We present a protocol to dissect and culture embryonic day 15 (E15) murine metatarsal bones. This highly physiological ex vivo model of endochondral ossification provides conditions closer to the in vivo situation than cells in monolayer or 3D culture and is a vital tool for investigating bone growth and development.
The fundamental process of endochondral ossification is under tight regulation in the healthy individual so as to prevent disturbed development and/or longitudinal bone growth. As such, it is imperative that we further our understanding of the underpinning molecular mechanisms involved in such disorders so as to provide advances towards human and animal patient benefit. The mouse metatarsal organ explant culture is a highly physiological ex vivo model for studying endochondral ossification and bone growth as the growth rate of the bones in culture mimic that observed in vivo. Uniquely, the metatarsal organ culture allows the examination of chondrocytes in different phases of chondrogenesis and maintains cell-cell and cell-matrix interactions, therefore providing conditions closer to the in vivo situation than cells in monolayer or 3D culture. This protocol describes in detail the intricate dissection of embryonic metatarsals from the hind limb of E15 murine embryos and the subsequent analyses that can be performed in order to examine endochondral ossification and longitudinal bone growth.
スケルトンは、イオン恒常性に、歩行及ぶ機能の範囲を持っている非常に、複雑な動的で複雑な器官です。骨および軟骨からなる、骨格が、それは、構造的、生化学的および機械的完全性1です維持するために動作する機能的に異なる細胞集団で構成されています。スケルトンの主な機能の1つは、発展と成長におけるその役割です。これらのプロセスは、タイトな内分泌および遺伝的制御を介して調節されている複数の細胞集団のオーケストレーションを必要とします。
平らな骨、例えば肩甲骨、頭蓋及び胸骨を除いて、哺乳動物の骨格が軟骨内骨化と呼ばれるプロセスを介して形成されています。規制の両方の分子的および空間的にこのプロセスは、中胚葉2から主に由来間葉系細胞の縮合から始まります。転写因子SOX9の影響下で、細胞を目で縮合の電子内部は発現していると、そのようなII型コラーゲンおよびアグリカンなどの軟骨特定の細胞外マトリックス(ECM)成分を分泌する、軟骨細胞に分化します。結露のマージンの細胞を、Iコラーゲンと将来の骨3の輪郭を描く、軟骨膜を形成急行タイプ。その後、軟骨膜の骨幹は、転写因子、Runx2のとオステリックス4の発現が監督、骨芽細胞に分化します。これは、骨芽細胞の優位性をもたらし、この層は、骨の中間部周りの鉱化骨の襟を形成骨膜という名前に変更されます。軟骨足場の骨膜および浸潤の血管の浸透は、それに軟骨細胞の残骸や軟骨基質5の多くを再吸収haematopoetically由来の骨吸収細胞、破骨細胞を、持参発生します。形成された空間は、一次骨化を生じさせる骨幹によって充填されています次第に骨幹の中核を占め、骨膜と合流センター。他の細胞は骨髄を生じさせます。出産の周囲には、血管および骨幹細胞は、二次骨化中心を形成するために開発骨幹のいずれかの側(骨端)で軟骨が豊富なマトリックスを貫通しています。骨端成長板- -すべての長骨6の線形成長を調整する責任を負う長骨の両端に骨端と骨幹の間に位置する軟骨のバンドです。
成長板内の軟骨細胞は、最初に増殖し、その後、転写および成長因子の連続式でコーディネート形態学的に異なるゾーンを経て進行します。この一連のイベントの集大成がこの軟骨前駆体の中心で軟骨細胞の細胞周期と肥大からの出口です。肥大軟骨細胞を強く速達X型コラーゲンおよびマトリックスメタロプロテアーゼ-13(MMP13)と縦成長の方向のかなりの量の拡大は、哺乳動物7,8における骨の成長への最大の貢献を提供します。また、肥大軟骨細胞はマトリックス小胞の放出を介して、その周囲のECMの石灰化、膜構造は、それらのホスファターゼの包含(組織非特異的アルカリホスファターゼ(TNAP)とPHOSPHO1)を介して、非晶質リン酸カルシウムの製造に特化境界カルシウムタンパク質チャネリング(アネキシン)9-11。この石灰化軟骨は、破骨細胞の動員およびマトリックス再吸収の結果、基礎となる骨髄から血管に侵略されています。これは、彼らが急速に鉱化ある類骨の層を敷設石灰化軟骨の残党の表面に骨芽細胞の遊走とアライメントが続いています。一次海綿の網状骨は、後に二次海綿質12の層板骨に改造されています。中骨端核融合の結果軟骨内骨化13の停止。
乱れ発生および/または長手方向の骨の成長14を防止するために軟骨内骨化は、多くの内分泌および傍分泌ホルモンおよび成長因子による厳しい規制の下にあります。これらのプロセスを支える分子・細胞メカニズムのより良い理解は、人間の利益に向けて臨床の進歩の追求で、したがって必須です。異なる年齢、場所や種の成長板との間の類似点と相違点へのこれまでの研究では、大幅に成長板のダイナミクスを15,16の周囲の生理学的メカニズムの理解を改善しています。その環境からの軟骨細胞の除去は、COL2A1 17などの主要なマーカーの発現の消失を伴う、脱分化につながることができますようにしかし、単離された軟骨細胞の研究は、困難です。
マウスの中足骨、臓器の移植片培養、パイオランダの教授エリザベートバーガーらがoneered、 生体内 18 に見られる文化の模倣で骨の成長率として軟骨内骨化し、骨の成長を研究するための非常に生理のex vivoモデルです。ユニーク、中足骨器官培養は、軟骨形成の異なる段階で軟骨細胞の検査を可能にするため、文化19-21における細胞よりもin vivoの状況に近い条件を提供する、細胞-細胞および細胞-マトリックス相互作用を維持します。また、このモデルは、一次軟骨細胞培養は不可能である線形骨成長の直接的検査を可能にします。また、そのため、成長板のローカル効果の具体的な分析を可能に全身および局所因子の分離を可能にします。
中足骨の文化は、多数のパラメータの調査を可能にします。全長のとの鉱化地域の毎日の測定値基礎は、標準的な位相差顕微鏡及び画像解析ソフトウェアを用いて行うことができます。 in situハイブリダイゼーションおよび免疫組織染色で組織学は、容易に両方の細胞および分子実体の空間分解能、従来の細胞培養方法に比べて大きな利点を可能にする、中足骨切片上で実施してもよいです。免疫組織化学的手法は、軟骨細胞22を増殖することにより5-ブロモ-2'-デオキシウリジン(BrdU)の取り込みの検出および定量を含んでいます。また、中足骨組織のさらなる処理は、mRNA発現(RT-qPCRの)、タンパク質および細胞内シグナル伝達の解析(ウエスタンブロット)、または脂質組成(質量分析)の下流の分析を可能にするために行われてもよいです。これまでのほとんどの研究は、出生後の動物から培養した胚性中足骨ではなく、中足骨を使用します。両方のモデルが有益であることができる一方で、胚の骨の研究は、いくつかの利点があります:彼らは速く成長し、exploすることができます鉱化プロセス23-25の開始および進行を研究するited。
このプロトコルは、詳細に胚15日目(E15)は、マウス胚の後肢から胚中足骨の複雑な解剖を説明します。また、解剖学的に別個の中足骨の成長と鉱化作用が示されています。
マウス胚中足骨の文化は、軟骨内成長と鉱化作用の高度生理学的モデルを提供します。初期の研究では、E15マウス中足骨は骨格の成長および分化の正常なパターンを受けることが確認されました。軟骨(軟骨細胞)と骨(骨芽細胞と破骨細胞)細胞およびそれらのそれぞれのコラーゲン性マトリックスは、in vivoで観察されたものと区別がつきません。しかし、このモデルのいくつかの認識限界があります。破骨細胞分化の速度は、骨の成長(しかし分化軟骨ではない)であるとして損なわれる。骨の成長は、in vivoで観察されたものよりも約50%遅く、局所因子( 例えば 、IGF-1、BMPの、 など )31の生産に影響を与える全身要因の不備に起因する可能性があります。また、十分に骨がその機械的環境に敏感であることが認識され、これは、Cに応答培養中足骨、の場合であります機械的負荷32,33でhanges。このプロトコルで説明したようにそのため、無負荷の状況では、鉱化作用、ミネラル吸収が損なわれる可能性があります。それにもかかわらず、中足骨のモデルは、直接インビトロ培養系で 2Dと3Dを介して可能でない線状の骨の成長を測定する能力を提供しています。
我々は、E15マウス中足骨の解剖と文化に関わるプロトコルの包括的な説明を提供し、実際に、初めて、実験のための第2、 第3および第 4中足骨をプールの有効性を確認しています。
E17 / E18から中足骨は、一般的に(培養14日以上IE)長期間のex vivoで増殖するそれらの異常な電位による骨成長のメカニズムを調べるために使用されます。それらは、胚の縦骨の成長の成長因子の役割を調査するために、十分に確立されたモデルです。さらに、出生後の中足骨の解剖培養は、一般的に、出生後の骨の成長と胎児の骨成長が異なっ21調節されることが理解されているように、出生後の骨の成長を取り囲むメカニズムを描写するために使用されます。培養生後中足骨で観察された骨の成長は長期試験で自分の可能性を制限し、この出生後の段階で、骨の成長の詳細全身影響を強調し、しかし、胚の基礎25,34で観察されたものよりも著しく小さいです。実際、マウスから3日目の生後中足骨は、一般的に測定可能な成長34を得るために使用することができ、最新のステージです。
ここでは、E15での胚の中足骨の単離のために私たちのプロトコルを記述します。 E15中足骨のヒドロキシアパタイト鉱物が存在しないことは、それらが縦骨の成長を取り囲むメカニズムも開始しないだけを調べるために無類のモデルを提供することを意味します骨格の石灰化。末端肥大軟骨細胞ゾーンの鉱化マトリックスは、その後石灰化している骨の特定のマトリックス(類骨)を敷設する骨芽細胞に侵入するための足場を提供し、そのようなこの最初の鉱化作用として成功し、機能的な骨形成35のために不可欠です。実際にE15の中足骨を利用する最近の報告数は、石灰化プロセス28,36,37の調査のための彼らのユニークな能力を確認しました。また、研究者らは、骨の成長/石灰化の設定外のモデルとして胚中足骨の可能性を強調表示し、血管新生38のモデルとして、E15の中足骨の使用が記載されています。
私たちが説明するプロトコルは、層流フード、解剖を行うための解剖顕微鏡、および切除した原基の培養のためのCO 2インキュベーターを含むのみ標準的な実験装置を必要とします。また、非常に基本的なCULαMEM、BSA、抗生物質、抗真菌剤、およびL-アスコルビン酸(ヒドロキシプロリンおよびヒドロキシリジンの合成における補因子、コラーゲン39の製造のための2つの必須アミノ酸)を含むチャー培地は、動物血清のような未定義の添加剤の使用を回避します。伝統的に、研究者らは、培養胚の中足骨に使用されるメディアにβGPを追加したが、我々の結果で明らかにされるように、追加のリン酸源の使用は、この培養系で成功石灰化のために必要とされていません。これは、ECMの石灰化を支えるメカニズムを理解することの追求に重要な知見です。
中足骨は以前、長骨の発達40の調節にトランスフォーミング成長因子βの役割を探求するのSmad2のドミナントネガティブ型を含むアデノウイルスに感染しています。ここでは、またトンを示す、GFPウイルス粒子と野生型E15中足骨のトランスフェクションが成功を明らかにする帽子レンチウイルス技術は、容易に足骨培養における遺伝子発現を操作するために採用することができます。同様に、中足骨器官培養系は、より良好な骨成長過程における特定の遺伝子の役割を理解するために遺伝的に改変されたマウスからの骨の成長を比較するには優れたモデルです。我々の以前の研究では、軟骨内骨成長におけるサイトカインシグナル-2(SOCS2)の抑制の役割を決定するために、中足骨器官培養系を利用しています。 SOCS2欠損マウスから中足骨を使用して、我々は、成長ホルモンは、成長ホルモン治療34に応答しない野生型の中足骨とは異なり、成長因子(IGF-1)のようなインスリンのその長手成長独立してシミュレートすることが可能であることを示しています、 41。これは、中足骨の培養物は、異なる遺伝子および/または軟骨内骨成長の外因性因子の影響を調べるために操作可能な範囲を強調する。
要約すると、我々はdetaiを持っています操作および分析のさまざまな方法を使って調べることができる胚の中足骨の抽出成功と文化のための方法を導きました。このex vivoでのモデルは、従って、単層又は三次元培養物中の細胞よりも多くの生理学的モデルを提供すること、ならびに軟骨形成の異なる段階における軟骨細胞が含まれて、細胞-細胞及び細胞-マトリックス相互作用を維持します。中足骨器官培養は、したがって、軟骨内骨化を担当する分子機構を調べるためのユニークなモデルであり、骨の生理学と病態生理の両方の我々の理解を促進するために必須です
The authors have nothing to disclose.
We are grateful to the Biotechnology and Biological Sciences Research Council (BBSRC) for funding DH (BB/J01446X/1), CF & VEM (Institute Strategic Programme Grant Funding BB/J004316/1). We also acknowledge Arthritis Research UK for funding to KAS (20413). We thank Miss Elaine Seawright for her assistance with the experiments detailed, Dr. Neil Mackenzie for his assistance with the lentiviral techniques, and Mr Darren Smith and Mr Alex Robertson (Roslin Institute BRF) for their assistance with the animal studies.
Dissection scissors | World Precision Instruments | 14393 | Autoclave sterilise before use |
Dumont #5 tweezers | World Precision Instruments | 500342 | Autoclave sterilise before use |
Dumont #4 tweezers | World Precision Instruments | 500339 | Autoclave sterilise before use |
SuperFine Vannas scissors | World Precision Instruments | 501778 | |
Absolute ethanol | Fisher Scientific | E/0650DF/17 | Dilute to 70% v/v in dH2O |
α-MEM without nucleosides | Thermo Fischer Scientific | 22561021 | |
Bovine serum albumin | Sigma Aldrich | A3059 | |
Syringe filters (0.22μm) 33mm diameter | Merck Millipore | SLGP033RS | |
Phosphocholine chloride calcium salt tetrahydrate | Sigma Aldrich | P0378 | Add directly to the media prior to experimentation |
L-ascorbic acid-2-phosphate | Sigma Aldrich | A8960 | Make up stock soution at 5mg/ml and aliquot at -20°C |
Calcium chloride dihydrate | Sigma Aldrich | C5080 | Make up stock soution at 150mM and aliquot at -20°C |
β-glycerophosphate disodium salt hydrate | Sigma Aldrich | G9422 | Make up stock soution at 1mM and aliquot at -20°C |
Gentamicin | Thermo Fischer Scientific | 15710049 | |
Amphotericin B | Thermo Fischer Scientific | 15290018 | |
Nunc cell-culture treated 24-well plates | Thermo Fischer Scientific | 142475 | |
Polybrene | Sigma Aldrich | H9268 | |
DAPI | Thermo Fischer Scientific | D3571 |