Scioglimento dinamica nucleare Polarizzazione Strumentazione in tempo reale enzimatica di reazione misure di frequenza di risonanza magnetica nucleare

Polarizzazione nucleare dinamica (DNP), ^1,2 di una tecnica progettata per migliorare la polarizzazione di spin nucleare, vale a dire, lo squilibrio tra 'up' e 'down' popolazioni di spin (P = [N _↑ – _↓ N] / [N + N _{↑ ↓]),} è stato introdotto nel 1950. Spin nucleari come ¹³ C possono essere polarizzati fino a P = 10 ^-1 in condizioni favorevoli, tipicamente ad una temperatura dell'ordine di 1 K e in un campo magnetico di 3.357 T. ^3,4 Una svolta per applicazioni biologiche venuto nel primi del 2000 con lo sviluppo di scioglimento DNP che consiste nello sciogliere campioni polarizzati congelati in acqua surriscaldata pur mantenendo il livello di polarizzazione nucleare ottenuto a bassa temperatura. ⁵ il segnale NMR allo stato liquido è aumentata di un fattore 10 ³ -10 ⁴ rispetto ai Comunetermicamente polarizzato condizioni RT NMR. Dissoluzione DNP fornisce quindi un modo per misurare biochimico velocità di reazione non invasivo in situ in tempo reale, consentendo dinamiche monitoraggio di NMR con una risoluzione temporale di 1 sec o inferiore ^{6 -. 10} 'diventato possibile rilevare analiti in concentrazioni molto basse ^11.

Tra i non invasivi modalità di imaging molecolare, hyperpolarized NMR è l'unica tecnica che permette contemporaneamente misurare un substrato e dei suoi metaboliti in tempo reale. Dissoluzione DNP è stato ricevuto con entusiasmo in vari settori scientifici vanno da in vitro NMR per MRI clinica ^{12 e} le applicazioni più promettenti sono legati al monitoraggio in situ del metabolismo. ^13,14 Il principale limite di scioglimento DNP è che, dopo un tempo sulla dell'ordine di cinque volte il tempo di rilassamento longitudinale costante T _1, la migliorata polarezazione è perduto. È quindi necessario utilizzare molecole portanti spin nucleari espongono relativamente lungo T _1. Per estendere il lasso di tempo della valorizzazione di polarizzazione, lentamente-relax stati di spin nucleari, noti come stati longevi (LLS), può essere ^usato 15 ^{-. 17} LLS sono insensibili al intra-coppia di interazione dipolo-dipolo, quindi la loro tempo di rilassamento caratteristica costante, T _LLS, può essere molto più lungo di T _1. ¹⁸ Una vita di magnetizzazione di decine di minuti e fino a 1 ora potrebbe quindi essere ottenuto, ^19,20 e LLS sono stati proposti sia per spettroscopia di risonanza magnetica (MRS) e la risonanza magnetica. ²¹

I punti principali che devono essere attentamente ottimizzata per studiare tassi reazione enzimatica hyperpolarized NMR sono: (i) massimizzare la polarizzazione allo stato solido e (ii) ridurre al minimo la perdita di polarizzazione durante il trasferimento della soluzione iperpolarizzato dalpolarizzatore allo spettrometro NMR. Questo articolo descrive l'adattamento di un sistema di apparecchi e di iniezione DNP dissoluzione su misura per studiare le reazioni enzimatiche. Le caratteristiche e le prestazioni della messa a punto saranno dimostrate con il ben noto e diffuso substrato hyperpolarized [1- ¹³ C] piruvato. I motivi principali di questa scelta sono, in primo luogo, la sua naturale lungo ¹³ C tempo di rilassamento longitudinale (T _1> 50 sec a campi magnetici elevati e temperature superiori a 293 K) che permette le reazioni di monitoraggio durante alcuni minuti, e, dall'altro, il suo ruolo centrale nel cancro metabolismo. ^13,14 Utilizzando dissoluzione DNP NMR e di un sistema di iniezione personalizzato sviluppato, l'ossidazione del piruvato catalizzata dalla lattato deidrogenasi (LDH) può essere monitorato in presenza di un pool iniziale di lattato non marcato ^9,22 o senza lattato non marcato aggiunto , come mostrato qui. E 'stato dimostrato che il segnale lattato [1- ¹³ C] misurato in vivo (anche in cellule) dopo l'iniezione di iperpolarizzato [1- ¹³ C] piruvato è principalmente dovuta ad uno scambio un'etichetta veloce tra piruvato e lattato piuttosto che la produzione di lattato. ⁶

Presentiamo qui la produzione in tempo reale [1- ¹³ C] lattato dal piruvato iperpolarizzato [1- ¹³ C] iniettato in un tubo NMR contenente LDH ma inizialmente non lattato.

Descrizione del sistema
Ci sono due parti principali in una configurazione di dissoluzione DNP (Figura 1): il polarizzatore DNP e spettrometro NMR. L'elemento principale del polarizzatore DNP è un criostato al raffreddamento del campione a circa 1 K in un bagno di elio pompato. Il criostato è inserito in un superconduttore magnete 3,35 T e presenta una geometria che garantisce di avere il campione polarizzante all'isocentro del magnete (Figura 1). All'interno del criostato, il campione (a) è circondato da una bobina NMR (b), per misurare la polarizzazione buildup, contenuta in una cavità a microonde overmoded (c). L'intero campione viene mantenuto a bassa temperatura in un bagno di elio pompato (d) e irradiato con microonde attraverso la guida d'onda. L'intero sistema è gestito da un software su misura (Figura 2D).

L'hardware e le attrezzature criogeniche necessari per eseguire DNP ed il successivo scioglimento sono ancora una sfida tecnologica. Un nuovo DNP criostato ^23,24 è stato sviluppato e testato per determinare le sue prestazioni criogenici e poi ottimizzata per un veloce raffreddamento, l'elio hold-tempo e il consumo globale di elio minimo durante il funzionamento.

Il criostato è costituito da due parti. La prima parte del criostato è dewar isolamento (Figura 2A) che possono essere grossolanamente diviso in parte superiore (a) la coda, o lo spazio campione (b), e la camera a vuoto esterna (OVC) tenuti sotto alto vuoto e l'alloggiamento della schermi di radiazione (c). La seconda parte del criostato è il principalesert (Figura 2B), inserito nel dewar isolante, in cui sono gestite tutte le normative di flusso. L'elio liquido proveniente dal dewar memorizzazione esterno attraverso la linea di trasferimento (a), è nella prima fase condensata nel separatore (b), una camera intermedia usato sia per tenere la parte superiore del freddo criostato e rimuovere l'elio evaporato durante il trasferimento. La pressione del separatore viene abbassato di pompaggio attraverso un capillare (c) avvolto intorno alla parte superiore del criostato; il flusso di elio freddo in questo capillare viene utilizzata per raffreddare i setti (d) e gli schermi di radiazione del dewar isolamento (OVC). Il campione è posto e polarizzata nello spazio campione. Lo spazio campione è collegato al separatore attraverso un altro capillare (e), avvolto intorno alla coda dell'inserto criostato principale. Questo capillare può essere aperto o chiuso tramite una valvola a spillo azionato manualmente dall'esterno.

Per ottenere la bassa temperatura usato per il pr DNPocess, l'elio liquido devono essere raccolti nello spazio campione criostato e la sua pressione abbassata alla gamma mbar. Le operazioni necessarie per il funzionamento criostato vengono eseguite tramite un sistema di pompaggio piuttosto complesso, con tre serie di pompe, monitorati e gestiti in diversi punti con strumenti elettronici e elettromeccanici (Figura 2C). Il criostato OVC deve essere pompata ad alto vuoto dal primo sistema di pompaggio. Questo sistema è composto da una pompa turbomolecolare sostenuto da una pompa rotativa (a). L'elio liquido viene trasferito dal dewar di stoccaggio (b) attraverso la linea di ingresso trasferimento criostato al separatore criostato. Il separatore ha una uscita collegata alla seconda serie di pompaggio. Questo insieme è composto da una pompa a membrana / hr 35 m ³ (c). Questa linea permette di rimuovere il gas elio bollito durante il trasferimento dal dewar e durante il raffreddamento separatore. L'elio liquido raccolto nel separatore può essere trasferita allo spazio campione attraverso il tappotubi Illary descritti sopra. Per trasferire elio liquido dal separatore allo spazio campione e successivamente abbassare la pressione spazio campione a mbar gamma, un terzo sistema di pompaggio composto da 250 m ³ / hr Roots pompa sostenuto da una / hr pompa rotativa 65 m ³ (d) è collegato al criostato attraverso una valvola a farfalla manuale (e).

Tutte le operazioni del sistema a vuoto sono controllati e regolati da un dispositivo elettropneumatico misura (f). Tale dispositivo controlla connessioni di linea di vuoto tra il separatore criostato (g) e lo spazio campione (h) punti, il secondo sistemi di pompaggio / terzi (c, d), una bottiglia di elio compresso (i) e l'esterno. La comunicazione tra (f) e l'esterno passa attraverso una valvola unidirezionale (j). Il dispositivo elettro-pneumatico (f) nonché tutti i parametri di sistema e l'hardware di dissoluzione sono controllati ed azionati da un dispositivo elettronico USB interfacciato misura con un comune PC. Infine tutto il sistema, attraverso l'elettronicadispositivo, è gestito da un software standalone su misura (Figura 2D) in cui le operazioni rilevanti vengono lanciate attraverso un'interfaccia utilizzando i tasti software.

Per gestire il campione e misurare NMR segnale accumulo allo stato solido sono utilizzati una serie di inserti (Figura 3A). Per preparare il criostato per la polarizzazione, posizionare l'inserto campione principale (a), nel criostato. L'inserto campione principale è provvisto di una bobina NMR (b) collocato all'interno di una cavità a microonde dorato overmoded. Pre-freeze substrato contenente soluzione da polarizzato (soluzione polarizzante) alla temperatura dell'azoto liquido in un contenitore idoneo campione e collocarlo nella parte inferiore fine del portacampioni vetroresina (c). Far scorrere il supporto del campione nella inserto campione principale per raggiungere la isocentro magnete. Inserire la guida d'onda placcato in oro (d) nel supporto del campione. La guida d'onda permette microonde generato da una sorgente di microonde esterna viaggiare con perdite minime to il campione.

Il software su misura per la gestione del criostato gestisce automaticamente, dopo aver fatto clic sul pulsante corrispondente interfaccia, diverse operazioni come cooldown (la temperatura criostato si abbassa vicino alla temperatura dell'elio liquido), riempiendo (criostato è riempito con elio liquido ad un livello predeterminato ), un ulteriore passaggio di raffreddamento a T ≈ 1 K (bagno di elio liquido viene pompato per raggiungere la temperatura più bassa possibile), pressurizzazione (criostato è pressurizzato pressione leggermente superiore camera al P = 10-30 mbar per consentire l'apertura criostato senza rischi di contaminazione del criostato aereo) e dissoluzione (procedura automatica per sciogliere il campione DNP e trasferire la soluzione risultante iperpolarizzato al sito di misura, cioè, lo spettrometro NMR).

La polarizzazione viene eseguito irradiando il campione con microonde a 94 GHz (in un campo di polarizzazione B ₀ </sub> = 3.35 T). Un campione è considerato completamente polarizzato dopo 3 T _DNP, dove T _DNP è il tempo di polarizzazione accumulo. T _DNP è dello stesso ordine di grandezza del tempo di rilassamento longitudinale dei nuclei bersaglio a stato solido al campo data e temperatura. In tutti gli esperimenti il campione è stato polarizzato per più di 5 T _DNP.

Alla fine del tempo di polarizzazione, il campione deve essere sciolto in una soluzione RT per essere utilizzato per la misurazione dell'attività enzimatica. Durante il processo di dissoluzione, 5 ml di surriscaldato D ₂ O dalla caldaia dell'inserto di dissoluzione (Figura 3B) sono spinte da gas elio compresso (P = 6-8 bar) per raggiungere il campione DNP-enhanced e farla sciogliere. La soluzione hyperpolarized risultante viene inserito l'inserto di dissoluzione del gas elio compresso attraverso l'uscita inserto di dissoluzione (Figura 3C-b </sTrong>), un diametro interno del tubo di trasferimento Teflon 2 mm. Il tempo necessario per il processo di dissoluzione è di 300 msec. ^{23 Il} tempo necessario per il trasferimento del campione dal polarizzatore DNP al sito spettrometro NMR è di circa 3 sec.

Il processo di dissoluzione viene effettuata usando un inserto di dissoluzione (Figura 3B). L'inserto di dissoluzione è composto da un componente elettronico-pneumatico (a), un bastone in fibra di carbonio (b) contenente tubi di collegamento tra caldaia nel gruppo pneumatico e l'armadietto contenitore del campione (c), che consente l'accoppiamento a tenuta con il campione contenitore e indietro alla presa. Il gruppo elettro-pneumatico (Figura 3C) è utilizzato per produrre e guidare surriscaldato D _{2 O} attraverso il bastone fibra di carbonio per il contenitore del campione e poi estrarre la soluzione iperpolarizzato dal criostato. Il gruppo elettro-pneumatico è composto di valvole pneumatiche (a) che controllano i collegamenti tra il coelio mpressed (P = 6-8 bar) linea (b), la caldaia (c) se il D ₂ O viene iniettato attraverso la valvola (d), e l'uscita (e) attraverso il bastone in fibra di carbonio (f). Il sistema è completato da un G pressione, un termometro e un filo resistivo riscaldamento in caldaia (c), un trigger (h) e una scatola di connessione (i) usato per interfacciare il sistema con il dispositivo di gestione elettronica.

Il criostato DNP e lo spettrometro NMR sono collegati da una linea di trasferimento, cioè, un tubo in PTFE di 2 mm di diametro interno all'interno del quale la soluzione iperpolarizzato viene spinto a elio in pressione (P = 6-8 bar) quando la dissoluzione viene attivata.

La sequenza di dissoluzione è composto dai seguenti operazioni: nei primi 300 msec, surriscaldato D ₂ O viene spinto al contenitore del campione per sciogliere e dissolvere la soluzione congelata iperpolarizzato. Successivamente, la soluzione iperpolarizzato viene estratta dal criostato per mezzo di prespressurizzate (P = 6-8 bar) gas elio e spinto attraverso il tubo in PTFE di diametro interno di 2 mm (Figura 3C-e) al sito di misura in cui l'iniezione viene eseguita con una delle procedure descritte nella Fase 6.2.1 o Passo 6.2 .2.

Il secondo componente della dissoluzione configurazione DNP NMR è spettrometro NMR. Nella configurazione descritta, lo spettrometro NMR opera ad un campo B ₀ = 11.7 Tesla. Una sonda NMR 5 millimetri è utilizzato per misurare il segnale iperpolarizzato dopo la dissoluzione. Lo spettrometro NMR è gestito tramite la console NMR, utilizzati sia per a stato solido e allo stato liquido misure NMR, ed il software XWinNMR ditta fornito. Una misura tipica è composta da un impulso rigido basso flip angle (sia tarato, per liquidstate o non calibrata, per misure a stato solido) seguita da acquisizioni del segnale.

Le misurazioni del segnale di polarizzazione termica allo stato solido e si DNP-derivatosegnal accumulo vengono eseguite usando la bobina misura ¹³ C al sito del polarizzatore DNP (Figura 3ab) accoppiato allo spettrometro NMR. In questa particolare situazione lo spettrometro NMR non effettua il bloccaggio del segnale. Quando le misurazioni a stato solido sono svolte, al fine di evitare perturbazioni significative alla polarizzazione, l'intervallo di tempo tra le acquisizioni dovrebbe essere abbastanza lungo, circa più di 0,5 T _DNP.

L'enhancement a stato solido è definito come dove è il segnale iperpolarizzato (ottenuto nel passaggio 3.3) e è il segnale a stato solido (ottenuto in equilibrio termico alla temperatura dell'elio liquido pompato nel passo 3.2) (Figura 4A). Questo parametro Defines la polarizzazione massima disponibile per esperimenti NMR, prima inevitabili perdite durante il trasferimento della soluzione iperpolarizzato. La misura viene eseguita con una semplice sequenza di impulsi-acquisiscono utilizzando un basso medaglia impulso angolo non calibrato. calibrazione Pulse è comunemente saltato per le misurazioni stato solido.

Una procedura analoga può essere utilizzata per determinare il potenziamento del segnale iperpolarizzato nello stato liquido. In questo caso, il campione posto nel tubo spettrometrico prima dell'iniezione (passo 6.2) è composto da 500 ml di D ₂ O. Dopo la dissoluzione e iniezione, ci sono due parametri importanti da monitorare. Il primo è il miglioramento iperpolarizzato nel sito spettrometro NMR, (Figura 4B), dove è il segnale subito dopo l'iniezione del iper soluzione polarizzata (ottenuta nel passo 7.1) e è il segnale di polarizzazione termica (ottenuto nel passo 7.2). Il secondo è il tempo di rilassamento longitudinale, T ₁ (Figura 4B, riquadro), associato con il substrato ed ogni prodotto metabolico (ottenuto da segnali esponenziali montaggio ottenuti nel passo 7.1). Questi due parametri definiscono la concentrazione minima del substrato necessaria per ottenere un rapporto sufficiente segnale-rumore (SNR) e la finestra di tempo disponibile per la misura delle trasformazioni metaboliche. Il rapporto tra la polarizzazione a stato solido e polarizzazione liquidstate dà una stima delle perdite dovute alla polarizzazione relax durante il trasferimento soluzione iperpolarizzato. Un valoreation12 "src =" / files / ftp_upload / 53548 / 53548equation12.jpg "width =" 80 "/> dovrebbe essere osservata in assenza di perdite di rilassamento.