Destekli üreme teknikleri (ARTs) sonuçları geliştirmek ve ilişkili riskleri azaltmak için sürekli değerlendirme içindedir. Bu yazıda, tavşanların insan üreme açısından ideal bir hayvan modeli olarak kullanımına izin veren, verimli bir ağoprezervasyon protokolüyle minimal invaziv bir embriyo transfer prosedürü açıklanmaktadır.
İn vitro embriyo kültürü veya embriyo ağaloprezervasyon gibi destekli üreme teknikleri (ARTs), perinatal ve postnatal sonuçları ile doğal gelişim desenlerini etkiler. Sanat uygulamalarının zararsız olmasını sağlamak için hayvan modellerinde çalışmalar gereklidir. Buna ek olarak, son bir adım olarak, embriyo geliştirme çalışmaları tam vadeli sağlıklı yavru geliştirmek için kapasitelerinin değerlendirilmesi gerekir. Burada, rahim için embriyo transferi herhangi bir sanat ile ilgili deney gerçekleştirmek için vazgeçilmez.
Tavşan bir yüzyıl boyunca meme üreme çalışması için bir model organizma olarak kullanılmıştır. İnsan türü ve küçük boyutu ve düşük bakım maliyeti onun fitogenetik yakınlığı ek olarak, bu indüklenen yumurtlama gibi önemli üreme özelliklerine sahip, erken embriyonik gelişim bir kronolojisi insanlara benzer ve kısa bir gebelik bize kolayca ART uygulamasının sonuçlarını incelemek için izin. Dahası, sanat (örneğin intrakitoplazmik sperm enjeksiyonu, embriyo kültürü veya ağoprezervasyon) bu türe uygun verimlilik ile uygulanır.
Bu yazıda sunulan laparoskopik embriyo transfer tekniğinin ve ağoprezervasyon protokolünün kullanılması, 1) embriyoları kolay, minimal invazif bir teknik ve 2) tavşan uzun süreli depolanması için etkili bir protokol aracılığıyla nasıl aktarmayı tarif ediyoruz. embriyo zaman esnek lojistik kapasiteleri ve örnek taşıma yeteneği sağlamak için. Tavşan embriyoları farklı gelişimsel aşamalarında aktardıktan sonra elde edilen sonuçlar, Morula ‘nın tavşan embriyo kurtarma ve transfer için ideal bir aşama olduğunu göstermektedir. Böylece, cerrahi prosedürü haklı olarak, bir oviduktal embriyo transferi gereklidir. Ayrıca, tavşan morulları başarıyla vitrifiye ve laparoskopik olarak aktarılan, açıklanan teknikleri etkinliğini kanıtlamak.
İnsan infertilitesini atlayarak veya yüksek genetik değer ve hayvan genetik kaynaklarını koruyan Hayvancılık yaygınlaştırılması amaçlarıyla, teknik bir dizi topluca yardımcı üreme teknolojileri olarak adlandırılan, süperovülasyon gibi, içinde vitro fertilizasyon, embriyo kültürü veya ağoprezervasyon,1,2geliştirilmiştir. Şu anda, yumurtalıkları uyarmak ve çok sayıda antral ovaryalı folikülleri üretmek için hormonal tedaviler verilir1. Bu foliküllerden toplanan oositler olgunlaşabilir, döllenmiş ve in vitro olarak geliştirilmiştir ya kriokonservirovannogo ya da vekil annelere transfer edilinceye kadar3. Ancak, bu tedaviler sırasında, gamet ve zigotları bu koşullarda hayatta kalmak için embriyo adaptasyon gerektirebilir fizyolojik olmayan süreçler bir dizi maruz4,5. Bu adaptasyon erken embriyo plastisite nedeniyle mümkündür, hangi gen ifade ve gelişimsel programlama embriyo değişiklikleri sağlar6. Ancak, bu değişiklikler yetişkinliğe kadar embriyo gelişiminin sonraki aşamalarını etkileyebilir, ve şimdi yaygın olarak kabul edilir ki Yöntemler, zamanlama, ağkısızlık prosedürü veya kültür koşulları embriyo kaderi farklı sonuçlar göstermek7 , 8. bu nedenle, sanat spesifik indüklenen etkileri aydınlatmak, iyi karakterize hayvan modellerinin kullanımı kaçınılmazdır.
Meme embriyoları transferinden kaynaklanan ilk belgelenmiş canlı Doğum 1890 yılında gerçekleşti9. Bugün, bir vekil dişi embriyo transferi (ET) sonraki embriyo gelişimi aşamalarında Preimplantasyon sırasında sanat kaynaklı etkileri okuyan önemli bir adımdır10. ET teknikleri her hayvanın büyüklüğü ve anatomik yapısına bağlıdır. Büyük ölçekli hayvan modelleri durumunda, transservikal cerrahi dışı ET teknikleri ile ET gerçekleştirmek mümkün olmuştur, ancak daha küçük boyutlu türler serviks kateterizasyon daha karmaşık ve cerrahi teknikler sık kullanılan11. Ancak, cerrahi ET, implantasyon ve embriyo gelişimini zarar verebilecek kanama neden olabilir, kan uterus lümen istila edebilir gibi, embriyo ölümü10neden. Transservikal cerrahi dışı et teknikleri hala insanlarda, babunların, sığır, domuz ve fareler12,13,14,15,16,17, ancak cerrahi uygulanır Etler hala keçiler, koyun veya diğer hayvanlar gibi tür,10,18,19,20,21, tavşan gibi ek zorluklar mevcut kullanılmaktadır (iki bağımsız sertifikalar) veya fareler (küçük boyut). Yine de, cerrahi transfer yöntemleri giderek daha az invaziv yöntemler ile değiştirildi eğilimindedir. Embriyoları transfer etmek için endoskopi kullanıldı, örneğin, tavşan, domuz ve küçük ruminantlarda18,19,20. Bu minimal invaziv endoskopi yöntemleri embriyoları ampulla içine infundibulum üzerinden aktarmak için kullanılabilir, hangi tavşan önemlidir ve bazı türler yararlı etkileri göstermiştir20. Bu oviduct erken embriyo aşamalarında embriyo ve anne arasındaki doğru diyalog önemini dayanır. Yukarıda belirtildiği gibi, ovduct aracılığıyla embriyo göçü sırasında tavşanlar içinde yer alan embriyo remodeling,22,23implant edilebilir embriyolar elde etmek için esastır.
Büyük boyutlu hayvan modelleri, sığır gibi, biyokimyasal ve Preimplantasyon özellikleri insan türlerinin24benzer çünkü ilginç. Ancak, büyük hayvanlar ön denemeler kullanmak için çok pahalıdır, ve kemirgenler ideal bir model olarak kabul edilir (76% model organizmalar kemirgenler) laboratuar araştırması için25. Yine de, tavşan modeli üreme çalışmalarında kemirgenler üzerinde bazı avantajlar sağlar, insanlar tarafından sergilenen bazı üreme Biyolojik süreçler fareler bu daha tavşan benzer. İnsan ve tavşanlar benzer bir kronolojik embriyonik genom aktivasyonu, gastrülasyon ve hemochorial plasenta yapısını sunar. Buna ek olarak, tavşan kullanarak döllenme ve gebelik aşamalarında tam zamanlamasını bilmek mümkündür nedeniyle onların indüklenen yumurtlama25. Tavşan yaşam döngüleri kısa, 31 gün içinde gebelik tamamlama ve yaklaşık 4-5 ay içinde ergenliğe ulaşan; hayvan onun uysal ve agresif olmayan davranışları nedeniyle işlemek kolaydır, ve onun bakım büyük hayvanların pahasına kıyasla çok ekonomiktir. Ayrıca, tavşanların iki bağımsız serviks11,25ile Dubleks rahim var söz önemlidir. Bu, farklı deneysel grupların embriyoları aynı hayvana aktarılabilir, ancak farklı bir uterus boynuz içine, tercihli bir pozisyonda tavşan yerleştirir. Bu, hem deneysel etkileri karşılaştırmak için, sonuçları maternal faktörü azaltarak bize izin verir.
Günümüzde cerrahi olmayan ET yöntemleri tavşan içinde kullanımda değildir. 90 ‘ ların sonlarında bir transservikal et tekniği kullanılarak yürütülen bazı çalışmalar, cerrahi yöntemlerle% 5,5-20,0%11,26 VERSUS 50-65% arasında değişen düşük teslimat oranlarında sonuçlanan, bunların arasında laparoskopik prosedür Besenfelder ve Brem18. Tavşanların bu ameliyatsız ET yöntemlerinin düşük başarı oranları, transservikal ET ‘te önlenmiş olan oviduct ‘de gerekli embriyo remodeling eksikliği ile örtüşür. Burada, bir model organizma olarak tavşan kullanarak etkili bir minimal invaziv laparoskopik ET prosedürü tarif. Bu teknik, büyük hayvanların ve insanlarda daha fazla üreme araştırması için bir model sağlar.
Tavşanların embriyo implantasyonu için özellikle dar bir zaman penceresi olduğu için, bu türdeki ET, ET ‘de embriyonun gelişimsel aşaması ile alıcı27‘ nin fizyolojik durumu arasında yüksek düzeyde senkron gerektirir. Bazı durumlarda, embriyo gelişimini yavaşlatan bir üreme tedavisinden sonra ( In vitro Culture gibi) veya endometrial reseptüsü (superovülasyon tedavileri gibi) değiştirir, embriyo ve maternal uterusun arasında senkron yoktur. Bu durumlar sonucu olumsuz etkileyebilir. Bu bağlamlarda yanıt vermek için, bizi duraklatmak, düzenlemek ve deneyler devam sağlayan etkili bir tavşan Morula vitrifikasyon Protokolü açıklanmaktadır. Bu süreç üreme çalışmaları için Lojistik olarak arzu edilir ve bize embriyoların uzun süreli depolanması için kapasite verir, onların taşıma izin. Laparoskopik prosedür ve ağoprezervasyon stratejileri daha az hayvan ile çalışmaların daha iyi planlamasına olanak sağlar. Böylece, metodolojimiz hijyen ve ekonomik avantajlar sunar ve deneysel hayvanların insan tedavisinin iyileştirilmesi amacı ile hayvan araştırmalarının 3Rs (yedek, azaltma ve arıtma) konseptine uygundur. Böylece, bu yöntemlerle, tavşan in vivo üreme amaçlı ideal bir model organizma oluşturmaktadır.
Transfer edilen embriyolar9‘ dan ilk belgelenmiş canlı Doğum vakası beri, bu teknik ve tavşan türleri üreme çalışmalarında çok önemli hale gelmiştir. Ayrıca, manipülasyon, üretim, ağoprezervasyon vb. içeren embriyo araştırma çalışmaları, son bir adım olarak embriyo kapasitesinin değerlendirilmesi için sağlıklı tam vadeli yavru üretmek gerektirir. Bu nedenle embriyo transfer tekniği13,28. Yıllarca …
The authors have nothing to disclose.
Bu çalışma Ekonomi Bakanlığı ve Ispanya ‘nın rekabet gücü (AGL2017-85162-C2-1-R) ve Generalitat Valenciana araştırma programı (PrometeoII 2014/036) fonları tarafından destekleniyordu. N. Macowan Ingilizce dil hizmeti tarafından revize İngilizce metin sürümü
Bovine Serum Albumin (BSA) | VWR | 332 | |
Buprenorphine hydrochloride | Alvet Escartí | 626 | To be ordered by a licensed veterinarian. |
Buserelin Acetate | Sigma Aldrich | B3303 | |
Clorhexidine digluconate soap | Alvet Escartí | 0265DCCJ500B | |
Clorhexidine digluconate solution | Alvet Escartí | 0265DCCA500B | |
CO2 | Air Liquide | 99921 | CO2 N48. |
CO2 Incubator | Fisher scientific | 15385194 | |
Dimethyl Sulfoxide | Sigma Aldrich | W387509 | |
Dulbecco’s phosphate-buffered saline (DPBS) | Sigma Aldrich | D5773 | Without calcium chloride. |
Electric razor | Oster Golden A5 | 078005-140-002 | |
Endoscope camera | Optomic Spain S.A | OP-714 | |
Endoscope trocar with silicone leaflet valve | Karl Storz Endoscopia Ibérica S.A. | 30114GK | Lightweight trocar model. |
Enrofloxacin | Alvet Escartí | 9993046 | To be ordered by a licensed veterinarian. |
Epicraneal needle 23G | Alvet Escartí | 514056353 | Smaller needles can be also used. |
Epidural catheter | Vygon corporate | 187.10 | |
Epidural needle | Vygon corporate | 187.10 | |
Ethylene Glycol | Sigma Aldrich | 102466-M | |
Eye ointment | Alvet Escartí | 5273 | |
Ketamine hydrochloride | Alvet Escartí | 184 | To be ordered by a licensed veterinarian. |
Laparoscopy equipment | Karl Storz Endoscopia Ibérica S.A. | 26003 AA | Hopkins® Laparoscope, 0º-mm straight-viewing laparoscope, 30-cm length, 5-mm working channel. |
Light source | Optomic Spain S.A | Fibrolux 250 | |
Liquid Nitrogen | Air Liquide | P1505XXX | |
Mechanical CO2 insufflator | Karl Storz Endoscopia Ibérica S.A. | Endoflator® | |
Meloxicam | Alvet Escartí | 9993501 | To be ordered by a licensed veterinarian. |
Petri dishes, 35-mm | Sigma Aldrich | CLS430165-500EA | |
Plastic dressing (Nobecutan) | IBOR medica | 7140028 | |
Plastic Straw 0.25 mL | IMV – technologies | 6431 | |
Povidone iodide solution | Alvet Escartí | 02656DPYS500S | |
Scissors | ROBOZ | RS-5880 | Any regular surgical grade steel small straight scissors will work. |
Silicone tube for insufflator | Karl Storz Endoscopia Ibérica S.A. | 20400040 | |
Stereomicroscope | Leica | MZ16F | There are cheaper options such as Leica MZ8 or Nikon SMZ-10 or SMZ-2B, to name a few. |
Sterile Gloves | Alvet Escartí | 087GL010075 | |
Sterile gown | Alvet Escartí | 12261501 | |
Sterile mask | Alvet Escartí | 058B15924B | |
Straw Plug | IMV – technologies | 6431 | |
Sucrose | Sigma Aldrich | S7903 | |
Syringe, 1-mL | Fisher scientific | 11750425 | |
Syringe, 5-mL | Fisher scientific | 11773313 | |
Urinary catheter | IMV – technologies | 17722 | |
Waterbath | RAYPA | BAE-4 | |
Xylazine | Alvet Escartí | 525225 | To be ordered by a licensed veterinarian. |
Rabbits | Universitat Politècnica de València | Line A | Other maternal lines, such as Line V or Line HP can be used. |