Summary

Горячая биологического катализа: изотермический титрования калориметрия для характеристики ферментативных реакций

Published: April 04, 2014
doi:

Summary

Изотермический титрования калориметрии меры теплового потока освобождены или поглощается в химических реакциях. Этот метод может быть использован для количественного фермента-катализа. В данной работе, протокол для инструментальной установки, эксперимент работает, и анализ данных, как правило, описывается, и применяется для характеризации ферментативного гидролиза мочевины Джеком бобов уреазы.

Abstract

Изотермический титрования калориметрии (МТЦ) является хорошо описано техника, которая измеряет количество тепла, выделяемое или поглощается в ходе химической реакции, используя его в качестве неотъемлемого зонда охарактеризовать практически каждый химический процесс. В настоящее время, этот метод широко применяется для определения термодинамических параметров биомолекулярных обязательных равновесий. Кроме того, ИТЦ была продемонстрирована, чтобы иметь возможность прямого измерения кинетики и термодинамических параметров кошачьи, К M, ΔH) ферментативных реакций, хотя это приложение еще ​​недоиспользуются. Как изменения тепла спонтанно произойти во время ферментативного катализа, ITC не требует модификации или маркировки системы при анализе и может быть выполнена в растворе. Кроме того, способ не требует значительного количества материала. Эти свойства делают ИТЦ бесценным, мощный и уникальный инструмент для изучения ферментов кинетики в нескольких приложениях, таких как, например, лекарственных препаратов.

<p cдевушка = "jove_content"> В этой работе экспериментальный ИТЦ основе метода для количественного кинетика и термодинамика ферментативных реакций тщательно описаны. Этот метод применяется для определения K кошку и К М ферментативного гидролиза мочевины по Canavalia ensiformis (разъем фасоль) уреазы. Расчет собственной молярной энтальпии (H) десятичного реакции выполняется. Полученные таким образом значения согласуются с предыдущими данными, описанными в литературе, демонстрируя надежность методологии.

Introduction

Количественное определение биохимических реакций дает представление о биологических процессах на основе жизни. Калориметрия предлагает методологию без наклеек, чтобы количественно охарактеризовать практически все химические реакции в растворе. Этот метод измеряет тепло, выделяющееся или поглощаются с течением времени, и, следовательно, универсальная система обнаружения и очень удобным методика для определения количества реагирующих молекул (например, связывающие термодинамики), а также для измерения скорости реакции (т.е. кинетику). В частности, изотермический титрования калориметрии (МТЦ) был принят в качестве метода выбора для характеристики термодинамики биомолекулярных равновесий с участием белка-лиганда, белок-белковых, ионы белково-металлические и взаимодействия белок-ДНК 1-6. Кроме того, способность ЦМТ обеспечить кинетическую информации делает его очень мощная система для измерения ферментативного катализа, хотя потенциал этого приложения является ещенедооценивать 7-9.

Уравнение Михаэлиса-Ментен 10 является количественное описание ферментативных реакций, так как она обеспечивает связь между скоростью реакции и концентрации субстрата, в зависимости от двух кинетических параметров: постоянных Михаэлис М) и постоянных каталитического ставка кот) . К кот / отношение К М называется в качестве каталитического эффективности фермента. На практике определение K M и к кот для специфической реакции обеспечивает полное описание катализа.

В типичной ферментативной реакции (рис. 1), субстратом (S) взаимодействует с ферментом (Е), образующего фермент-субстрат (ES) комплекс, который впоследствии активированного в переходном состоянии (ES *). Последний превращают в продукт с ферментом (EP) комплекса, который в конечном счете диссоциирует. Это шагс описываются следующей реакции.

(1)

где к 1 является константа скорости образования комплекса ES, K -1 является константа скорости диссоциации комплекса ES, в то время как к кот каталитическая константа скорости или число оборотов.

В соответствии с уравнением Михаэлиса-Ментен 10, скорость реакции может быть вычислена как:

(2)

в котором K M = (K -1 + к кат) / K 1 и K кошка = V макс / [С], с V макс будучи максимальная скорость достигнута, когда все фермент связан с подложкой.

Изотермический калориметр титрования является прибор, используемый в этом исследовании, чтобы характеризовать ферментативный гидролиз мочевины. Этот инструмент сделан из адиабатического щита, содержащего два придуман формы клеток (рис. 1). Они соединены с внешней стороны узких трубках доступа. Образец клеток (приблизительно 1,4 мл) загружают раствора фермента, в то время как ссылка ячейки обычно заполнены водой или с растворителя, используемого для анализа. Вращающийся шприц с длинной иглой и с перемешиванием мешалкой прилагается, обычно содержащие ок. 0,3 мл раствора субстрата, установлен на ячейку для образца. Термоэлектрического устройства измеряет разницу температуры между образцом и опорной ячейки и, используя "сети обратной связи клеток", он поддерживает эту разницу в нуле путем сложения или вычитания тепло. В ходе эксперимента, подложка вводят в ферментном растворе при постоянной выбранной температуре. Когда анzymatic реакция происходит, количество тепла, выделяющегося или поглощается пропорциональна числу молекул подложки, которые преобразуются в молекулы продукта. Кроме того, скорость теплового потока напрямую связана со скоростью реакции. Измеренные данные, появляясь как отклонение теплового следа от первоначального базового уровня (рис. 1), представляют собой тепловую мощность (μcal / сек) поставляется векселю в кюветы, которая пропорциональна теплового потока, происходящего в кюветы с течением времени.

Рисунок 1
Рисунок 1. Схематическое представление изотермического титрования калориметра для изучения ферментативных реакций. Ферментативную реакцию происходит при титровании подложки (в шприц для инъекций) в ферментного раствора (в ячейку для образца) приводит к изменению термомал мощность, выделяемая калориметр, необходимой для поддержания разности температур между кюветы и постоянной ссылки на ячейку. Кликните здесь, чтобы посмотреть увеличенное изображение.

В целом, изменение тепла (Q) пропорциональна молярной энтальпии реакции (H) и числом молей продукта, генерируемого (п), который в свою очередь задается общего кратного объема концентрации:

(3)

Формирование продукт с течением времени (DP / дт), что соответствует скорости реакции, таким образом, может быть связана с количеством тепла, сгенерированного в течение того же времени (DQ / DT) через соотношением:

(4)

Согласно этому уравнению, для того, чтобы получить Михаэлиса-Ментен участок надо измерить I) общее молярное энтальпии ΔH, и б) тепловой поток DQ / дт при различных концентрациях субстрата. Как правило, это выполняется в двух различных экспериментах: в первом эксперименте (метод 1, M1), подложка вводят в ферментного раствора и теплота для полной конверсии субстрата измеряется; во втором эксперименте (метод 2, М2), неоднократно получавших инъекции подложки выполняются и скорость образования тепла измеряется в разных концентрациях субстрата. Эти два набора данных достаточно, чтобы получить кинетические параметры К М и к кошачьи.

В настоящей статье, общий протокол для определения кинетических параметров для ферментативных реакций, выполняемых с помощью ITC описывается. Мы применили этот метод для гидролиза мочевины на Canavalia ensiformis мочевинысебе, как система отсчета. Хорошее согласие между результатами, полученными с помощью этого метода и данных, представленных в литературе свидетельствует о надежности такого подхода.

Protocol

1. Подготовка Образцы Подготовка 2 мл раствора фермента и 0,5 мл раствора субстрата для каждого экспериментального пробега. Развести концентрированные растворы фермента и субстрата в буферных растворах, имеющих одинаковую композицию, чтобы минимизировать тепло разбавл?…

Representative Results

Уреаза (ЕС 3.5.1.5; мочевины amidohydrolase) является мультисубъединичный никельсодержащих фермент, обнаруженный в Archea, бактерий, одноклеточных эукариот и растений. Этот белок действует на последней стадии минерализации органического азота, катализирующие гидролиз мочевины до аммиака и карбам…

Discussion

Значение МТЦ изучить ферментативную активность по отношению к существующим методам

В дополнение к его классических приложений для изучения связывания равновесий, изотермического титрования калориметрии обеспечивает надежный и быстрый метод для характерис?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Другие удобрений Продукция компании (SFP) признается за предоставление средств, необходимых для этого исследования.

Materials

HEPES Sigma H3375 dissolving in water and adjusting pH with NaOH
TRIZMA-Base Sigma T1503 dissolving in water and adjusting pH with HCl
Sodium dihydrogen phosphate Riedel-de-Haen 4270 dissolving in water
Sodium phosphate dibasic Riedel-de-Haen 30427 dissolving in water
Urea Sigma U4128 dissolving in water at 40 °C
Canavalia ensiformis urease (type C-3) Sigma U0251 dissolving in 20 mM HEPES pH 7 and stored at -80 °C
VP-ITC on Origin 7.0 MicroCal (GE Healthcare) SYS13901 instrument 
VPViewer2000 1.30.00 on Origin 7.0 MicroCal (GE Healthcare) data acquisition software supplied with the instrument

References

  1. Leavitt, S., Freire, E. Direct measurement of protein binding energetics by isothermal titration calorimetry. Curr. Opin. Struct. Biol. 11, 560-566 (2001).
  2. Ladbury, J. E. Application of isothermal titration calorimetry in the biological sciences: things are heating up! BioTechniques. 37, 885-887 (2004).
  3. Zambelli, B., Bellucci, M., Danielli, A., Scarlato, V., Ciurli, S. The Ni2+ binding properties of Helicobacter pylori NikR. Chem. Commun. , 3649-3651 (2007).
  4. Zambelli, B., et al. High-affinity Ni2+ binding selectively promotes binding of Helicobacter pylori NikR to its target urease promoter. J. Mol. Biol. 383, 1129-1143 (2008).
  5. Duff, M. R., Grubbs, J., Howell, E. E. Isothermal titration calorimetry for measuring macromolecule-ligand affinity. J. Vis. Exp. , (2011).
  6. Ghai, R., Falconer, R. J., Collins, B. M. Applications of isothermal titration calorimetry in pure and applied research–survey of the literature from 2010. J. Mol. Recognit. 25, 32-52 (2012).
  7. Todd, M. J., Gomez, J. Enzyme kinetics determined using calorimetry: a general assay for enzyme activity. Anal. Biochem. 296, 179-187 (2001).
  8. Bianconi, M. L. Calorimetry of enzyme-catalyzed reactions. Biophys. Chem. 126, 59-64 (2007).
  9. Demarse, N. A., Killian, M. C., Hansen, L. D., Quinn, C. F. Determining enzyme kinetics via isothermal titration calorimetry. Methods Mol. Biol. 978, 21-30 (2013).
  10. Michaelis, L., Menten, M. Die kinetik der invertinwirkung. Biochem. Z. 49, 333-369 (1913).
  11. Walker, J., Wilson, K., Walker, J. . Principle and techniques of practical biochemistry. , 312-356 (2000).
  12. Ciurli, S., Sigel, A., Sigel, H., Sigel, R. K. O. . Nickel and its surprising impact in nature. 2, 241-278 (2007).
  13. Zambelli, B., Musiani, F., Benini, S., Ciurli, S. Chemistry of Ni2+ in urease: sensing, trafficking, and catalysis. Acc. Chem. Res. 44, 520-530 (2011).
  14. Zonia, L. E., Stebbins, N. E., Polacco, J. C. Essential role of urease in germination of nitrogen-limited Arabidopsis thaliana seeds. Plant Physiol. 107, 1097-1103 (1995).
  15. Follmer, C. Insights into the role and structure of plant ureases. Phytochemistry. 69, 18-28 (2008).
  16. Sumner, J. B. The isolation and crystallization of the enzyme urease. J. Biol. Chem. 69, 435-441 (1926).
  17. Krajewska, B. Ureases I. Functional, catalytic and kinetic properties: A review. J. Mol. Cat. B. 59, 9-21 (2009).
  18. Callahan, B. P., Yuan, Y., Wolfenden, R. The burden borne by urease. J. Am. Chem. Soc. 127, 10828-10829 (2005).
  19. Krajewska, B., van Eldik, R., Brindell, M. Temperature- and pressure-dependent stopped-flow kinetic studies of jack bean urease. Implications for the catalytic mechanism. J. Biol. Inorg. Chem. 17, 1123-1134 (2012).
  20. Hausinger, R. P., Karplus, P. A., Huber, R., Poulos, T., Wieghardt, K. . Handbook of Metalloproteins. , 867-879 (2001).
  21. Goldberg, R., Kishore, N., Lennen, R. Thermodynamic quantities for the ionization reactions of buffers. J. Phys. Chem. Ref. Data. 31, 231-370 (2002).
  22. Baumann, M. J., et al. Advantages of isothermal titration calorimetry for xylanase kinetics in comparison to chemical-reducing-end assays. Anal. Biochem. 410, 19-26 (2011).
  23. Noske, R., Cornelius, F., Clarke, R. J. Investigation of the enzymatic activity of the Na+,K+-ATPase via isothermal titration microcalorimetry. Biochim. Biophys. Acta. 1797, 1540-1545 (2010).
  24. Harmon, K. M., Niemann, C. The competitive inhibition of the urease-catalyzed hydrolysis of urea by phosphate. J. Biol. Chem. 177, 601-605 (1949).
  25. Benini, S., Rypniewski, W. R., Wilson, K. S., Ciurli, S., Mangani, S. Structure-based rationalization of urease inhibition by phosphate: novel insights into the enzyme mechanism. J. Biol. Inorg. Chem. 6, 778-790 (2001).
  26. Segel, I. H. . Enzyme kinetics: behavior and analysis of rapid equilibrium and steady-state enzyme systems. , (1993).

Play Video

Cite This Article
Mazzei, L., Ciurli, S., Zambelli, B. Hot Biological Catalysis: Isothermal Titration Calorimetry to Characterize Enzymatic Reactions. J. Vis. Exp. (86), e51487, doi:10.3791/51487 (2014).

View Video