Summary

Подготовка и культуры Куриные ломтики Слуховые мозга

Published: March 21, 2011
doi:

Summary

Ствола мозга куриного слуховой состоит из ядер, ответственных за бинауральные обработки звука. Одного корональных подготовки ломтик поддерживает все схемы в то время как культурный подход обеспечивает уникальный препарат для изучения развития нейронной структуры и слуховой функции на молекулярном, клеточном и сетевых уровнях.

Abstract

Ствола мозга куриного слуховой устоявшихся модель системы, которая широко используется для изучения анатомии и физиологии слухового переработки на дискретные периоды развития 1-4, а также механизмы для временного кодирования в центральной нервной системе 5-7.

Здесь мы представляем метод подготовить куриные слухового ствола мозга ломтиками, которые могут быть использованы для острой экспериментальной процедуры или к культуре органотипической ломтиками для долгосрочных экспериментальных манипуляций.

Ствола мозга куриного слуховой состоит из ядра angularis, magnocellularis, laminaris и превосходное оливковое. Эти ядра несут ответственность за бинауральные обработки звука и одного корональных подготовки ломтик сохранения всей схемы. В конечном счете, органотипической культур срез может предоставить возможность манипулировать несколько развития таких параметров, как синаптической активности, выражение пре-и постсинаптических компонентов, выражение аспекты контроля возбудимости и дифференциальное выражение гена

Этот подход может быть использован для расширения общих знаний о нейронных развития цепи, изысканность и созревания.

Protocol

1. Подготовка Пройдя площадь Постоянно пузырь искусственной спинномозговой жидкости (ACSF) смесью 95% O 2 / 5% СО 2 (рН между 7.2-7.4, осмолярность 295-310 мОсм / л). Хотя ACSF кипит, чистая рабочая зона с 70% этанола. Также очистите vibratome и нарезки лезвия. Промыть лезвие с дистиллиров?…

Discussion

В течение нескольких десятилетий острой подготовки ломтиком куриного мозга был использован для исследования слуховой обработки 9, 10. Такой подход обеспечил огромное количество в лабораторных условиях физиологические данные о бинауральных обработки с обеих развития и зрел…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Нынешние и бывшие члены Рубель лаборатории.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Chicken ACSF        
NaCl   Fisher Scientific M-11624 130 mM
NaHCO3   Fisher Scientific M-10576 26 mM
KCl   Sigma P-9333 3 mM
NaH2PO4   Sigma S-8282 1.25 mM
Glucose   Sigma G-7528 10 mM
MgCl2   Fisher Scientific M33-500 1 mM
CaCl2   Acros Organics 423525000 2 mM
Chicken culture medium (store at 4°C)        
advanced minimum essential medium (with NEAA, sodium pyruvate at 110 mg/l, without L-glutamate)   Gibco Invitrogen 12492-013 48.00%
Earl’s balanced salt solution   Sigma E-2888 24.00%
L-glutamine (200 mM)   Sigma G-7513 1.00%
Glucose solution (200 g/l, sterile filtered)   Sigma G-7528 2.75%
horse serum (heat inactivated, sterile filtered)   Sigma H-1138 24.00%
Penicillin-streptomycin*   Sigma P-0781 1.00 ml
* = Add to 100 ml culture medium if needed to prevent contamination
Specific equipment        
Millicell-CM cell culture inserts PICMORG50 Millipore    
6-well plate 6 Well Cell Culture Cluster Corning Incorporated    
Incubator Forma Scientific CO2 Water Jacketed Incubator Forma Scientific    

References

  1. Howard, M. A., Burger, R. M., Rubel, E. W. A developmental switch to GABAergic inhibition dependent on increases in Kv1-type K+ currents. J Neurosci. 27, 2112-2123 (2007).
  2. Kuba, H., Koyano, K., Ohmori, H. Development of membrane conductance improves coincidence detection in the nucleus laminaris of the chicken. J Physiol. 540, 529-542 (2002).
  3. Gao, H., Lu, Y. Early development of intrinsic and synaptic properties of chicken nucleus laminaris neurons. Neuroscience. 153, 131-143 (2008).
  4. Sanchez, J. T., Wang, Y., Rubel, E. W., Barria, A. Development of glutamatergic synaptic transmission in binaural auditory neurons. J Neurophysiol. 104, 1774-1789 (2010).
  5. Jackson, H., Hackett, J. T., Rubel, E. W. Organization and development of brain stem auditory nuclei in the chick: ontogeny of postsynaptic responses. J Comp Neurol. 210, 80-86 (1982).
  6. Rubel, E. W., Parks, T. N. Organization and development of brain stem auditory nuclei of the chicken: tonotopic organization of n. magnocellularis and n. laminaris. J Comp Neurol. 164, 411-433 (1975).
  7. Rubel, E. W., Smith, D. J., Miller, L. C. Organization and development of brain stem auditory nuclei of the chicken: ontogeny of n. magnocellularis and n. laminaris. J Comp Neurol. 166, 469-489 (1976).
  8. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37, 173-182 (1991).
  9. Reyes, A. D., Rubel, E. W., Spain, W. J. Membrane properties underlying the firing of neurons in the avian cochlear nucleus. J Neurosci. 14, 5352-5364 (1994).
  10. Monsivais, P., Rubel, E. W. Accommodation enhances depolarizing inhibition in central neurons. J Neurosci. 21, 7823-7830 (2001).
  11. Lu, T., Trussell, L. O. Development and elimination of endbulb synapses in the chick cochlear nucleus. J Neurosci. 27, 808-8017 (2007).
  12. Kuba, H., Yamada, R., Fukui, I., Ohmori, H. Tonotopic specialization of auditory coincidence detection in nucleus laminaris of the chick. J Neurosci. 25, 1924-1934 (2005).
  13. Trussell, L. O. Cellular mechanisms for preservation of timing in central auditory pathways. Curr Opin Neurobiol. 7, 487-492 (1997).
  14. Trussell, L. O. Synaptic mechanisms for coding timing in auditory neurons. Annu Rev Physiol. 61, 477-496 (1999).
  15. Sorensen, S. A., Rubel, E. W. The level and integrity of synaptic input regulates dendrite structure. J Neurosci. 26, 1539-1550 (2006).

Play Video

Cite This Article
Sanchez, J. T., Seidl, A. H., Rubel, E. W., Barria, A. Preparation and Culture of Chicken Auditory Brainstem Slices. J. Vis. Exp. (49), e2527, doi:10.3791/2527 (2011).

View Video