Summary

Behavioral karakterisering av en Angelman syndrom mus modell

Published: October 20, 2023
doi:

Summary

Dette manuskriptet presenterer et sett med svært reproduserbare atferdstester for å validere en Angelman syndrom musemodell.

Abstract

Dette manuskriptet beskriver et batteri av atferdstester tilgjengelig for å karakterisere Angelman syndrom (AS)-lignende fenotyper i en etablert murinmodell av AS. Vi bruker læringsparadigmet rotarod, detaljert ganganalyse og reirbyggingstest for å oppdage og karakterisere motoriske funksjonsnedsettelser hos dyr. Vi tester dyrs emosjonalitet i det åpne feltet og forhøyede pluss labyrinttester, samt påvirkningen i haleopphengstesten. Når AS-mus testes i åpen felttest, bør resultatene tolkes med forsiktighet, siden motoriske dysfunksjoner påvirker museadferd i labyrinten og endrer aktivitetspoeng.

Reproduserbarheten og effektiviteten til de presenterte atferdstestene er allerede validert i flere uavhengige Uba3a-muselinjer med forskjellige knockout-varianter, og etablerer dette settet med tester som et utmerket valideringsverktøy i AS-forskning. Modeller med relevant konstruksjon og ansiktsvaliditet vil gi grunnlag for videre undersøkelser for å belyse sykdommens patofysiologi og gi utvikling av årsaksbehandling.

Introduction

Angelman syndrom (AS) er en sjelden nevroutviklingssykdom. Den vanligste genetiske opprinnelsen til AS er en stor delesjon av 15q11-q13-regionen av det maternalt avledede kromosomet, som finnes hos nesten 74% av pasientene1. Sletting av denne regionen forårsaker tap av UBE3A, det viktigste årsaksgenet til AS som koder for en E3 ubiquitin ligase. Faderlig allel av UBE3A-genet i nevroner blir stilnet i en prosess kjent som imprinting. Som en konsekvens tillater fars imprinting av genet bare mors uttrykk i sentralnervesystemet (CNS)2. Derfor fører UBE3A-gendelesjon fra det maternelt avledede kromosomet til utvikling av AS-symptomer. Hos mennesker manifesterer AS seg rundt 6 måneder, med utviklingshemming som vedvarer gjennom alle utviklingsstadier og resulterer i alvorlige svekkende symptomer hos berørte individer 3,4. Kjernesymptomene på lidelsen inkluderer underskudd av fine og grovmotoriske ferdigheter, inkludert rykkete ataktisk gange, alvorlig talevansker og intellektuell funksjonshemming. Omtrent 80% av AS-pasientene lider også av søvnforstyrrelser og epilepsi. Til dags dato er den eneste tilgjengelige behandlingen symptomatiske legemidler, som reduserer epileptiske anfall og forbedrer søvnkvaliteten1. Derfor vil utvikling av robuste dyremodeller med reproduserbare atferdsfenotyper sammen med raffinert fenotypingsanalyse være avgjørende for å belyse de patofysiologiske mekanismene til lidelsen og oppdage effektive medisiner og behandlinger.

Kompleksiteten i den menneskelige lidelsen som påvirker CNS krever at modellorganismer har et sammenlignbart genom, fysiologi og oppførsel. Mus er populære som modellorganisme på grunn av deres korte reproduktive syklus, liten størrelse og relativt enkel DNA-modifisering. I 1984 foreslo Paul Willner tre grunnleggende sykdomsmodellvalideringskriterier: konstruksjonen, ansiktet og prediktiv validitet, som brukes til å bestemme modellens verdi5. Enkelt reflekterer begrepsvaliditet de biologiske mekanismene som er ansvarlige for lidelsesutviklingen, ansiktsvaliditet rekapitulerer symptomene, og prediktiv validitet beskriver modellresponsen på terapeutiske legemidler.

For å følge de ovennevnte prinsippene har vi valgt den vanligste genetiske etiologien, en stor delesjon av mors 15q11.2-13q locus inkludert UBE3A-genet, for å lage AS-modellmus. Vi brukte CRISPR / Cas9-teknikken for å slette en 76,225 bp lang region som spenner over hele UBE3A-genet, som omfatter både kodende og ikke-kodende elementer i genet, hos mus fra en C57BL / 6N bakgrunn6. Vi avlet deretter dyrene for å få UBE3A +/- heterozygote mus. For ansiktsvalidering av modellen brukte vi dyr fra kryss av UBE3A +/- hunner og villtypehanner for å få UBE3A +/- avkom (stamme kalt C57BL/6NCrl-UBE3A/Ph og senere tildelt som UBE3A mGenedel/+) og kontrollkullkamerater. Vi testet deres fin- og grovmotoriske ferdigheter, følelsesmessighet og påvirkning for å rekapitulere kjerne AS-symptomer. I en tidligere artikkel har vi også evaluert dyrenes kognitive funksjoner, da pasienter også lider av utviklingshemming6. Vi fant imidlertid ingen kognitive funksjonsnedsettelser hos UBE3AmGenedel/+-mus, kanskje på grunn av dyrenes unge alder på testtidspunktet7. Senere undersøkelse av de eldre dyrene, rundt 18 uker gamle, avslørte et underskudd i atferdsmessig fleksibilitet under reverseringslæring i stedpreferanseparadigmet. Kompleksiteten til det anvendte utstyret for denne analysen krever imidlertid en egen metodologisk modul, og den er ikke inkludert her.

Atferdstestene som presenteres her tilhører de vanlige fenotypingsverktøyene i genetisk forskning, takket være deres høye prediktive verdi og tilstrekkelig konstruksjonsvaliditet 8,9,10. Vi brukte disse testene til å validere en musemodell av AS ved å rekapitulere kjernesymptomer på den menneskelige sykdommen på en reproduserbar, aldersuavhengig måte. Dyrets følelsesmessighet ble evaluert i forhøyede pluss labyrint og åpne felttester. Begge disse testene er basert på tilnærming-unngåelseskonflikten, hvor dyr utforsker et nytt miljø på jakt etter mat, ly eller parringsmuligheter samtidig som de unngår angstdempende rom11. I tillegg brukes åpen felttest til å teste musens bevegelsesaktivitet8. Halesuspensjonstesten er mye brukt i depresjonsforskning for å screene for nye antidepressiva eller depressiv-lignende fenotyper i museknockout-modeller12. Denne testen evaluerer fortvilelsen som dyr utvikler over tid i en uunngåelig situasjon. Motorisk læring og detaljerte gangkarakteristikker ble bestemt på henholdsvis rotarod og i DigiGait. Dyrs utholdenhet på den akselererende stangen karakteriserer dens balanse- og bevegelseskoordinasjonsferdigheter, mens detaljert analyse av musens trinnmønstre er en sensitiv evaluering av nevromuskulære funksjonsnedsettelser knyttet til mange nevrogenerative bevegelsesforstyrrelser13,14,15. Nestlet makuleringstest er en del av standardmetoden for å oppdage impulsiv oppførsel hos gnagere, og siden den bruker naturlig gnagerbyggingsadferd, indikerer den dyrets velvære16,17.

Størrelsen på eksperimentgruppene var et resultat av et kompromiss for å møte 3R-regelkravene og effektiv bruk av koloniavlsytelse. For å oppnå statistisk styrke hadde gruppene imidlertid ikke mindre enn 10 individer, på grunn av etablering av en tilstrekkelig mengde avlspar. Dessverre resulterte ikke avlsprestasjoner alltid i et tilstrekkelig antall dyr.

Protocol

Alle dyr og eksperimenter som ble brukt i denne studien gjennomgikk etisk gjennomgang og ble utført i samsvar med EU-direktivet 2010/63/EU. Studien ble godkjent av den tsjekkiske sentralkommisjonen for dyrevelferd. Musene ble plassert i individuelt ventilerte bur og holdt ved en konstant temperatur på 22 ± 2 °C med en 12 timers lys / mørk syklus. Musene ble forsynt med mus chow og vann ad libitum. Musene ble plassert i grupper på tre til seks dyr per bur. Ingen annen håndtering enn veiing ble utført før…

Representative Results

Forhøyet pluss labyrint og åpne felttesterEPM- og OF-testene bruker den naturlige tendensen til gnagere til å utforske nye miljøer18,19. Letingen styres av en konflikt mellom tilnærming og unngåelse, der gnagere velger mellom utforskning av et nytt miljø og unngåelse av mulig fare. Dyr utforsker ukjente steder på jakt etter ly, sosial kontakt eller sanking. Nye steder kan imidlertid innebære risikofaktorer som rovdyr eller konkurren…

Discussion

AS-modeller opprettet i forskjellige murinstammer blir ofte validert med tester av dyrs følelsesmessige tilstand, motorfunksjoner og kognitive evner for å lette sammenligning med menneskelige symptomer31,32. Et motorisk underskudd i AS-modeller er det mest konsistente funnet på tvers av laboratorier, etterfulgt av en uendret følelsesmessighetstilstand av mutanter og vanskeligheter med å bygge reir31,32,33<…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble støttet av det tsjekkiske vitenskapsakademiet RVO 68378050, LM2018126 tsjekkiske senteret for fenogenomikk levert av MEYS CR, OP RDE CZ.02.1.01/0.0/0.0/16_013/0001789 (Oppgradering av det tsjekkiske senteret for fenogenomikk: utvikling mot oversettelsesforskning av MEYS og ESIF), OP RDE CZ.02.1.01/0.0/0.0/18_046/0015861 (CCP Infrastructure Upgrade II av MEYS og ESIF), og OP RDI CZ.1.05/2.1.00/19.0395 (høyere kvalitet og kapasitet for transgene modeller av MEYS og ERDF). I tillegg mottok denne studien finansiering fra NGO “Association of Gene Therapy (ASGENT)”, Tsjekkia (https://asgent.org/) og LM2023036 tsjekkiske senteret for fenogenomikk levert av departementet for utdanning, ungdom og idrett i Tsjekkia.

Materials

Cages, individually ventilated Techniplast
DigiGait Mouse Specifics, Inc., 2 Central Street Level
Unit 110
Framingham, MA 01701, USA
Equipment was tendered, no catalogue  number was provided, nor could be find on company's web site Detailed analysis of mouse gait, hardware and software provided. 
FDA Nestlet squares Datesand Ltd., 7 Horsfield Way, Bredbury, Stockport SK6, UK Material was bought from Velaz vendor via direct email request. Velaz do not provide any catalogue no. Cotton nestlets for nest building test. Nestlet discription: 2-3 g each, with diameter around 5 x 5 x 0.5cm.
Mouse chow Altramion
Rotarod TSE Systems GmbH, Barbara-McClintock-Str.4
12489 Berlin, Germany
Equipment was tendered, no catalogue  number was provided, nor could be find on company's web site Rotarod for 5 mice, hardware and software provided. Drum dimensions: Diameter: 30 mm, width per lane: 50 mm, falling distance 147 mm.
Tail Suspension Test Bioseb, In Vivo Research Instruments, 13845 Vitrolles
FRANCE
Reference: BIO-TST5 Fully automated equipment for immobility time evaluation of 3 mice hanged by tail, hardware and software provided
Transpore medical tape Medical M, Ltd. P-AIRO1291 The tape used to attach an animal to the hook by its tail.
Viewer – Video Tracking System Biobserve GmbH, Wilhelmstr. 23 A
53111 Bonn, Germany
Equipment with software were tendered, no catalogue  number was provided, nor could be find on company's web site Software with custom made hardware: maze, IR base, IR sensitive cameras. Custom-made OF dimensions: 42 x 42 cm area, 49 cm high wall, central zone area: 39 cm2. A custom-made EPM was elevated 50 cm above the floor, with an open arm 79 cm long,  9 cm wide, and closed arm 77 cm long, 7.6 cm wide. 

References

  1. Kalsner, L., Chamberlain, S. J. Prader-Willi, Angelman, and 15q11-q13 duplication syndromes. Pediatric Clinics of North America. 62 (3), 587-606 (2015).
  2. Yamasaki, K., et al. Neurons but not glial cells show reciprocal imprinting of sense and antisense transcripts of Ube3a. Human Molecular Genetics. 12 (8), 837-847 (2003).
  3. Clayton-Smith, J., Laan, L. Angelman syndrome: a review of the clinical and genetic aspects. Journal of Medical Genetics. 40 (2), 87-95 (2003).
  4. Jolleff, N., Ryan, M. M. Communication development in Angelman’s syndrome. Archives of Disease in Childhood. 69 (1), 148-150 (1993).
  5. Willner, P. The validity of animal models of depression. Psychopharmacology. 83 (1), 1-16 (1984).
  6. Syding, L. A., et al. Generation and characterization of a novel Angelman syndrome mouse model with a full deletion of the Ube3a gene. Cells. 11 (18), 2815 (2022).
  7. Huang, H. -. S., et al. Behavioral deficits in an Angelman syndrome model: effects of genetic background and age. Behavioural Brain Research. 243, 79-90 (2013).
  8. Choleris, E., Thomas, A. W., Kavaliers, M., Prato, F. S. A detailed ethological analysis of the mouse open field test: effects of diazepam, chlordiazepoxide and an extremely low frequency pulsed magnetic field. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 25 (3), 235-260 (2001).
  9. Cryan, J. F., Mombereau, C., Vassout, A. The tail suspension test as a model for assessing antidepressant activity: review of pharmacological and genetic studies in mice. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 29 (4-5), 571-625 (2005).
  10. Walf, A. A., Frye, C. A. The use of the elevated plus maze as an assay of anxiety-related behavior in rodents. Nature Protocols. 2 (2), 322-328 (2007).
  11. Carola, V., D’Olimpio, F., Brunamonti, E., Mangia, F., Renzi, P. Evaluation of the elevated plus-maze and open-field tests for the assessment of anxiety-related behaviour in inbred mice. Behavioural Brain Research. 134 (1-2), 49-57 (2002).
  12. Yan, H. -. C., Cao, X., Das, M., Zhu, X. -. H., Gao, T. -. M. Behavioral animal models of depression. Neuroscience Bulletin. 26 (4), 327-337 (2010).
  13. Preisig, D. F., et al. High-speed video gait analysis reveals early and characteristic locomotor phenotypes in mouse models of neurodegenerative movement disorders. Behavioural Brain Research. 311, 340-353 (2016).
  14. Knippenberg, S., Thau, N., Dengler, R., Petri, S. Significance of behavioural tests in a transgenic mouse model of amyotrophic lateral sclerosis (ALS). Behavioural Brain Research. 213 (1), 82-87 (2010).
  15. Farr, T. D., Liu, L., Colwell, K. L., Whishaw, I. Q., Metz, G. A. Bilateral alteration in stepping pattern after unilateral motor cortex injury: a new test strategy for analysis of skilled limb movements in neurological mouse models. Journal of Neuroscience Methods. 153 (1), 104-113 (2006).
  16. Jirkof, P. Burrowing and nest building behavior as indicators of well-being in mice. Journal of Neuroscience Methods. 234, 139-146 (2014).
  17. Wulaer, B., et al. Repetitive and compulsive-like behaviors lead to cognitive dysfunction in Disc1Δ2-3/Δ2-3 mice. Genes, Brain, and Behavior. 17 (8), 12478 (2018).
  18. Glickman, S. E., Hartz, K. E. Exploratory behavior in several species of rodents. Journal of Comparative and Physiological Psychology. 58, 101-104 (1964).
  19. La-Vu, M., Tobias, B. C., Schuette, P. J., Adhikari, A. To approach or avoid: an introductory overview of the study of anxiety using rodent assays. Frontiers in Behavioral Neuroscience. 14, 145 (2020).
  20. Karolewicz, B., Paul, I. A. Group housing of mice increases immobility and antidepressant sensitivity in the forced swim and tail suspension tests. European Journal of Pharmacology. 415 (2-3), 197-201 (2001).
  21. Liu, X., Gershenfeld, H. K. Genetic differences in the tail-suspension test and its relationship to imipramine response among 11 inbred strains of mice. Biological Psychiatry. 49 (7), 575-581 (2001).
  22. Dunham, N. W., Miya, T. S. A note on a simple apparatus for detecting neurological deficit in rats and mice. Journal of the American Pharmaceutical Association. 46 (3), 208-209 (1957).
  23. Dorman, C. W., Krug, H. E., Frizelle, S. P., Funkenbusch, S., Mahowald, M. L. A comparison of DigiGait and TreadScan imaging systems: assessment of pain using gait analysis in murine monoarthritis. Journal of Pain Research. 7, 25-35 (2013).
  24. Stroobants, S., Gantois, I., Pooters, T., D’Hooge, R. Increased gait variability in mice with small cerebellar cortex lesions and normal rotarod performance. Behavioural Brain Research. 241, 32-37 (2013).
  25. Vandeputte, C., et al. Automated quantitative gait analysis in animal models of movement disorders. BMC Neuroscience. 11, 92 (2010).
  26. Amende, I., et al. Gait dynamics in mouse models of Parkinson’s disease and Huntington’s disease. Journal of Neuroengineering and Rehabilitation. 2, 20 (2005).
  27. Hampton, T. G., et al. Gait disturbances in dystrophic hamsters. Journal of Biomedicine & Biotechnology. 2011, 235354 (2011).
  28. Vinsant, S., et al. Characterization of early pathogenesis in the SOD1(G93A) mouse model of ALS: part I, background and methods. Brain and Behavior. 3 (4), 335-350 (2013).
  29. Li, X., Morrow, D., Witkin, J. M. Decreases in nestlet shredding of mice by serotonin uptake inhibitors: comparison with marble burying. Life Sciences. 78 (17), 1933-1939 (2006).
  30. Murphy, M., et al. Chronic adolescent Δ9-tetrahydrocannabinol treatment of male mice leads to long-term cognitive and behavioral dysfunction, which are prevented by concurrent cannabidiol treatment. Cannabis and Cannabinoid Research. 2 (1), 235-246 (2017).
  31. Sonzogni, M., et al. A behavioral test battery for mouse models of Angelman syndrome: A powerful tool for testing drugs and novel Ube3a mutants. Molecular Autism. 9, 47 (2018).
  32. Dodge, A., et al. Generation of a novel rat model of Angelman syndrome with a complete Ube3a gene deletion. Autism Research. 13 (3), 397-409 (2020).
  33. Born, H. A., et al. Strain-dependence of the Angelman syndrome phenotypes in Ube3a maternal deficiency mice. Scientific Reports. 7 (1), 8451 (2017).
  34. File, S. E., Mabbutt, P. S., Hitchcott, P. K. Characterisation of the phenomenon of "one-trial tolerance" to the anxiolytic effect of chlordiazepoxide in the elevated plus-maze. Psychopharmacology. 102 (1), 98-101 (1990).
  35. Liu, N., et al. Single housing-induced effects on cognitive impairment and depression-like behavior in male and female mice involve neuroplasticity-related signaling. The European Journal of Neuroscience. 52 (1), 2694-2704 (2020).
  36. Ueno, H., et al. Effects of repetitive gentle handling of male C57BL/6NCrl mice on comparative behavioural test results. Science Reports. 10 (1), 3509 (2020).
  37. Rodgers, R. J., Dalvi, A. Anxiety, defence and the elevated plus-maze. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 21 (6), 801-810 (1997).
  38. Deacon, R. M. J., Penny, C., Rawlins, J. N. P. Effects of medial prefrontal cortex cytotoxic lesions in mice. Behavioural Brain Research. 139 (1-2), 139-155 (2003).
  39. Fernagut, P. O., Diguet, E., Labattu, B., Tison, F. A simple method to measure stride length as an index of nigrostriatal dysfunction in mice. Journal of Neuroscience Methods. 113 (2), 123-130 (2002).
  40. Wooley, C. M., Xing, S., Burgess, R. W., Cox, G. A., Seburn, K. L. Age, experience and genetic background influence treadmill walking in mice. Physiology & Behavior. 96 (2), 350-361 (2009).
  41. Lakes, E. H., Allen, K. D. Gait analysis methods for rodent models of arthritic disorders: reviews and recommendations. Osteoarthritis and Cartilage. 24 (11), 1837-1849 (2016).
  42. Deuis, J. R., Dvorakova, L. S., Vetter, I. Methods used to evaluate pain behaviors in rodents. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 284 (2017).
  43. Tanas, J. K., et al. Multidimensional analysis of behavior predicts genotype with high accuracy in a mouse model of Angelman syndrome. Translational Psychiatry. 12 (1), 426 (2022).
  44. Silva-Santos, S., et al. Ube3a reinstatement identifies distinct developmental windows in a murine Angelman syndrome model. The Journal of Clinical Investigation. 125 (5), 2069-2076 (2015).
  45. Milazzo, C., et al. Antisense oligonucleotide treatment rescues UBE3A expression and multiple phenotypes of an Angelman syndrome mouse model. JCI Insight. 6 (15), e145991 (2021).
check_url/65182?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kubik-Zahorodna, A., Prochazka, J., Sedlacek, R. Behavioral Characterization of an Angelman Syndrome Mouse Model. J. Vis. Exp. (200), e65182, doi:10.3791/65182 (2023).

View Video