Summary

In Utero van intracardiale Tomaat-lectine Injecties op muis embryo's in te schatten nierdoorbloeding

Published: February 04, 2015
doi:

Summary

This manuscript describes a technique for visualization of the developing vasculature. Here we utilized in utero intra-cardiac FITC-labeled tomato lectin microinjections on mouse embryos. Using this technique, we delineate the perfused and unperfused vessels throughout the embryonic kidney.

Abstract

De vorming en perfusie van het ontwikkelen van renale bloedvaten (afgezien van glomeruli) zijn sterk weinig bestudeerd. Zoals vasculatuur ontwikkelt via angiogenese (het aftakken van grote bloedvaten) en vasculogenese (de novo bloedvatvorming), perfusie mapping technieken zoals hars worpen in vivo echografie en micro-dissectie zijn in het aantonen van de intieme relaties tussen beperkt deze twee processen en ontwikkeling renale structuren in het embryo. Hier beschrijven we de procedure in utero intra-cardiale ultrageluid geleide FITC-gelabelde tomatenlectine micro-injecties van muizenembryo's op de ontogenie van renale perfusie meten. Tomatenlectine (TL) geperfundeerd hele embryo en nieren geoogst. Weefsels werden co-gekleurd voor diverse nier structuren, waaronder: nefron voorouders, nefron structuren, ureteric epitheel, en vaatstelsel. Vanaf E13.5 groot kaliber schepen werden perfusie echter perifereschepen bleef unperfused. Door E15.5 en E17.5, kleine perifere vaten alsmede glomeruli begon te worden doorbloed. Deze experimentele techniek is essentieel voor het bestuderen van de rol van de vasculatuur en de bloedstroom tijdens de embryonale ontwikkeling.

Introduction

Tijdens de embryonale ontwikkeling twee afzonderlijke, maar tegelijkertijd, vasculaire processen plaats: angiogenese, het proces waarbij een vat groeit uit een grote bestaande vat en vasculogenese, een de novo vorming van vaten uit residentiële endotheliale voorlopercellen 1,2. Respectievelijk de vroegere synoniem bloedstroom, terwijl de laatste wordt gedacht grotendeels plaatsvinden in de afwezigheid ervan.

Gelijktijdig met de vorming van bloedvaten, begint een cyclisch en dynamisch proces nier voorlopercellen synthese, proliferatie en differentiatie te ontvouwen op embryonale dag 9,5 (E9.5). Op dit punt de ureterknop (UB) binnendringt dorsaal in omliggende metanefrische mesenchym (MM), en gaat door tot aan de geboorte 3. Herhaalde vertakking van de UB in snel condenseren metanefros kap mesenchym begint de vorming van de functionele eenheden van de nier, het nefron. Bij elke nieuwe generatie van de UB en Nephron, zijn oudere generaties verplaatst naar innerlijke corticale en medullaire regio's, waar ze vervolgens ondergaan verdere rijping en differentiatie binnen voornamelijk vasculaire-dichte omgevingen. Zoals blijkt uit Dressler et al. 3 wordt dit embryologische proces neergeslagen door inductieve signalering, zoals overspraak tussen UB en MM en een groot aantal extracellulaire factoren 3-6. Twee recent onderzocht extracellulaire factoren binnen de zich ontwikkelende alvleesklier en nieren bevatten zuurstofspanning en de bloedstroom 7,8. Dit laatste zal nader worden besproken hieronder opzichte nierontwikkeling.

Om de inductieve rol die bloedstroom mogelijk speelt in nefron voorlopercellen differentiatie, en in andere processen organogenese, precieze en accurate werkwijzen embryonale bloedstroom mapping bloot is noodzakelijk.

Alternatieve methoden voor het meten van de bloedstroom omvatten het voorschrijven van ultrasound beeldvorming en hars werpt 9,10. Overtuigend, zijn deze modi is aangetoond dat inherent ontbreken in hun vermogen om gelijktijdig te onthullen temporele en ruimtelijke tegenstellingen tussen de bloedstroom en stamcel differentiatie. Hars afgietsels, bijvoorbeeld een geldig model van het schip patroonvorming binnen volwassen weefsels, maar in onvolwassen schepen, zoals met embryonale tijdstippen, schepen zijn schromelijk onderontwikkeld en lekkende. Daarom hars werpt niet aan te houden binnen de kleine, vaak poreus, schepen.

Voor deze schijnbare hindernissen, onder anderen, hebben we gekozen om echogeleide in vivo intra-cardiale embryonale tomatenlectine (TL) micro-injecties in ons onderzoek van de ontwikkeling van de nieren te nemen. In deze procedure maken we gebruik van een ultrasone sonde om synchroon te begeleiden een gemonteerde micropipet naald gevuld met 2,5 ul van TL-oplossing in de linker ventrikel van de muis embryo's in E11.5, E13.5, E15.5 en E17.5 tijdstippen. E170,5 is de nieuwste ontwikkelingsleeftijd als de naalden zijn niet sterk genoeg om de meer ontwikkelde embryo doordringen.

De voordelen van deze micro-injectie werkwijze zijn overvloedig. Ultrageluid geleide microinjectie nauwkeurige plaatsing van een injectienaald in het embryonale linker ventrikel, passieve en gecontroleerde verwijdering van oplossing in het kloppende hart van het dier, minimale schade aan hart en omliggende weefsels, en het voorkomen van plotselinge hartfalen en dood van de embryo voorafgaand aan full-body perfusie. Bij het gebruik van een FITC-gelabelde TL zullen eventuele geperfundeerd vaatstelsel de marker langs de endotheliale apicale membraan behouden. In combinatie met immunohistochemie, gebruik PECAM (CD31, bloedplaatjes endotheelcel adhesie molecuul) en diverse andere vasculaire markers, kunnen we duidelijk onderscheid tussen geperfundeerde en niet-geperfundeerde schepen, alsmede karakteriseren elke afwijkende kleuring van omringende weefsels.

Protocol

OPMERKING: De Universiteit van Pittsburgh Institutional Animal Care en gebruik Comite alle experimenten. 1. Voorbereiding van Ultrasound-micro-injectie Instrumenten en embryo's Het opzetten van het podium, mount, en sonde (figuur 1), evenals chirurgische instrumenten (figuur 2). Plaats fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS) oplossing (pH 7,4) in een 37 ° C verwarmen bad. Vul micro-injectie naald volledig met minerale olie, met behulp van 1 ml spuit bevestigd aan …

Representative Results

Vasculaire vorming vooraf stroming in ontwikkeling nier Een meerderheid van embryonaal weefsel (zoals de nier) een dichte vasculatuur (zowel unperfused en geperfuseerd), zelfs in vroege embryonale tijdstippen. Om beter in te schatten en te analyseren bloedstroom binnen de zich ontwikkelende nier we gebruik gemaakt van een methode in de baarmoeder embryonale intracardiale micro-injecties. Met gebruik van een hoge-resolutie echo om het embryonale hart identificeren E11.5 door E17.5 en na de ex…

Discussion

Micro-injectie anesthesie en tijdsbestek

Wat betreft verdoving van de moeder, is het essentieel om een ​​constante luchtstroom (2-3 l / min) en bij lage PSI te houden. De stroom van de sedatieve moet worden gehouden op ongeveer 1,75-2 l / min. Tegelijkertijd moeten termijnen waarin de injecties plaatsvinden nauwlettend worden gevolgd en gecontroleerd voor met elk nest. Voor elk nest de injectie procedure van 45 minuten moeten worden gehouden. Het belang van deze termijn is van cruciaal b…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank Dr. George Gittes for advice and expertise throughout this study. SSL was supported by an American Heart Association fellowship (11POST7330002). Further to this SSL and this study was supported by an NIDDK Mentored Research Scientist Development Award (DK096996) and by the Children’s Hospital of Pittsburgh.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
DAPI Sigma Aldrich 022M4004V concentration 1:5000
Pecam BD Biosciences 553370 concentration 1:100
FITC-Tomato Lectin Vector Laboratories FL-1321 concentration 2.5µL / embryo
Alexa Fluor-594 (Donkey Anti-Rat ) Jackson Immunoresearch 712-585-150 concentration 1:200
Microinjection Needle Origio Mid Atlantic Devices C060609
Mineral Oil Fisher Scientific BP26291
mL syringe Fisher Scientific 03-377-20
 Clay Blocks Fisher Scientific HR4-326
Surgical Tape Fisher Scientific 18-999-380
PBS Fisher Scientific NC9763655
Hair Removal Product Fisher Scientific NC0132811
Surgical Scissors Fine Science tools 14084-08
Fine Forceps Fine Science tools 11064-07
 Surgical Marking Pen Fine Science tools 18000-30
 Right angle forceps (for hysterectomy) Fine Science tools 11151-10

References

  1. Abrahamson, D. R., Robert, B., Hyink, D. P., St John, P. L., Daniel, O. P. Origins and formation of microvasculature in the developing kidney. Kidney international. Supplement. 67, S7-S11 (1998).
  2. Sims-Lucas, S., et al. Endothelial Progenitors Exist within the Kidney and Lung Mesenchyme. PloS one. 8 (6), e65993 (2013).
  3. Dressler, G. R. Advances in early kidney specification, development and patterning. Development. 136 (23), 3863-3874 (2009).
  4. Costantini, F. Genetic controls and cellular behaviors in branching morphogenesis of the renal collecting system. Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 1 (5), 693-713 (2012).
  5. Costantini, F., Kopan , R. Patterning a complex organ: branching morphogenesis and nephron segmentation in kidney development. Dev Cell. 18 (5), 698-712 (2010).
  6. Das, A., et al. Stromal-epithelial crosstalk regulates kidney progenitor cell differentiation. Nat Cell Biol. 15 (9), 1035-1044 (2013).
  7. Rymer, C., et al. Renal blood flow and oxygenation drive nephron progenitor differentiation. Am J Physiol Renal Physiol. , (2014).
  8. Shah, S. R., et al. Embryonic mouse blood flow and oxygen correlate with early pancreatic differentiation. Developmental biology. 349 (2), 342-349 (2011).
  9. Andres, A. C., et al. EphB4 receptor tyrosine kinase transgenic mice develop glomerulopathies reminiscent of aglomerular vascular shunts. Mech Dev. 120 (4), 511-516 (2003).
  10. Wagner, R., et al. High-resolution imaging of kidney vascular corrosion casts with Nano-CT. Microsc Microanal. 17 (2), 215-219 (2011).

Play Video

Cite This Article
Rymer, C. C., Sims-Lucas, S. In Utero Intra-cardiac Tomato-lectin Injections on Mouse Embryos to Gauge Renal Blood Flow. J. Vis. Exp. (96), e52398, doi:10.3791/52398 (2015).

View Video