Eine geführte Material-Screening Ansatz zur Sol-Gel abgeleiteten Protein-Microarrays mit dotierten eine aufstrebende Pin-Druckverfahren der Fertigung entwickeln beschrieben. Diese Methodik wird durch die Entwicklung von Acetylcholinesterase-und Multi-Kinase-Microarrays, die für eine kostengünstige Screening kleiner Moleküle verwendet werden aufgezeigt.
Microarrays haben den Einsatz in der Entwicklung von High-Throughput-Assays für neue Materialien und Entdeckung von niedermolekularen Leitstrukturen gefunden. Hier beschreiben wir eine geführte Material-Screening Ansatz zur Sol-Gel-basierten Materialien, die zur Herstellung von dreidimensionalen Protein-Microarrays zu identifizieren. Der Ansatz identifiziert zunächst Materialien, die als Microarrays gedruckt werden können, schränkt die Anzahl von Materialien durch diejenigen zu identifizieren, die mit einem bestimmten Enzym-Assay sind, und dann schärft in der optimalen Materialien basierend auf Beibehaltung der maximalen Enzymaktivität. Dieser Ansatz wird angewendet, um Microarrays geeignet für zwei verschiedene Enzym-Assays, eine mit Acetylcholinesterase und die andere mit einem Satz von vier zentralen Kinasen bei Krebs eine Rolle zu entwickeln. In jedem Fall war es möglich, die für die quantitative Mikroarrays niedermolekulare Screening-Assays und Produktion von Dosis-abhängigen Inhibitor-Wirkungs-Kurven verwendet werden könnten, zu erzeugen. Wichtig ist, dass die Fähigkeit zu screenen viele Kumpelstoffe produziert Informationen über die Arten von Materialien, die am besten geeignet sowohl Microarray Produktion und Speicherung von Enzymaktivität. Die Materialien Daten geben einen Einblick in Grundmaterial Anforderungen für optimale Anpassung, High-Density-Sol-Gel-abgeleiteten Microarrays.
Microarrays haben Popularität innerhalb der wissenschaftlichen Gemeinschaft als eine Methode zur Steigerung der Durchsatz Assay gewonnen. Da die Entwicklung der Microarray-Technologie, um die Genexpression 1 in der Mitte der 1990er Jahre zu bewerten, haben Microarrays Einsatz in der Entwicklung von High-Throughput-Assays gefunden, um Protein-Protein-und Protein-Interaktionen kleines Molekül zu identifizieren und neue Materialien mit einzigartigen Eigenschaften zu finden. 2-5 In jüngerer Zeit wurden Mikroarrays, wobei bestimmte Materialien verwendet werden, um funktionelle Proteine zu immobilisieren, wodurch ein dreidimensionales Mikroarrayelement in denen Proteine eingeschlossen entwickelt, das einfache Messung der enzymatischen Aktivität und Hemmung auf dem Microarray selbst mit einem geeigneten Fluoreszenz Assay, der auf das Substrat Umsatz gekoppelt ist. 5-10 Wichtig ist, dass solche Mikroarrays entwickelt, um alle notwendigen Komponenten, um Bildschirm Proben und Kontrollen gehören zusammen in einem sehr parallel Mode werden. 5,8 </ P>
Frühe Beispiele von Protein-Microarrays wurden typischerweise unter Verwendung von Standard-Verfahren für die Immobilisierung von Proteinen an feste Träger, wie eine kovalente Bindung, erfassen 11 Affinität 3 und physikalische Adsorption. 12 Während diese Verfahren von Bio-Immobilisierung erhöht Probenkonzentration und beschleunigte Kinetik erforderlich für erlauben Assay Miniaturisierung, leiden sie jeweils Nachteile. Im Allgemeinen führen alle eine Reduktion der nativen Biomolekül Funktionalität durch chemische Modifikation der Oberfläche, erschwerter Zugang zum aktiven Zentren oder unsachgemäße Ausrichtung durch unspezifische Immobilisierung. So sind alle Methoden führen zu geringeren Empfindlichkeit des Assays trotz einer Steigerung der Abscheidung Biomolekül, eine Antwort, die wahrscheinlich entsteht durch die Notwendigkeit, künstlich binden Biomolekülen an einer Oberfläche.
Eine aufstrebende Ansatz für die Herstellung von funktionellen Biomolekülen Microarrays ist durch den Stift-Druck von Protein-dotiertenKieselsole auf festen Trägern, die in der Regel entweder funktionalisierte Glasplättchen oder einzelnen Vertiefungen von Mikrotiterplatten. Das Sol-Gel-Prozess selbst erfolgt in einer wässrigen Umgebung bei Raumtemperatur, und es ist die flüssige Vorstufe, die gedruckt und dann Gele zum Einschluss von Biomolekülen in der 3D-Matrix, was eine hohe Eiweissbelastung 13 sowie Einschluss von mehreren Komponenten in gleich Mikroarrayelement. 13,14 Tailoring des Sol-Gel-abgeleitete Material durch sorgfältige Auswahl der verschiedenen Silikavorstufen durchgeführt werden, sowie durch die Veränderung der wässrigen Komponente durch die Verwendung von verschiedenen Puffern (pH, Ionenstärke) und Aufnahme verschiedene Zusätze (Polymere, kleine Moleküle), um einen optimalen Materialfluss zu erreichen, hängt die spezifische Natur von denen auf dem Biomolekül, das eingeschlossen ist. 10
Eine mögliche Einschränkung mit den Entwicklungsländern Sol-Gel abgeleiteten Protein-Microarrays über Pin-Druck verbunden ist,die Notwendigkeit, die Sol-Gel-basierte Verbundwerkstoffe, die ohne Geliermittel in den Stift gedruckt werden können oder unerwünschte Eigenschaften zeigen (nicht reproduzierbar Messfelder, Rissbildung, schlechte Haftung, Inkompatibilität mit Assay-Komponenten, schlechte Protein-Aktivität) einmal auf eine Oberfläche gedruckt identifizieren. 5 Gleichzeitige Optimierung all dieser Parameter schließt einen Ansatz, bei de novo Materialien ausgelegt werden kann, oder untersucht langsam in serieller Weise. Auf der anderen Seite ist Zufalls-Screening von mehreren tausend oder zehntausend Materialien weder zeitlich noch kostengünstiger.
In diesem Artikel beschreiben wir ein direktes Screening Ansatz, der die schnelle Identifizierung von geeigneten Materialien können für die Herstellung von Protein-Arrays, ohne dass nach dem Zufallsprinzip Screening einer großen Anzahl von Materialien. Mit einer geführten Ansatz werden Materialien, die für Microarray Druck zunächst identifiziert, gefolgt von einer Reihe von kleinen Bildschirme zu identifizieren optimale Sol-Gel-abgeleitete Materialienal-Kombinationen, die reproduzierbar gedruckt werden, ohne zu reißen und sind kompatibel mit einer gegebenen Assay. Schließlich werden optimale Materialien basierend auf Beibehaltung der Enzymaktivität und Leistung in einem abschließenden kleinen Molekülen Screening-Assay identifiziert. Auf diese Weise kann eine optimale Materialien aus vielen tausend Kandidaten mit nur ein paar hundert Schritte Assay identifiziert werden. Wir zeigen, diesen Ansatz für die Herstellung von sowohl hoher Dichte Acetylcholinesterase und Multi-Kinase-Microarrays und die Verwendung solcher Microarrays für kleine Molekül-Screening.
Die Methodik hier beschrieben wurde als die am besten geeignete für die Identifizierung druckbare Sol-Gel-Materialien abgeleitet mit einem Kontakt Drucker ausgewählt, wodurch ein zeit-und kostengünstige Verfahren zur schnellen Identifizierung optimalen Materialien, ohne eine große Zahl von Materialien zu screenen. Von den insgesamt 20.000 ~ potenziellen Materialien, war es möglich, ~ 200 Materialien, die für den Druck auf der Grundlage Gelierdauer allein waren zu identifizieren. Diese deutlich die Anzahl der benötigten Materialien, um für nachfolgende Druckversuche hergestellt werden reduziert. Diese bedruckbaren Materialien wurden dann auf 4 Gleitflächen für insgesamt 768 Material-Gleitpaarungen gedruckt. Im Durchschnitt können 50 Punkte / Replikate von einem Material in ~ 3 min, einschließlich Probenbeladung, Spot Abscheidung und Reinigung Stift gedruckt werden. Von diesen 155 Materialien oder etwa 20%, für den Druck der maximalen Anzahl von Punkten pro Lösungsaufnahme erlaubt und reproduzierbar hergestellt Punktgrößen. Es sollte angemerkt werden, dass der 4 slide Oberflächen getestet, gedruckte Materialien besser in der Reihenfolge: Amin> Epoxidharz> Aldehyd> PMMA, PMMA Folien nicht produzieren nützliche Arrays für alle Materialien. Dies war wahrscheinlich auf die Polarität der Oberflächenbeschichtung zugeschrieben. Vergleichen der genannten Gleitflächen wurden das polarere Amin und Epoxid besser für die wässrigen Sole im Vergleich zu den PMMA Folien geeignet. Außerdem der getesteten Oberflächen bieten die Amin-beschichtete Objektträger ein Potential positiv geladenen Oberfläche der abgeschiedenen anionischen Sol zu binden. Wir vermuten, dass die Nanopartikel Siliciumdioxid an der Grenzfläche zwischen dem Schieber und das Sol auf der Oberfläche interagieren. Sowohl die Epoxy-und die Aldehyd Gleitflächen fehlt die gleiche anfängliche Lade-Interaktion. Um eine optimale Ort Abscheidung zu gewährleisten ist es sehr empfehlenswert, um pre-beschichtete Objektträger von einem Anbieter wie Arrayit verwenden. In-house Beschichtung erzeugt inkonsistente Flächen, die zu schlechter Reproduzierbarkeit Spot 13 und führen, in einigen Fällen kann eine Quantifizierung prob führenbleme. 18. Von gleicher Bedeutung, Einfluss auf Temperatur und Luftfeuchtigkeit die "Bedruckbarkeit" der Materialien. Während keine detaillierten Studien zu den Auswirkungen im Zusammenhang mit Temperatur durchgeführt wurden, wurde das Drucken immer bei Raumtemperatur (23 ± 3 ° C). Feuchtigkeit (mehr als 80%) wurde auch in der Kammer Druck gesteuert wird, um unregelmäßige Form Ablagerung aufgrund der geringen Volumina Abscheidung (0,7-2,3 nl) und eine Verdampfung zu verhindern.
Während das Material Bildschirm wurde zur Identifizierung optimaler Sol-Gel-abgeleitete Materialien, die speziell zum Drucken von AChE und Kinasen, eine kleine Reihe von Materialien identifiziert, die für beide Proteine gearbeitet geführt. Tatsächlich wurden beide Materialien, die für die Kinase-Mikroarray Herstellung identifiziert wurden SS + PVA + Basis Glycerin, und beide Materialien wurden in den 26 Materialien für AChE Microarrays ausgewählt identifiziert. Diese "optimal" Materialien können eine generische Ausgangspunkt für die Entwicklung weiterer prote bietenin-dotierten Sol-Gel-basierten Microarrays und kleine Bildschirme um diesen Zusammensetzungen zentriert identifizieren können noch bessere Werkstoffe für Microarray-Herstellung. Ein zweiter Punkt ist die Bedeutung des Enzyms verwendet. Im Falle von AChE (a ziemlich robust Enzym), gehalten 26 (oder etwa 40%) der ursprünglichen 66 Materialien als Assay-kompatibel identifiziert die Aktivität des eingeschlossenen AChE. Doch für die zarteren Kinasen, waren nur 2 der 69 Test-kompatiblen Zusammensetzungen oder rund 3% der Materialien in der Lage, die Aktivität aller Kinasen zu behalten. Während eine ausreichende Zahl von verschiedenen Enzymen nicht studiert haben, um schlüssige Aussagen zu machen, scheint es, dass die Optimierung Arrayherstellung mit relativ instabil Enzyme können zur Identifizierung der Materialien, die eine breite Palette von Proteinen an mutliplexed Microarray Herstellung erlauben einzufangen führen kann.
Unabhängig von der gewählten Proteins wurde die große cut-off Faktor zur Identifizierung bedruckbaren Materialien die Notwendigkeit für eine langeMaterial Gelierzeiten (> 2,5 h). Bei der Entwicklung SS Sol-Gel-Materialien, ist es sehr wichtig, um sicherzustellen, dass nach Ionenaustausch und Filtration wurde das Sol bei etwa pH 4 ist. Sols mit einem geringeren anfänglichen pH-Wert kann in Materialien mit einer geringeren als den neutralen pH-Wert, die Enzymaktivität beeinflussen können. 19 Einstellen der Menge an Dowex (Ionenaustauscher) zu SS kann die endgültige pH des Sol verändern führen. Wenn eine neue Charge des Harzes wird das Verhältnis von Harz zu SS muss so eingestellt werden, dass Sole bei etwa pH 4 nach dem Verfahren in Abschnitt 2 des Protokolls zu produzieren.
Ebenso ist die Herstellung von kristallinen DGS oft eine Fehlerquelle mit Materialversagen verbunden, wenn mit DGS based Sole für das Biomolekül Einschluss. Obwohl hier nicht im Detail angegeben, muss große Sorgfalt, um während der Synthese des kristallinen DGS, insbesondere die Notwendigkeit, die Anwesenheit von Wasser während der Synthese zu vermeiden, die polyglycerated Siliciumdioxid produzieren kann entnommen werdentes statt monomere DGS. Auch aufgrund der hygroskopischen Natur der DGS, muss die kristalline Probe zu speichernden ausgetrocknet werden und innerhalb von 6 Monaten nach der Synthese. Kristalline DGS älter als 6 Monate nicht vollständig auflösen (wegen teilweise kondensierten Polyglyceryl Silikat-Material), auch mit Ultraschall in einer sauren Umgebung. Unvollständige DGS Auflösung produziert Solen mit unbekannten und unkontrollierbaren Silica-Anteil und damit weniger robusten Materialien.
Ein wichtiger Punkt bei Kontaktdruck beachten ist die Qualität der Stifte. Beschädigte oder misshandelt Stifte (Abbildung 9) wird nie reproduzierbar Arrays unabhängig von dem Material gedruckt wird. Es wird empfohlen, um den Stift mit einem Qualitäts-Check Dissektionsmikroskop um sicherzustellen, gebrochen oder verstopft Stifte nicht verwendet werden. Sorgfältige Behandlung garantiert eine lange Lebensdauer für die Stifte. Freie Bewegung des Stifts ist ebenfalls wichtig. In Fällen, in denen Feuchtigkeit in dem Druckkopf zwischen dem Kopf und der Stift der Stift eingeschlossen ist,er wird dann nicht vollständig und somit nicht guten Kontakt mit der Oberfläche, was zu einem Mangel der Abscheidung von Material.
Zusammenfassend haben wir einen detaillierten, mehrstufigen Screening-Ansatz für die Entwicklung von High-Density-Protein-dotierten pin gedruckten Microarrays zur Verfügung gestellt. Das Screening beinhaltet die Optimierung der Materialeigenschaften (Gelierdauer und Bedruckbarkeit), damit Druck von Materialien, um mehr konzentriert Screening gefolgt, um Materialien, die mit einem gegebenen Assay und in der Lage, um die Enzymaktivität zu behalten sind zu identifizieren. Diese geführte Material Screening-Ansatz können zusätzliche Microarray-Formate angewendet werden, um Zeit und Kosten mit der Herstellung von effizienten High-Density-Microarrays zu reduzieren.
The authors have nothing to disclose.
Die Autoren danken Maria Monton, Julie Lebert, Jessamyn Kleine, Xin Ge und Laura Lautens für die Unterstützung bei der Entwicklung von Protein-Microarrays. Die Autoren danken dem Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC) für die Finanzierung dieser Arbeit. Die Autoren danken auch dem Canada Foundation for Innovation und dem Ontario Innovation Trust für die Unterstützung dieser Arbeit. JDB hält den Canada Research Chair in Bioanalytik und Biointerfaces.
Reagent/Material | |||
Poly(vinyl alcohol) (PVA) | Sigma-Alderich | 360627 | 80% hydrolozyed, Mw 600 |
Polyethylene glycol 600 (PEG) | Sigma-Alderich | 87333 | |
Polyethylenimine (PEI) | Sigma-Alderich | 482595 | 50% (w/w) solution in water |
Carboxyethylsilanetriol (Si-COOH) | Gelest, Inc. | SIC2263.0 | 25% in water |
N-(3-triethoxysilylpropyl) gluconamide(GLS) | Gelest, Inc. | SIT8189.0 | 50% in ethanol |
bis[(3-methyldimethoxysilyl)propyl]polypropylene oxide (MDSPPO) | Gelest, Inc. | SIB1660.0 | |
Methyltrimethoxysilane (MTMS) | Gelest, Inc. | SIM6560.1 | |
Bis(triethoxysiyly)ethane (Bis-TEOS) | Gelest, Inc. | SIB1817.0 | |
3-Aminopropyltriethoxysilane (APTES) | Gelest, Inc. | SIA0610.0 | |
Glycerol | Sigma-Alderich | 49767 | |
D-Sorbitol | Sigma-Alderich | 240850 | |
D-(+)-Trehalose dihydrate | Sigma-Alderich | T9531 | |
Triton X-100 | Sigma-Alderich | X-100 | |
Nε-Acetyl-L-lysine | Sigma-Alderich | A4021 | |
Tris(hydroxymethyl)aminomethane | Sigma-Alderich | 154563 | |
HEPES | Sigma-Alderich | H3375 | |
Sodium hydroxide, 1.0 N | LabChem Inc. | LC24350-2 | |
Hydrochloric Acid, 1.0 N/0.1 N | LabChem Inc. | LC15300-2/LC152220-2 | |
Magnesium chloride | Sigma-Alderich | M8266 | |
Diglycerolsilane (DGS) | Prepared in laboratory | ||
Sodium silicate solution | Fisher Scientific | SS338-1 | |
Dowex 50WX8-100 ion exchance resin | Sigma-Alderich | 217492 | |
Acetylthiocholine iodide | Sigma-Alderich | 1480 | |
Acetylcholinesterase from Electrophorus electricus (electric eel) | Sigma-Alderich | C2888 | |
BODIPY FL L-Cystine | Invitrogen | B-20340 | |
Pro-Q Diamond Phosphoprotein/Phosphopeptide Microarray Stain Kit | Invitrogen | P33706 | |
Adenosine 5'triphosphate disodium salt (ATP) solution | Sigma-Alderich | A6559 | |
MAP Kinase 2 (MAPK2) | EMD Millipore | 454850 | |
p38α/SAPK2a (T106M), active | EMD Millipore | 14-687M | |
Epidermal growth factor (EGFR) | EMD Millipore | Donated by Millipore | |
Glycogen synthase kinase 3β (GSK-3β) | EMD Millipore | 14-306 | |
Myelin basic protein (MBP) | EMD Millipore | Substrate for MAPK2 and p38α, Donated by Millipore | |
GSM | EMD Millipore | 12-533 | Substrate for GSK-3β |
Poly-glu-tyr polypeptide p(E4Y) | EMD Millipore | 12-440 | Substrate for EGFR |
Stealth pin | ArrayIt | SMP3 | |
Stealth pin | ArrayIt | SMP7 | |
Amine coated slides | ArrayIt | SMM2 | |
Aldehyde coated slides | ArrayIt | SMA2 | |
Exposy coated slides | ArrayIt | SME2 | |
Poly(methylmethacrylate) (PMMA) coated slides | Exakt Technologies Inc. | 41500 | |
0.2-μm syringe filter | PALL Life Sciences | 4612 | |
Equipment | |||
Virtek Contact Printer | BioRad | ||
Novaray Fluorescence Slide Imager | Alpha Innotech Corporation | ||
Desktop microarray centrifuge | ArrayIt | MHC110V | |
MilliQ Synthesis A10 | Millipore | Used to filter all water required for experiments |