Summary

אפיון שינויים Post-translational שינוי היסטון במודלים ניווניות Proteinopathy שמרים

Published: March 24, 2019
doi:

Summary

פרוטוקול זה מתווה נהלים ניסיוני לאפיון הגנום כולו לשינויים ברמות של היסטון post-translational שינויים (PTM) המתרחשים בהקשר ביטוי של חלבונים הקשורים ALS מחלת פרקינסון ב מודלים האפייה . לאחר ההפרדה מרחביות-דף, רמות PTM היסטון בודדים מזוהים עם נוגדנים ספציפיים שינוי באמצעות סופג המערבי.

Abstract

מחלות ניווניות, כגון נוירודגנרטיביות (ALS), מחלת פרקינסון (PD), לגרום לאובדן של מאות אלפי אנשים בכל שנה. אפשרויות טיפול יעיל מסוגל לעצור את התקדמות המחלה חסרים. למרות המאמצים רצף נרחב באוכלוסיות גדולות החולה, ברוב המקרים ALS ו PD להישאר בלתי מוסברת על ידי מוטציות גנטיות לבד. מנגנוני אפיגנטיקה, כגון שינוי post-translational של חלבוני היסטון, עשויים להיות מעורבים אטיולוגיה מחלות ניווניות והתקדמות ולהוביל מטרות חדשות להתערבות התרופות. אין ויוו בתרבית של דגמים במבחנה של ALS ו PD יקרות ולעיתים קרובות דורשים זמן ממושך ולא מייגעת פרוטוקולים ניסיוני. כאן, אנחנו חלוקה לרמות בגישה מעשית, מהירה וחסכונית לקביעת הגנום כולו שינויים ברמות שינוי היסטון באמצעות האפייה כמו מערכת מודל. פרוטוקול זה מאפשר מקיף חקירות שינויים epigenetic מחובר proteinopathies ניווניות המאששים ממצאים קודמים במערכות מודל שונה תוך הרחבת הידע שלנו באופן משמעותי epigenome מחלות ניווניות.

Introduction

מחלות ניווניות הן מחלות הרסנית עם מעט אין אפשרויות טיפול הזמינות. בין אלה, נוירודגנרטיביות (ALS), מחלת פרקינסון (PD) הם נורא במיוחד. כ- 90% מהמקרים ALS ו PD נחשבים לא סדיר, המתרחשים ללא היסטוריה משפחתית של המחלה, ואילו שאר המקרים בתורשה בדרך כלל מקושרות גנים ספציפיים מוטציה1,2. מעניין, שתי המחלות האלה קשורים עם חלבון mislocalization, צבירת3,4,5,6. למשל, התמזגו בסרקומה (FUS) ו DNA זפת מחייב חלבון 43 (TDP-43) הם חלבונים איגוד ה-RNA mislocalize אל הציטופלסמה, צבירה ב- ALS7,8,9,10, 11,12, בעוד α-synuclein הוא המרכיב עיקרון של אגרגטים proteinaceous כינה גופיפי PD5,13,14,15.

למרות המאמצים האגודה הגנום כולו מקיף אוכלוסיות מטופלים גדולים, רובם המכריע של המקרים ALS ו PD להישאר בלתי מוסברת גנטית. אפיגנטיקה יכול לשחק תפקיד במחלות ניווניות? אפיגנטיקה כוללת שינויים בביטוי הגנים המתרחשים ללא שינוי רצף ה-DNA כבסיס16. מנגנון epigenetic העיקרי כרוך השינויים translational פוסט (PTMs) של חלבוני היסטון16. התאים האיקריוטים, חומר גנטי הוא עטוף בחוזקה לתוך כרומטין. יחידת הבסיס של כרומטין הוא נוקלאוזום, המורכב 146 בסיסי זוגות של DNA סביב octamer היסטון, המורכב ארבעה זוגות של שינויים היסטוניים (שני עותקים לכל של שינויים היסטוניים H2A, ויזת עבודה H2B, H3 ו- H4)17. כל היסטון יש מעקב של N-מסוף בולט החוצה נוקלאוזום ולא ניתן לשנות על ידי התוספת של moieties כימיים שונים, בדרך כלל על שאריות של ליזין וארגינין-18. PTMs אלה הם דינאמיים, כלומר ניתן בקלות להוסיף, להסיר והם כוללים קבוצות כגון acetylation, מתילציה זירחון. PTMs לשלוט הנגישות של ה-DNA מכונות תעתיק, ובכך לסייע בקרת גנים ביטוי18. לדוגמה, acetylation היסטון מפחיתה את עוצמת האינטראקציה אלקטרוסטטית בין החלבון היסטון מאוד בסיסי עמוד השדרה ה-DNA טעונים שלילית, המאפשר את הגנים ארוז על ידי שינויים היסטוניים acetylated להיות נגיש יותר ובכך מאוד הביע19. לאחרונה, יחודיות ביולוגית יוצאת דופן של היסטון מסוים PTMs ושילובים שלהם הוביל היסטון קוד ההנחה20,21 ב אילו חלבונים זה לכתוב, למחוק, ולקרוא PTMs היסטון נפעל כדי לווסת את ביטוי גנים.

שמרים הוא מודל שימושי מאוד ללמוד הקשורים ניוון מוחיים. חשוב, משעולים הסלולר עצביים רבים נשמרים מן שמרים-בני22,23,24. שמרים מסכם את הדברים cytotoxicity פנוטיפים ואת החלבון הכללות על ביטוי של FUS, TDP-43 או α-synuclein22,23,24,25,26. למעשה, האפייה מודלים של ALS שימשו לזיהוי גורמי סיכון גנטיים בני27. יתר על כן, שמרים overexpressing האנושי α-synuclein מותרת עבור אפיון הרשת Rsp5 כמטרה druggable דהוא α-synuclein רעילות נוירונים28,29.

כאן, אנו מתארים את פרוטוקול ניצול האפייה כדי לזהות שינויים PTM הגנום כולו היסטון המשויך ניווניות proteinopathies (איור 1). השימוש של cerevisiae ס הוא אטרקטיבי ביותר בשל קלות השימוש, עלות נמוכה, ומהירות לעומת דגמים אחרים במבחנה ובבעלי של הקשורים ניוון מוחיים. רתימת קודם לכן פיתחה ALS ו PD מודלים22,23,25,26, לנו יש overexpressed האנושי FUS, TDP-43 וα-synuclein שמרים, חשפו היסטון ברורים PTM שינויים המתרחשים חיבור עם כל proteinopathy30. פרוטוקול זה נתאר כאן יכולה להסתיים בתוך פחות משבועיים של טרנספורמציה כדי ניתוח נתונים.

Protocol

1. שינוי צורה של cerevisiae ס עם בונה חלבונים הקשורים proteinopathy ניווניות לצמוח פראי סוג (WT) 303 שמרים, שמרים תמצית peptone מרק דקסטרוז (YPD) בין לילה עם טלטול (200 סל ד) ב- 30 ° C. לאחר 12−16 h של צמיחה, לדלל שמרים צפיפות אופטית על 600 nm (OD600) של 0.25 עם YPD. כמו 10 מ”ל של תרבות נוזלי שמרים יהיה צורך לשינו…

Representative Results

כדי להסביר שיטה זו, אנו ינצלו את היתרון של התוצאות שפורסמו לאחרונה30. FUS האנושי WT, TDP-43 overexpressed היו עבור 5 שעות, בעוד WT α-synuclein היה overexpressed במשך 8 שעות. בונה ccdB שימש פקד שלילי וקטור. איור 2 מציג את דיכוי צמיחה בתרבויות הנוזלית. שמרים היה נקצרו כמתואר, ס…

Discussion

הפרוטוקול המתואר כאן מספק דרך פשוטה, מועיל וחסכונית לסיווג שינויים PTM הגנום כולו היסטון בקורלציה עם proteinopathies ניווניות. אמנם ישנם דגמים אחרים של ALS ו PD, כגון במבחנה שורות תאים אנושיים, מאתר מודלים32, cerevisiae ס נותר אטרקטיבי בשל קלות השימוש. למשל, שמרים דגמים שאינם מצריכים ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים Royena Tanaz הודא יוסוף, סדיקא Taasen על עזרה טכנית. . אנחנו מאוד אסירי פרופסור ג’יימס שורטר למתן נדיב ריאגנטים, סיוע רוחני בעיצוב של ניסויים כוונון סוכרוז. שמרים פלסמידים היו מתנה נדיבה של פרופסור אהרון גיטלר (כולל גל 303-FUS; Addgene פלסמיד # 29614). ברוקלין קולג, מרכז מחקר מדעי מתקדם (יופי), כמו גם NIH NINDS מתקדם פוסט-דוקטורט המעבר פרס (K22NS09131401) תמיכה M.P.T.

Materials

-His DO Supplement Clontech 630415
10x Running Buffer Mix: 141.65 g glycine (ThermoFisher BP381-1), 30.3 g Tizma base (Sigma-Aldrich T6066), 10 g sodium dodecyl sulfate (Sigma-Aldrich L3771), and 1 L deionized water, pH 8.8.
12% Polyacrylamide Gels BIO-RAD 456-1041
2-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148
Anti-acetyl-Histone H3 (Lys14) Primary Antibody MilliporeSigma 07-353 (Lot No. 2762291) Dilution: 1/1000
Anti-acetyl-Histone H4 (Lys 16) Primary Antibody Abcam ab109463 (Lot No. GR187780) Dilution: 1/2000
Anti-acetyl-Histone H4 (Lys12) Primary Antibody Abcam ab46983 (Lot No. GR71882) Dilution: 1/5000
Anti-dimethyl-Histone H3 (Lys36) Primary Antibody Abcam ab9049 (Lot No. GR266894, GR3236147) Dilution: 1/1000
Anti-Histone H3 Primary Antibody Abcam ab24834 (Lot No. GR236539, GR174196, GR3194335) Nuclear Loading Control; Dilution: 1/2000
Anti-phospho-Histone H2B (Thr129) Primary Antibody Abcam ab188292 (Lot No. GR211874) Dilution: 1/1000
Anti-phospho-Histone H3 (Ser10) Primary Antibody Abcam ab5176 (Lot No. GR264582, GR192662, GR3217296) Dilution: 1/1000
BioPhotometer D30 Eppendorf 6133000010
Cell Culture Dish (100 x 20 mm) Eppendorf 30702118
Cell Culture Plate, 96 well Eppendorf 30730011
Centrifuge 5804/5804 R/5810/5810 R Eppendorf 22625501
Donkey Anti-Mouse IRDye 800 CW LI-COR 926-32212 (Lot No. C60301-05, C61116-02, C80108-05) Dilution: 1/5000
Donkey Anti-Rabbit IRDye 860 RD LI-COR 926-68073 (Lot No. C60217-06, C70323-06, C70601-05, C80116-07) Dilution: 1/2500
Ethanol Sigma-Aldrich E7023
Extra thick blot paper (filter paper) BIO-RAD 1703968
Galactose Sigma-Aldrich G0750 Prepare 20% w/v stock solution.
Glucose Sigma-Aldrich G8270 Prepare 20% w/v stock solution.
Glycerol Sigma-Aldrich G5516 Prepare 50 % w/v solution.
Immobilon-FL Transfer Membranes MilliporeSigma IPFL00010
Lithium acetate dihydrate (LiAc) Sigma-Aldrich L4158 Prepare a 1 M solution.
Loading Dye Mix: 1.2 g sodium dodecyl sulfate, 6 mg bromophenol blue (Sigma-Aldrich B8026), 4.7 mL glycerol, 1.2 mL 0.5M Trizma base pH 6.8, 0.93 g DL-Dithiothreitol (Sigma-Aldrich D0632), and 2.1 mL deionized water.
Methanol ThermoFisher A412-4
Mini-PROTEAN Tetra Vertical Electrophoeresis Cell BIO-RAD 1658004
Multichannel pipet Eppendorf 2231300045
NEB Restriction Enzyme Buffer 2.1, 10x New England Bio Labs 102855-152
Nhe I Restriction Enzyme New England Bio Labs 101228-710
Nuclease Free Water Qiagen 129114
Odyssey Fc Imaging System LI-COR Biosciences 2800-03
OmniTray Cell Culture Treated w/Lid Sterile, PS (86 x 128 mm) ThermoFisher 165218
pAG303GAL-a-synuclein-GFP Gift from A. Gitler
pAG303GAL-ccdB Addgene 14133
pAG303Gal-FUS Addgene 29614
pAG303GAL-TDP-43 Gift from A. Gitler
Poly(ethylene glycol) (PEG) Sigma-Aldrich P4338 Prepare a 50% w/v solution.
Ponceau S Stain Sigma-Aldrich P3504 Mix: 0.5 g 0.1% w/w Ponceau S dye, 5 mL 1% v/v acetic acid (Sigma-Aldrich 320099), and 500 mL deionized water.
PowerPac Basic Power Supply BIO-RAD 164-5050
Raffinose pentahydrate Sigma-Aldrich R7630 Prepare 10% w/v stock solution.
Salmon Sperm DNA Agilent Tech 201190
SD-His plates Mix: 20 g Agar (Sigma-Aldrich A1296), 0.77 g -His DO supplement, 6.7 g yeast Nitrogen Base w/o amino acids (ThermoFisher 291920), and 900 mL deionized water.
SGal-His plates Mix: 20 g Agar, 0.77 g -His DO supplement, 6.7 g yeast Nitrogen Base w/o amino acids, 100 mL galactose solution, and 900 mL deionized water.
Sodium dodecyl sulfate Loading Buffer Store at -20 oC. 6X, Mix: 1.2 g sodium dodecyl sulfate, 6 mg bromophenol blue, 0.93 g DL-Dithiothreitol, 2.1 mL deionized water, 4.7 mL glycerol, and 1.2 mL 0.5 M Trizma base, pH 6.8.
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich 221465 Prepare 0.2 M solution.
Sucrose Sigma-Aldrich 84097 Prepare 20% w/v stock solution.
TBS + 0.1% Tween 20 (TBST) Mix: 100 mL 10X TBS, 1 mL Tween 20 (Sigma-Aldrich P7949), and 900 mL deionized water.
TBS Blocking Buffer LI-COR 927-5000
Trans-Blot SD Semi-Dry Electrophoretic Transfer Cell BIO-RAD 170-3940
Transfer Buffer Mix: 22.5 g glycine, 4.84 g Tizma base, 400 mL methanol, 1 g sodium dodecyl sulfate, and 1.6 L deionized water.
Tris-Buffered Saline (TBS) 10X, 7.6 pH, Solution: Mix 24 g Trizma base, and 88 g sodium chloride (Sigma-Aldrich S7653). Fill to 1 L with deionized water.
WT 303 S. cerevisiae yeast Gift from J. Shorter
Yeast Extract Peptone Dextrose (YPD) Sigma-Aldrich Y1375

References

  1. Landgrave-Gómez, J., Mercado-Gómez, O., Guevara-Guzmán, R. Epigenetic mechanisms in neurological and neurodegenerative diseases. Frontiers in Cellular Neuroscience. 9, 58 (2015).
  2. Paez-Colasante, X., Figueroa-Romero, C., Sakowski, S. A., Goutman, S. A., Feldman, E. L. Amyotrophic lateral sclerosis: mechanisms and therapeutics in the epigenomic era. Nature Reviews Neurology. 11 (5), 266-279 (2015).
  3. Beitz, J. M. Parkinson’s Disease: a Review. Frontiers in Bioscience. 6, 65-74 (2014).
  4. Kim, H. J., et al. Mutations in prion-like domains in hnRNPA2B1 and hnRNPA1 cause multisystem proteinopathy and ALS. Nature. 495 (7442), 467-473 (2013).
  5. Poewe, W., et al. Parkinson disease. Nature Reviews Disease Primers. 3, 17013 (2017).
  6. Robberecht, W., Philips, T. The changing scene of amyotrophic lateral sclerosis. Nature Reviews Neuroscience. 14 (4), 248-264 (2013).
  7. Chen-Plotkin, A. S., Lee, V. M. Y., Trojanowski, J. Q. TAR DNA-binding protein 43 in neurodegenerative disease. Nature Reviews Neurology. 6 (4), 211-220 (2010).
  8. Couthouis, J., et al. A yeast functional screen predicts new candidate ALS disease genes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108 (52), 20881-20890 (2011).
  9. Da Cruz, S., Cleveland, D. W. Understanding the role of TDP-43 and FUS/TLS in ALS and beyond. Current Opinion in Neurobiology. 21 (6), 904-919 (2011).
  10. King, O. D., Gitler, A. D., Shorter, J. The tip of the iceberg: RNA-binding proteins with prion-like domains in neurodegenerative disease. Brain Research. 1462, 61-80 (2012).
  11. Neumann, M., et al. FET proteins TAF15 and EWS are selective markers that distinguish FTLD with FUS pathology from amyotrophic lateral sclerosis with FUS mutations. Brain. 134 (9), 2595-2609 (2011).
  12. Neumann, M., et al. Ubiquitinated TDP-43 in Frontotemporal Lobar Degeneration and Amyotrophic Lateral Sclerosis. Science. 314 (5796), 130-133 (2006).
  13. Baba, M., et al. Aggregation of alpha-synuclein in Lewy bodies of sporadic Parkinson’s disease and dementia with Lewy bodies. The American Journal of Pathology. 152 (4), 879-884 (1998).
  14. Lotharius, J., Brundin, P. Pathogenesis of parkinson’s disease: dopamine, vesicles and α-synuclein. Nature Reviews Neuroscience. 3 (12), 932-942 (2002).
  15. Spillantini, M. G., et al. α-Synuclein in Lewy bodies. Nature. 388 (6645), 839-840 (1997).
  16. Probst, A. V., Dunleavy, E., Almouzni, G. Epigenetic inheritance during the cell cycle. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10 (3), 192-206 (2009).
  17. Luger, K., Mäder, A. W., Richmond, R. K., Sargent, D. F., Richmond, T. J. Crystal structure of the nucleosome core particle at 2.8 Å resolution. Nature. 389 (6648), 251-260 (1997).
  18. Mazzio, E. A., Soliman, K. F. A. Basic concepts of epigenetics. Epigenetics. 7 (2), 119-130 (2012).
  19. Struhl, K. Histone acetylation and transcriptional regulatory. Genes & Development. 12 (5), 599-606 (1998).
  20. Garcia, B. A., Shabanowitz, J., Hunt, D. F. Characterization of histones and their post-translational modifications by mass spectrometry. Current Opinion in Chemical Biology. 11 (1), 66-73 (2007).
  21. Strahl, B. D., Allis, C. D. The language of covalent histone modifications. Nature. 403 (6765), 41-45 (2000).
  22. Jovicic, A., et al. Modifiers of C9orf72 dipeptide repeat toxicity connect nucleocytoplasmic transport defects to FTD/ALS. Nature Neuroscience. 18 (9), 1226-1229 (2015).
  23. Sanchez, Y., Lindquist, S. L. HSP104 required for induced thermotolerance. Science. 248 (4959), 1112 (1990).
  24. Outeiro, T. F., Lindquist, S. Yeast Cells Provide Insight into Alpha-Synuclein Biology and Pathobiology. Science. 302 (5651), 1772 (2003).
  25. Johnson, B. S., et al. TDP-43 Is Intrinsically Aggregation-prone, and Amyotrophic Lateral Sclerosis-linked Mutations Accelerate Aggregation and Increase Toxicity. Journal of Biological Chemistry. 284 (30), 20329 (2009).
  26. Sun, Z., et al. Molecular Determinants and Genetic Modifiers of Aggregation and Toxicity for the ALS Disease Protein FUS/TLS. PLOS Biology. 9 (4), e1000614 (2011).
  27. Elden, A. C., et al. Ataxin-2 intermediate-length polyglutamine expansions are associated with increased risk for ALS. Nature. 466 (7310), 1069-1075 (2010).
  28. Wijayanti, I., Watanabe, D., Oshiro, S., Takagi, H. Isolation and functional analysis of yeast ubiquitin ligase Rsp5 variants that alleviate the toxicity of human α-synuclein. The Journal of Biochemistry. 157 (4), 251-260 (2015).
  29. Tardiff, D. F., et al. Yeast Reveal a “Druggable” Rsp5/Nedd4 Network that Ameliorates α-Synuclein Toxicity in Neurons. Science. 342 (6161), 979 (2013).
  30. Chen, K., et al. Neurodegenerative Disease Proteinopathies Are Connected to Distinct Histone Post-translational Modification Landscapes. ACS Chemical Neuroscience. 9 (4), 838-848 (2018).
  31. Flick, J. S., Johnston, M. Two systems of glucose repression of the GAL1 promoter in Saccharomyces cerevisiae. Molecular and Cellular Biology. 10 (9), 4757 (1990).
  32. Fernandez-Santiago, R., Ezquerra, M. Epigenetic Research of Neurodegenerative Disorders Using Patient iPSC-Based Models. Stem Cells International. 2016, 9464591 (2016).
  33. Armakola, M., et al. Inhibition of RNA lariat debranching enzyme suppresses TDP-43 toxicity in ALS disease models. Nature Genetics. 44 (12), 1302-1309 (2012).
  34. Tibshirani, M., et al. Cytoplasmic sequestration of FUS/TLS associated with ALS alters histone marks through loss of nuclear protein arginine methyltransferase 1. Human Molecular Genetics. 24 (3), 773-786 (2015).
  35. Masala, A., et al. Epigenetic Changes Associated with the Expression of Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS) Causing Genes. Neuroscience. 390, 1-11 (2018).
  36. Eryilmaz, I. E., et al. Epigenetic approach to early-onset Parkinson’s disease: low methylation status of SNCA and PARK2 promoter regions. Neurological Research. 39 (11), 965-972 (2017).
  37. Daniele, S., et al. Epigenetic Modifications of the α-Synuclein Gene and Relative Protein Content Are Affected by Ageing and Physical Exercise in Blood from Healthy Subjects. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2018, 3740345 (2018).

Play Video

Cite This Article
Bennett, S. A., Cobos, S. N., Meykler, M., Fallah, M., Rana, N., Chen, K., Torrente, M. P. Characterizing Histone Post-translational Modification Alterations in Yeast Neurodegenerative Proteinopathy Models. J. Vis. Exp. (145), e59104, doi:10.3791/59104 (2019).

View Video