El análisis in vitro de la respuesta inmune celular Myd88 mediada por el Virus del Nilo Occidental cepa mutante Infección

Virus del Nilo Occidental (VNO), una neurotrópico, plus-detectados flavivirus, es una amenaza emergente para la salud pública. Actualmente, no hay vacunas han sido aprobados para uso humano ^1. Una cepa atenuada de virus del Nilo Occidental, que tiene una sustitución en el P38G no estructural (NS) proteína 4B, se sabe que inducen no letalidad en ratones, pero citoquinas innatas superior y respuestas de células T en ratones de tipo salvaje que WNV NY99 cepa ^2. Los ratones inmunizados con el mutante NS4B-P38G fueron protegidos de un desafío secundario con letal de tipo salvaje WNV. Esto sugiere que el mutante NS4B-P38G tiene características adecuadas para un candidato a vacuna ideal. Los mecanismos por los que el mutante NS4B-P38G induce una alta inmunidad adaptativa protectora aún no se conocen del todo. Los receptores tipo Toll (TLRs), que reconocen patrones moleculares asociados a patógenos, juegan un papel esencial en la iniciación de la inmunidad innata a la infección viral. La vía de señalización TLR núcleo utiliza respuesta primaria de diferenciación mieloide gene 88 (MyD88) como adaptador principal ^3,4. En un estudio reciente, la señalización de MyD88 ha demostrado desempeñar un papel importante en el desarrollo de la inmunidad mediada por células durante la infección por WNV NS4B- P38G mutante en ratones ^5. Células dendríticas (DC) son una de las células presentadoras de antígenos más importantes que presentan la capacidad única de iniciar respuestas de células T durante la infección viral primaria ^6,7. Las células T CD4 ⁺ y CD8 ⁺ tanto contribuyen a la inmunidad protectora de larga duración y son importantes para la supervivencia de host seguido de tipo salvaje infección por el VNO ^8,9. Dos ensayos inmunológicos se utilizaron en este estudio para evaluar las funciones de estas células en el mutante ratones infectados NS4B-P38G.

En primer lugar, un ensayo de cebado de células T in vitro se utilizó para comparar la capacidad presentadora de antígeno de las DC de WNV-infectados de tipo salvaje y MyD88 ^{– / –} ratones. Para aumentar la sensibilidad del ensayo, ingenuo CD4 <sup> + células T se aislaron de otii ratones transgénicos, que expresan una específica Vα2 / Vβ5 TCR para el péptido ovoalbúmina de pollo (OVA) 323 – 339. DCs de los ratones infectados de WNV se purificaron, y co-cultivadas con carboxifluoresceína succinimidil Pascua (CFSE ) las células T CD4 ⁺ -etiquetados en presencia de péptido OVA. Después de 5 días de co-cultivo, las células se recogieron y se fijaron con paraformaldehído (PFA) y se analizaron por citometría de flujo. Los ensayos de proliferación se han realizado tradicionalmente a través de la incorporación de 5-bromo-2'-desoxiuridina (BrdU) o desoxirribósido timina tritiada ^{(3HTdR) 10.} Sin embargo, estos ensayos son o radiactivo y / o en la necesidad de equipos especiales en el nivel de bioseguridad (BL) 3 instalaciones, donde se llevan a cabo estudios de WNV. El análisis de citometría de flujo de la proliferación de linfocitos por reducción a la mitad de serie de la intensidad de fluorescencia del colorante vital CFSE se ha vuelto más comúnmente utilizado en ensayos inmunológicos como el colorante es más establey uniformemente incorporados en las células, fácilmente detectado por citometría de flujo, y es no radiactivo ^11. El ensayo también tiene la capacidad de evaluar el número de divisiones celulares. Una ventaja importante de usar este ensayo en los estudios de virus del Nilo Occidental es que la fijación de las células infectadas con 1-2% PFA podría inactivar WNV ^12, lo que permitirá la adquisición de muestras con un citómetro de flujo en un laboratorio BL2.

A continuación, se utilizó un procedimiento de tinción intracelular de citoquinas modificado (ICS) para estudiar el papel de MyD88 de señalización en la regulación de las respuestas de células T específicas de VNO en ratones mutantes infectados NS4B-P38G. En este ensayo, los esplenocitos aislados de ratones infectados fueron tratados in vitro con péptidos específicos del WNV. Brefeldina A se añadió a retener las citoquinas dentro de la célula. Después de 5 horas de incubación, las células se recogieron, se lavaron y se tiñeron para subconjuntos de células T. Las células fueron fijadas en PFA, permeabilizaron y se tiñeron para el interferón (IFN) -γ y se analizaron por citometría de flujo.Como con otro ensayo basado en citometría de flujo, una vez que las células se tratan con la fijación y permeabilización de amortiguación que contiene PFA, muestras infectadas pueden ser transferidos a un laboratorio BL2 para su posterior procesamiento y análisis. En varios estudios publicados, hemos utilizado ICS para medir las funciones efectoras de células T en ratones infectados con el VNO ^13,14. Aunque está bien establecido, una desventaja importante de este ensayo es que el procedimiento es muy largo y podría ser más tiempo cuando se realiza dentro de las instalaciones BL3. Aquí, un método basado en ICS tubo de microcentrífuga se demostró que era más factible, más fácil de proceder y consume menos tiempo cuando se realiza dentro de un laboratorio BL3.