sardığı yaygın olarak kabul edilmektedir11. Sonuç olarak, çapraz bağlı fibrinin spesifik bozunması ve sağlam hücrelerin salınması, hücre bileşenlerinin doğru analizi için kritik öneme sahiptir.
Önceki çalışmalar, fibrini spesifik ve hızlı bir şekilde parçalayabilen Sipunculus nudus’tan (sFE) bir fibrinolitik enzimi izole etti12. Burada, sFE’nin benzersiz aktivitesine dayalı olarak serebral trombüsün hücre bileşenlerini analiz etmek için bir yöntem önerilmiştir. Bu protokol, önce pıhtıların fibrinini parçalamak için sFE’yi kullandı ve daha sonra hücre bileşenlerini Wright’ın Boyama ve rutin kan muayenesiile analiz etti 13,14. Bu yönteme göre, serebral trombüsün hücre bileşenleri kantitatif ve kalitatif olarak incelenebilir. Bu basit ve etkili protokol, diğer kan pıhtılarının hücre bileşen analizi için uygulanabilir.
sFE, fibrini doğrudan ve etkili bir şekilde parçalayabilen fibrinolitik bir ajandır12,16. Burada, serebral kan pıhtılarının çapraz bağlı fibrinini parçalamak, pıhtıların içindeki kapalı hücreleri serbest bırakmak ve pıhtıların hücre bileşenlerini kalitatif ve kantitatif olarak analiz etmek için sFE kullanıldı. Mikroskopi verileri ve rutin kan muayenesi, kapalı hücrelerin kan pıhtılarından salındığını gösterdi. Ayrıca, salın…
The authors have nothing to disclose.
Bu araştırma, Xiamen Şehri Bilim ve Teknoloji Bürosu (3502Z20227197) ve Fujian Eyaleti Bilim ve Teknoloji Bürosu (No. 2019J01070, No.2021Y0027) tarafından finanse edilmiştir.
Agglutination Reaction Plate | ROTEST | RTB-4003 | |
Auto Hematology Analyzer | SYSMEX | XNB2 | |
Automatic Vertical Pressure Steam Sterilizer | SANYO | MLS-3750 | |
Centrifuge Tube (1.5 mL) | Biosharp | BS-15-M | |
Clean bench | AIRTECH | BLB-1600 | |
Constant Temperature Incubator | JINGHONG | JHS-400 | |
Culture Dish (100 mm) | NEST | 704001 | |
DHG Series Heating and Drying Oven | SENXIN | DGG-9140AD | |
Electronic Analytical Balance | DENVER | TP-213 | |
Filter Membrane (0.22 µm) | Millex GP | SLGP033NK | |
Micro Refrigerated Centrifuge | Cence | H1650-W | |
Microscope Slides | CITOGLAS | 01-30253-50 | |
Milli-Q Reference | Millipore | Z00QSV0CN | |
Normal Saline | CISEN | H37022337 | |
Optical Microscope | Nikon | ECLIPSE E100 | |
Parafilm | Bemis | PM-996 | |
Phosphate-Buffered Saline | Beyotime | C0221A | |
Pipette Tip (1 mL ) | Axygene | T-1000XT-C | |
Pipette Tip (200 µL) | Axygene | T-200XT-C | |
Pipettor (1 mL) | Thermo Fisher Scientific | ZY18723 | |
Pipettor (200 µL) | Thermo Fisher Scientific | ZY20280 | |
Scalpel | MARTOR | 23111 | |
Small-sized Vortex Oscillator | Kylin-Bell | VORTEX KB3 | |
Tweezer | Hystic | HKQS-180 | |
Wright Staining Solution | Beyotime | C0135-500ml |