Summary

Isoleren haarfollikel stamcellen en epidermale keratinocyten van Dorsale Mouse Skin

Published: April 29, 2016
doi:

Summary

An ideal model for studying adult stem cell biology is the mouse hair follicle. Here we present a protocol for isolating different populations of hair follicles stem cells and epidermal keratinocytes, employing enzymatic digestion of mouse dorsal skin followed by FACS analysis.

Abstract

The hair follicle (HF) is an ideal system for studying the biology and regulation of adult stem cells (SCs). This dynamic mini organ is replenished by distinct pools of SCs, which are located in the permanent portion of the HF, a region known as the bulge. These multipotent bulge SCs were initially identified as slow cycling label retaining cells; however, their isolation has been made feasible after identification of specific cell markers, such as CD34 and keratin 15 (K15). Here, we describe a robust method for isolating bulge SCs and epidermal keratinocytes from mouse HFs utilizing fluorescence activated cell-sorting (FACS) technology. Isolated hair follicle SCs (HFSCs) can be utilized in various in vivo grafting models and are a valuable in vitro model for studying the mechanisms that govern multipotency, quiescence and activation.

Introduction

Volwassen stamcellen (SC's) zijn essentieel voor het behoud van weefselhomeostase vervangen stervende cellen en beschadigd weefsel te herstellen na letsel. Deze SC's worden gedefinieerd door hun vermogen om voortdurende zelfvernieuwing te ondergaan en te differentiëren in verschillende cellijnen 1-3. De best bestudeerde systemen, die afhankelijk zijn van volwassenen SC's voor hun replenishment zijn, zijn onder andere het hematopoietische systeem, de darm en de huid 1,2,4.

Tijdens embryogenese, de huid begint als een enkele laag van epidermale cellen. Morfogenese van de haarfollikel (HF) start wanneer mesenchymale cellen bevolken de huid en vormen een onderliggende dermis collagene 5. Gespecialiseerd mesenchymale cellen, die later de dermal papilla (DP) vormen, rechtstreeks te organiseren onder de epidermale laag en het stimuleren van het epitheel om haar placodes die beginnen naar beneden 6 groeien vormen. Sterk prolifererende cellen matrix, gelegen aan de voet van de HF,envelop deze mesenchymale cellen en vormen de haarwortel, terwijl de binnenlaag begint te differentiëren in concentrische cilinders de haarschacht (HS) en de omringende binnenste schede (IRS) 2,3 vormen.

In het postnatale leven huidepidermis bestaat uit drie compartimenten: de interfolliculaire epidermis (IFE), de talgklier (SG) en HF. In tegenstelling tot de IFE en SG, die in een constante staat van homeostase, de HF is een dynamische mini-orgaan dat continue cycli van groei (anagen), vernieling (catagen) en rust (telogen) 4,7 ondergaat. De haarfollikel stamcellen (HFSCs) die brandstof dit eeuwige cyclus, wonen in een niche binnen de HF die bekend staat als de bobbel 4. Tijdens Anagen de HFSCs verlaat de bobbel, na activering signalen van de DP, beginnen uitdijende en daal af naar beneden waardoor een lange lineaire spoor van cellen bekend als de buitenste wortel schede (ORS) 8-10. De matrix cellen, datomringen de DP aan de basis van het HF, snelle cyclus migreren opwaartse differentiatie ondergaan waardoor de HS en de IRS 10 (figuur 1) genereren. De duur van anagen bepaalt de lengte van het haar en is afhankelijk van de proliferatie en differentiatie capaciteit van de matrix 6 cellen. Wanneer de HF binnengaat catagene, de transit versterken matrix cellen in de bol niet langer te laten groeien, te ondergaan apoptose en regressie geheel, terwijl het trekken van de DP omhoog totdat deze de niet-cycling deel van het HF 8,11 bereikt. Tijdens dit terugtrekken HF vormt een tijdelijke structuur zogenaamde epitheliale streng, die kenmerkend catagene en bevat vele apoptotische cellen. Bij muizen catagen duurt tussen 3-4 dagen en is sterk gesynchroniseerd in de eerste haarcyclus. Wanneer de HF telogen reikt HFSCs geworden rustig. De verschillende fasen van de HF-cyclus worden ook gekenmerkt door veranderingen in de kleur van de huid van de muis vanwege melanin productie. De huid verandert van zwart tijdens anagen tot donkergrijs tijdens catagen naar roze tijdens telogene 6,7,12,13.

Figuur 1
Figuur 1: de haarfollikel Cycle. De HF is samengesteld uit een vast bovenste deel en een onderste voortdurend verbouwen, fietsen gedeelte dat continue cycli van snelle groei (anagen), vernieling (catagen) en een relatieve rust fase of rust (telogene) ondergaat. Klik hier voor een grotere weergave versie van deze figuur.

De SC behoud van de HF werden aanvankelijk geïdentificeerd met behulp van chase experimenten met getritieerd thymidine, dat een bevolking van trage fietsen label behoud van cellen (LRC), die woonde in de permanente regio van de HF net onder de SG 14 geopenbaard. Vooruitgang in HFSCkarakterisatie onthulde een klein aantal markers die kunnen worden gebruikt om specifieke SC identificeren en isoleren van de HF niche 15. Misschien is de beste marker voor de verrijking van HFSCs is CD34, een celoppervlak marker ook geïdentificeerd als een hematopoietische SC marker bij de mens 16. Binnen deze CD34 + populaties twee verschillende populaties ook geïsoleerd gebaseerd op α6 integrine expressie 2. Een andere marker is keratine 15 (K15) die sterk tot expressie gebracht in het bultgebied, co-lokaliseert met CD34 expressie en K15 promoter wordt gebruikt voor het richten en het isoleren HFSCs in transgene dieren 15,17-19. In de afgelopen tien jaar een aantal andere verschillende populaties van HFSCs en voorlopercellen zijn ook gemeld in het HF 17,20-27 te verblijven.

Een extra interessante functie van HFSCs is hun bijdrage aan de huid te herstellen. Onder normale omstandigheden HFSCs vervult de HF en geen deel aan IFE homeostase niet nemen. However, in reactie op verwonding, deze cellen sluiten de SC niche en steun herbevolken IFE 9. We hebben onlangs aangetoond dat muizen verwijderd voor de pro-apoptotische Sept4 / kunst gen weergave een verhoogd aantal CD34, K15 en SOX9 + HFSCs, die een resistentie tegen apoptose te tonen. HFSCs werden geïsoleerd uit Sept4 / kunst – / – dorsale huid gebruikmaking fluorescentie geactiveerde celsortering (FACS) en er was meer dan een tweevoudige toename van het aantal CD34 + en K15 + HFSCs. Deze Sept4 / kunst – / – HFSCs werden geëxpandeerd in vitro en niet alleen gaf aanleiding tot meer kolonies maar konden ook zwaardere omstandigheden te weerstaan ​​in vergelijking met controles 28.

Door met een verhoogd aantal HFSCs, Sept4 / kunst – / – muizen aanzienlijk sneller genezen als reactie op huidexcisie verwondingen. Opvallend Sept4 / ARTS – / – muizen displayeda groot aantal geregenereerd HFs uit de wond bed, en aanzienlijk kleinere littekens. Bovendien, muizen verwijderd XIAP (X-gebonden inhibitor van apoptose), de biochemische doelwit van KUNSTEN, toonde gestoorde genezing 28.

Onze resultaten en de werkzaamheden in andere laboratoria hebben aangetoond dat HFSCs dienen als een ideaal model voor het bestuderen van de biologie en de functie van de volwassen SC. Hier beschrijven we de methode voor de verrijking en isolatie van HFSCs en epidermale keratinocyten basis van de expressie van vier markers: α6 integrine; integrine β1; Sca-1 (een marker voor epidermale keratinocyten) en CD34. Vergelijkbare isolatie van K15 + HFSCs kan ook worden uitgevoerd met behulp van de K15-GFP reporter muis 19.

Protocol

Deze studie werd uitgevoerd in strikte overeenstemming met de in de Guide geschetst voor de zorg en het gebruik van proefdieren van het ministerie van Volksgezondheid van Israël aanbevelingen. Alle dieren werden behandeld volgens de goedgekeurde institutionele Animal Care protocol IL-02302-2015 van het Technion Israel Institute of Technology. 1. Experimentele Voorbereiding Bereiding van gecheleerd foetaal runderserum Opmerking: Epitheliale cellen zijn erg gevoelig voor cal…

Representative Results

Dit protocol beschrijft in detail de verrijking en isolatie van twee soorten populaties. Uitstulping SC's en epidermale keratinocyten Figuur 2 toont de belangrijkste stappen van het protocol. Gebruik makend van de huid verwijderd uit de dorsale achterkant van 8 weken oude muizen, we verrijkt uitstulping SC's met behulp van de CD34 marker, die alleen in HFSCs wordt uitgedrukt; en Sca-1, waarbij epidermale keratinocyten labels. Figuur 3 toont versc…

Discussion

De hier beschreven protocol is vaste HFSCs voor het isoleren van de dorsale huid van volwassen muizen maar ook kan worden toegepast voor isolatie van andere populaties in de HF structuur, gebaseerd op de selectie van merkers 2,16,23,28,29. Deze werkwijze is bijzonder voordelig ten opzichte van andere methoden voor celisolatie, zoals weefsel dissociatie, dat een specifiek celtype kunnen worden geselecteerd en geoogst uit een mengsel van heterogene celpopulaties. Bovendien is de hier beschreven werkwijze is sne…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported in part by NIH grant RO1GM60124 (to H.S.). H.S. is an Investigator with the Howard Hughes Medical Institute. Y.F. is supported by the Deloro Career Advancement Chair and The German Israeli Foundation (I-2381-412.13/2015). D.S. is supported by the Coleman-Cohen post-doctoral fellowship.

Materials

Isoflurane  Primal Critical Care  66794-017-10
Carbon dioxide
Electro Shaver Oster  Golden A5 Shaver from any other company could be used
70% ethanol Gadot Lab 830000051 96% ehtanol diluted with distilled water 
Dissection mat Dissection tools from any provider can be used
Forceps Dumont 11251-10 Foreceps from any other company could be used
Scissors  Dumont 14094-11 Scissors from any other company could be used
Needles/Pins
Scalpel Albion 10 Ensure that the scalpel has a blunt end
Tissue culture dish 60mm x 15mm Sigma-Aldrich CLS430166
PBS In-house PBS without Calcium and Magnesium
0.25% Trypsin/EDTA Biological Industries 03-050-1A Trypsin obtained from a different company might have a different activity and duration of the trypsin digest has to be adjusted accordingly
Pipettes 10ml Sigma-Aldrich Corning, 4488
Ice
50 ml sterie centrifuge tubes Minplast Ein-shemer 35050-43
70µM Cell strainer Fisher 22362548
40µM Cell strainer Fisher 22362549
Staining buffer
Centrifuge Eppendorf 5804 R 5805 000.017
FACS tubes with Cell strainer caps  Falcon  352235
FACS tubes  Falcon  352063
Integrin β1 eBioscience 25-0291 1:400
Integrin α6 eBioscience 15-0495 1:600
Sca I eBioscience 11-5981 1:200
CD34 eBioscience 9011-0349 1:300
DAPI Sigma-Aldrich D9542 50ng/ml
Dry Chelex BioRad 142-2842
Beaker  Pyrex
Distilled H2O 
Stir bar
NHCl BioLab 1903059
Fetal bovine serum (FBS) Beit Haemek Biological Industries 400718 FBS obtained from a different company can be used
1L glass bottle Ilmabor Boro 3.3
Bottle top filter Autofil 1102-RLS

References

  1. Wagers, A. J., Weissman, I. L. Plasticity of adult stem cells. Cell. 116, 639-648 (2004).
  2. Blanpain, C., Lowry, W. E., Geoghegan, A., Polak, L., Fuchs, E. Self-renewal, multipotency, and the existence of two cell populations within an epithelial stem cell niche. Cell. 118, 635-648 (2004).
  3. Fuchs, E. Scratching the surface of skin development. Nature. 445, 834-842 (2007).
  4. Hsu, Y. C., Fuchs, E. A family business: stem cell progeny join the niche to regulate homeostasis. Nat Rev Mol Cell Biol. 13, 103-114 (2012).
  5. Blanpain, C., Fuchs, E. Epidermal homeostasis: a balancing act of stem cells in the skin. Nat Rev Mol Cell Biol. 10, 207-217 (2009).
  6. Alonso, L., Fuchs, E. The hair cycle. J Cell Sci. 119, 391-393 (2006).
  7. Muller-Rover, S., et al. A comprehensive guide for the accurate classification of murine hair follicles in distinct hair cycle stages. J Invest Dermatol. 117, 3-15 (2001).
  8. Zhang, Y. V., Cheong, J., Ciapurin, N., McDermitt, D. J., Tumbar, T. Distinct self-renewal and differentiation phases in the niche of infrequently dividing hair follicle stem cells. Cell Stem Cell. 5, 267-278 (2009).
  9. Ito, M., et al. Stem cells in the hair follicle bulge contribute to wound repair but not to homeostasis of the epidermis. Nat Med. 11, 1351-1354 (2005).
  10. Hsu, Y. C., Pasolli, H. A., Fuchs, E. Dynamics between stem cells, niche, and progeny in the hair follicle. Cell. 144, 92-105 (2011).
  11. Fuchs, E. The tortoise and the hair: slow-cycling cells in the stem cell race. Cell. 137, 811-819 (2009).
  12. Plikus, M. V., Chuong, C. M. Complex hair cycle domain patterns and regenerative hair waves in living rodents. J Invest Dermatol. 128, 1071-1080 (2008).
  13. Ito, M., Kizawa, K., Hamada, K., Cotsarelis, G. Hair follicle stem cells in the lower bulge form the secondary germ, a biochemically distinct but functionally equivalent progenitor cell population, at the termination of catagen. Differentiation. 72, 548-557 (2004).
  14. Cotsarelis, G., Sun, T. T., Lavker, R. M. Label-retaining cells reside in the bulge area of pilosebaceous unit: implications for follicular stem cells, hair cycle, and skin carcinogenesis. Cell. 61, 1329-1337 (1990).
  15. Cotsarelis, G. Epithelial stem cells: a folliculocentric view. J Invest Dermatol. 126, 1459-1468 (2006).
  16. Trempus, C. S., et al. Enrichment for living murine keratinocytes from the hair follicle bulge with the cell surface marker CD34. J Invest Dermatol. 120, 501-511 (2003).
  17. Morris, R. J., et al. Capturing and profiling adult hair follicle stem cells. Nat Biotechnol. 22, 411-417 (2004).
  18. Lyle, S., et al. The C8/144B monoclonal antibody recognizes cytokeratin 15 and defines the location of human hair follicle stem cells. J Cell Sci. 111 (Pt 21), 3179-3188 (1998).
  19. Liu, Y., Lyle, S., Yang, Z., Cotsarelis, G. Keratin 15 promoter targets putative epithelial stem cells in the hair follicle bulge. J Invest Dermatol. 121, 963-968 (2003).
  20. Vidal, V. P., et al. Sox9 is essential for outer root sheath differentiation and the formation of the hair stem cell compartment. Curr Biol. 15, 1340-1351 (2005).
  21. Snippert, H. J., et al. Lgr6 marks stem cells in the hair follicle that generate all cell lineages of the skin. Science. 327, 1385-1389 (2010).
  22. Nijhof, J. G., et al. The cell-surface marker MTS24 identifies a novel population of follicular keratinocytes with characteristics of progenitor cells. Development. 133, 3027-3037 (2006).
  23. Jensen, U. B., et al. A distinct population of clonogenic and multipotent murine follicular keratinocytes residing in the upper isthmus. J Cell Sci. 121, 609-617 (2008).
  24. Jensen, K. B., et al. Lrig1 expression defines a distinct multipotent stem cell population in mammalian epidermis. Cell Stem Cell. 4, 427-439 (2009).
  25. Jaks, V., et al. Lgr5 marks cycling, yet long-lived, hair follicle stem cells. Nat Genet. 40, 1291-1299 (2008).
  26. Horsley, V., et al. Blimp1 defines a progenitor population that governs cellular input to the sebaceous gland. Cell. 126, 597-609 (2006).
  27. Goldstein, J., Horsley, V. Home sweet home: skin stem cell niches. Cell Mol Life Sci. 69, 2573-2582 (2012).
  28. Fuchs, Y., et al. Sept4/ARTS regulates stem cell apoptosis and skin regeneration. Science. 341, 286-289 (2013).
  29. Nowak, J. A., Fuchs, E. Isolation and culture of epithelial stem cells. Methods Mol Biol. 482, 215-232 (2009).

Play Video

Cite This Article
Soteriou, D., Kostic, L., Sedov, E., Yosefzon, Y., Steller, H., Fuchs, Y. Isolating Hair Follicle Stem Cells and Epidermal Keratinocytes from Dorsal Mouse Skin. J. Vis. Exp. (110), e53931, doi:10.3791/53931 (2016).

View Video